一种卵黄稀释液的配制方法
技术领域:
本发明属于动物生殖生物技术领域,适用于牛冻精生产中稀释液的配制,主要提供一种卵黄稀释液的配制方法。
背景技术:
稀释液是牛冷冻精液生产中的主要和必要试剂,而卵黄稀释液因对精子有更好的保护作用,广泛使用于牛性控冷冻精液的生产中。卵黄稀释液中有很多颗粒杂质成分影响稀释液的质量和产品的检测,目前主要通过离心加过滤手段除去这些杂质颗粒。因卵黄中含有大量的有机成分,用0.22μm的无菌滤器过滤,不但耗时耗力,而且成本高昂,为此开发了该技术。
发明内容:
本发明提供一种用于牛冻精生产的卵黄稀释液配制方法,该技术原理是利用盐离子浓度对卵黄中颗粒成分的聚集起重要作用,低盐离子浓度有助于颗粒的聚集,从而可以通过离心去除大部分颗粒,这样就可以省去过滤的步骤,降低成本,节省人力物力。
本发明的目的是通过以下技术方案实现的:一种卵黄稀释液的配制方法,其特征在于:它包括下述步骤:
1)卵黄的制备:选取新鲜鸡蛋,将蛋壳用75%的酒精消毒,在无菌条件下去蛋壳、蛋清;用已灭菌滤纸将卵黄膜表面的蛋清吸干,用无菌注射器抽取卵黄;
2)4.6倍Tris-A及6倍Tris-B母液的配制:
按照上述配方用双蒸水配制4.6倍Tris-A母液,6倍Tris-B母液,分别调pH值为6.80±0.02,用0.22μm无菌滤器过滤;
3)0.5倍Tris-A溶液和0.5倍Tris-B溶液的配制:用无菌水将4.6倍Tris-A母液与6倍Tris-B母液分别稀释为0.5倍Tris-A溶液和0.5倍Tris-B溶液,配制好的溶液在4℃环境下保存,备用;
4)Tris-A、Tris-B稀释液的配制
①Tris-A稀释液的配制
将0.5倍Tris-A溶液和卵黄按7∶2的体积比加到一无菌容器中,于4℃环境下用磁力搅拌器以400-500转/分钟搅拌2小时,再静置20h,然后将上清液4℃、3850g离心60min,取上清液,并按1∶9.4的体积比加入4.6倍Tris-A母液,摇匀,加入抗生素:庆大霉素终浓度500μg/ml;林可霉素终浓度300μg/ml;奇霉素终浓度600μg/ml;泰乐菌素终浓度100μg/ml,调pH值为6.80±0.02,于4℃冰箱中保存备用;
②Tris-B稀释液的配制
将0.5倍Tris-B溶液和卵黄按7∶2.3的体积比加到一无菌容器中,于4℃环境下用磁力搅拌器以400-500转/分钟搅拌2小时,再静置20h,然后将上清液4℃、3850g离心60min,取上清液,并按7∶93的体积比加入6倍Tris-B母液,再加入无菌甘油,甘油最终比例为12%v/v,摇匀,加入抗生素:庆大霉素终浓度26.6μg/ml;林可霉素终浓度15.9μg/ml;奇霉素终浓度31.9μg/ml;泰乐菌素终浓度5.3μg/ml,调pH值为6.80±0.02,于4℃冰箱中保存备用。
一种卵黄稀释液在牛性控冻精与常规冻精生产中的应用。
本发明的有益效果是:该技术原理是利用盐离子浓度对卵黄中颗粒成分的聚集起重要作用,低盐离子浓度有助于颗粒的聚集,从而可以通过离心去除大部分颗粒,这样就可以省去过滤的步骤,这种卵黄稀释液配制方法简单,同时配制出的卵黄稀释液颗粒少,保证冷冻精子的活率,提高了冻精产品质量,减少生产成本。
附图说明
图1是牛号11103832(X)应用新型卵黄稀释液和原卵黄稀释液显微镜图。a:新型卵黄稀释液b:原卵黄稀释液。
图2是牛号YE025(X)应用新型卵黄稀释液和原卵黄稀释液显微镜图。a:新型卵黄稀释液b:原卵黄稀释液。
图3是牛号11102390(X)应用新型卵黄稀释液和原卵黄稀释液显微镜图。a:新型卵黄稀释液b:原卵黄稀释液。
具体实施方式
实施例:一种用于牛冻精生产的卵黄稀释液的配制方法,它包括下述步骤:
1、卵黄的制备:选取新鲜鸡蛋,将蛋壳用75%(v/v)的酒精消毒,在无菌条件下去蛋壳、蛋清,用已灭菌滤纸将卵黄膜表面的蛋清吸干,用无菌注射器抽取卵黄;
2、4.6倍Tris-A及6倍Tris-B母液的配制:
表1 100ml 4.6×Tris-A母液配方
药品名称 |
重量(g) |
Tris base |
16.25 |
