Rev. Biol. Trop. 51 (Suppl. 3): 225-284, 2003 www.ucr.ac.cr www.ots.ac.cr www.ots.duke.edu Moluscos del Perú Rina Ramírez1, Carlos Paredes1, 2 y José Arenas3 1 2 3 Museo de Historia Natural, Universidad Nacional Mayor de San Marcos. Avenida Arenales 1256, Jesús María. Apartado 14-0434, Lima-14, Perú. Laboratorio de Invertebrados Acuáticos, Facultad de Ciencias Biológicas, Universidad Nacional Mayor de San Marcos, Apartado 11-0058, Lima-11, Perú. Laboratorio de Parasitología, Facultad de Ciencias Biológicas, Universidad Ricardo Palma. Av. Benavides 5400, Surco. P.O. Box 18-131. Lima, Perú. Abstract: Peru is an ecologically diverse country, with 84 life zones in the Holdridge system and 18 ecological regions (including two marine). 1910 molluscan species have been recorded. The highest number corresponds to the sea: 570 gastropods, 370 bivalves, 36 cephalopods, 34 polyplacoforans, 3 monoplacophorans, 3 scaphopods and 2 aplacophorans (total 1018 species). The most diverse families are Veneridae (57spp.), Muricidae (47spp.), Collumbellidae (40 spp.) and Tellinidae (37 spp.). Biogeographically, 56 % of marine species are Panamic, 11 % Peruvian and the rest occurs in both provinces; 73 marine species are endemic to Peru. Land molluscs include 763 species, 2.54 % of the global estimate and 38 % of the South American estimate. The most biodiverse families are Bulimulidae with 424 spp., Clausiliidae with 75 spp. and Systrophiidae with 55 spp. In contrast, only 129 freshwater species have been reported, 35 endemics (mainly hydrobiids with 14 spp. The paper includes an overview of biogeography, ecology, use, history of research efforts and conservation; as well as indication of areas and species that are in greater need of study. Key words: biodiversity, Peru, conservation, mollusks, landsnails, taxonomy. El phylum Mollusca incluye una amplia diversidad morfológica, agrupada en: chitones, caracoles, babosas, almejas, ostras, mejillones, “conchas colmillo”, nautilus, calamares y pulpos. En diversidad de especies es el segundo filo superado sólo por los artrópodos. Los moluscos ocupan ambientes variados y se estiman 100000 especies marinas, 35000 terrestres y 5000 dulceacuícolas (Bruggen 1995). El Perú es un país megadiverso no sólo por la riqueza de especies que encierra sino, también, por la diversidad de hábitats que contiene, ya que han sido reportadas 84 de las 103 zonas de vida del Sistema Holdridge (ONERN 1976). Es de esperar que la diversidad de moluscos esté tam- bién bien representada. Lo que aquí presentamos es un compendio de los moluscos marinos, dulceacuícolas y terrestres del Perú, en relación con su diversidad, distribución, ecología, conservación y utilización. CARACTERIZACIÓN DEL PERÚ El Perú está situado en la costa pacífica de América del Sur (Fig. 1). Está ubicado dentro en la Región Biogeográfica Neotropical, pero la Cordillera de los Andes y la corriente fría marina (Corriente de Humboldt) hacen del Perú un país de contrastes (Tarazona et al. 1998). 226 MALACOLOGÍA LATINOAMERICANA Fig. 2. Delimitación de los tres sistemas de drenajes del Perú. (Tomado de Young, 1992) Fig. 1. Mapa político del Perú, con la ubicación de la Cordillera de los Andes. (Adaptado de Young, 1992) Encontramos costas desérticas, altas montañas, bosques lluviosos y un mar muy rico, por mostrarlo del modo más simple. Sin embargo, en un análisis más detallado se han establecido 18 regiones ecológicas, incluyendo dos ecosistemas marinos (Zamora 1996). A continuación describiremos brevemente las áreas biogeográficas en el ambiente marino, seguidas de las del ambiente continental. Mar Peruano Cabrera y Willink (1973), siguiendo a Ekman (1935, apud Cabrera y Willink) ubican al mar peruano dentro de la Región Biogeográfica Oceánica, con el Dominio Oceánico Tropical en el norte hasta el 5º de latitud sur y el Dominio Oceánico Peruano-Chileno. También son conocidas como la Provincia Panameña, al norte de los 05º40’LS, y la Provincia Peruana hacia el sur (hasta el 42ºLS en Chile). Las aguas frías de la Corriente Peruana o de Hum- boldt, que vienen desde Chile y se desvían aproximadamente a la altura del 5ºLS, son las que caracterizan a la Provincia Peruana. Ambientes