柠檬酸 |
7.92 |
D-Fructose |
5.82 |
表2 100ml 6×Tris-B母液配方
药品名称 |
重量(g) |
Tris base |
21.45 |
柠檬酸 |
11.99 |
D-Fructose |
8.83 |
按照上表配方用双蒸水配制4.6倍Tris-A母液、6倍Tris-B母液,分别调pH值为6.80±0.02,用0.22μm无菌滤器过滤;
3、0.5倍Tris-A溶液和0.5倍Tris-B溶液的配制:用无菌水将4.6倍Tris-A母液与6倍Tris-B母液分别稀释为0.5倍Tris-A溶液和0.5倍Tris-B溶液,配制好的溶液在4℃环境下保存、备用;
4.Tris-A、Tris-B稀释液的配制:
(1)Tris-A稀释液的配制
将0.5倍Tris-A溶液和卵黄按7∶2的体积比加到一无菌容器中,于4℃环境下用磁力搅拌器以400-500转/分钟搅拌2小时,在4℃条件下静置20h后,将上清液4℃、3850g离心60min,取上清液,并按1∶9.4的体积比加入4.6倍Tris-A母液,摇匀,加入抗生素:庆大霉素终浓度500μg/ml;林可霉素终浓度300μg/ml;奇霉素终浓度600μg/ml;泰乐菌素终浓度100μg/ml,调pH值为6.80±0.02,于4℃冰箱中保存备用;
(2)Tris-B稀释液的配制
将0.5倍Tris-B溶液和卵黄按7∶2.3的体积比加到一无菌容器中,于4℃环境下用磁力搅拌器以400-500转/分钟搅拌2小时,在4℃条件下静置20h后,将上清液4℃、3850g离心60min,取上清液,并按7∶93的体积比加入6倍Tris-B母液,按比例加入无菌甘油,甘油最终比例为12%(v/v),摇匀,加入抗生素:庆大霉素终浓度26.6μg/ml;林可霉素终浓度15.9μg/ml;奇霉素终浓度31.9μg/ml;泰乐菌素终浓度5.3μg/ml,调pH值为6.80±0.02,于4℃冰箱中保存备用。
应用实例1:用原稀释液和新型稀释液生产编号为11103832种公牛X精子,按照冻精流程冷冻精液(中华人民共和国农业行业标准,NY/T1234-2006),精液冷冻24h后,检测精液各项质量指标,其中包括解冻后活力、解冻后4h活力、存活时间以及细菌数,结果显示两种卵黄稀释液对同一种公牛精液的冻后活力、4h活力、存活时间的冷冻保护效果一致,细菌数无显著差别;而新型卵黄稀释液颗粒数量明显少于原卵黄稀释液。
表3 不同卵黄稀释液对冻精质量的影响
卵黄稀释液 |
冻后活力 |
4小时活力 |
存活时间 |
细菌数 |
新稀释液 |
0.60 |
0.30 |
T=5.5 |
0 |
原稀释液 |
0.61 |
0.20 |
T=5.5 |
11 |
应用例2:用原稀释液和新型稀释液生产编号为YE025种公牛X精子,按照冻精流程冷冻精液,精液冷冻24h后,检测精液各项质量指标,其中包括解冻后活力、解冻后4h活力、存活时间以及细菌数。结果显示两种卵黄稀释液对同一种公牛精液的冻后活力、4h活力、存活时间的冷冻保护效果一致,细菌数无显著差别。而新型卵黄稀释液颗粒数量明显少于原卵黄稀释液。
表4 不同卵黄稀释液对冻精质量的影响
卵黄稀释液 |
冻后活力 |
4小时活力 |
存活时间 |
细菌数 |
新稀释液 |
0.58 |
0.28 |
T=5 |
1 |
原稀释液 |
0.55 |
0.26 |
T=5.5 |
15 |
应用例3:用原稀释液和新型稀释液生产编号为11102390种公牛X精子,按照冻精流程冷冻精液,精液冷冻24h后,检测精液各项质量指标,其中包括解冻后活力、解冻后4h活力、存活时间以及细菌数。结果显示两种卵黄稀释液对同一种公牛精液的冻后活力、4h活力、存活时间的冷冻保护效果一致,细菌数无显著差别。而新型卵黄稀释液颗粒数量明显少于原卵黄稀释液。
表5 不同卵黄稀释液对冻精质量的影响
卵黄稀释液 |
冻后活力 |
4小时活力 |
存活时间 |
细菌数 |
新稀释液 |
0.54 |
0.20 |
T=5 |
3 |
原稀释液 |
0.55 |
0.27 |
T=5 |
0 |