continentales La parte continental del Perú está caracterizada por hábitats de fuertes contrastes, tanto en lo terrestre como en lo acuático. De manera resumida podríamos hablar de costa, sierra y selva, y de tres sistemas de drenaje, el del Pacífico, del Lago Titicaca y del Atlántico. La Cordillera de los Andes es la principal responsable de estos contrastes (Figs. 1 y 2). Para nuestros propósitos, en relación con el continente, seguiremos las regiones fitogeográficas del Neotrópico reconocidas por Gentry (1982; 1997a), Amazonia, Andes Tropicales y Costa Pacífica. Cada una de estas regiones está definida dentro de rangos de altitud. Nosotros vamos a tomar rangos fijos dentro de lo propuesto por Gentry (1997a). INTERNATIONAL JOURNAL OF TROPICAL BIOLOGY AND CONSERVATION Costa Pacífica Está delimitada al oeste por el Océano Pacífico y al este por la Cordillera de los Andes, cerca de la cota de los 1000 m de elevación. La zonación de vegetación depende principalmente del gradiente de precipitación (decrece de norte a sur), influenciada a su vez por la Corriente de Humboldt (que discurre de sur a norte) hasta el 5ºLS. Una pequeña porción del territorio en la costa norte (Tumbes) está ocupada por el bosque seco tropical (área influenciada más bien por la Corriente Ecuatorial de aguas cálidas), pasando progresivamente a desierto más seco al sur, donde la precipitación es prácticamente nula. La vegetación del desierto costero es muy pobre; la parte más interesante está en las “lomas”, “una formación a manera de archipiélago de herbáceas, en su mayoría efímeras y geofíticas, las cuales crecen en la zona de condensación donde las neblinas de invierno son interceptadas por cerros adyacentes a la costa” (Gentry 1997a: 295). La otra parte se refiere a la vegetación ribereña y a los humedales (Cabrera y Willink 1973, Cano et al. 1993, Young y León 1993). Andes Tropicales La región andina está delimitada al oeste por la cota de los 1000 m de altitud, y al este por la cota de los 500 m. Esta región está subdividida en tres, marcando un límite la línea de árboles a 3500 m de altitud: a) Vertiente Occidental de los Andes, b) Puna, y c) Vertiente Oriental de los Andes. En la Vertiente Occidental los árboles están restringidos a pequeños remanentes en micrositios protegidos y la diferenciación entre vegetación de los altos Andes y de mediana elevación es mucho menos notoria (Cabrera y Willink 1973, Gentry 1992, 1997, Valencia 1992). En la Puna (> 3500 m de altitud) está la montaña más alta de los trópicos, el Nevado Huascarán (6768 m) en el departamento de Ancash. La puna cubre casi todo lo largo del país, llegando por el noreste cerca a la Depre- 227 sión de Huancabamba (Gentry 1997a). La vegetación hasta c. 4200 m es predominantemente de pastos (gramíneas); de los 4200-4800 m predominan plantas postradas, almohadilladas y arrosetadas. Por encima de los 4800 es como lo anterior pero con plantas individuales dispersas, predominando el suelo desnudo con hielo (Young et al. 1997). La Vertiente Oriental (“ceja de montaña”) forma una continua franja boscosa entre 5003500 m. Es subdividida en tres zonas altitudinales: bosque premontano (500-1500 m), bosque montano bajo (c. 1500-2500 m) y bosque montano alto (c. 2500-3500 m). La zona más húmeda ocurre en el bosque montano bajo, donde se forma el cinturón de nubes, en donde los árboles tienden a ser más bajos y están cubiertos con epífitas. La diversidad de plantas vasculares decrece hacia el bosque montano alto (León et al. 1992, Young 1992, Gentry 1997a, Young y León 1997). Merece una especial atención la Depresión de Huancabamba en el Norte de Perú, en donde divergen los Andes Centrales y del Norte. Por ahí pasa uno de los principales tributarios del Amazonas, el río Marañón (Tarazona et al. 1998). Su vegetación es heterogénea, con bosques secos y arbustos en la partes bajas y en los valles (1000-1700 m). Ha servido como barrera y filtro importantes afectando la migración biótica en los Andes, así como un corredor este-oeste entre la cuenca Amazónica y la del Pacífico (Young y Reynel 1997). Amazonia Está ubicada al este de los Andes siendo la cota de los 500 m de altitud usada para dividir las regiones Amazónica y Andina (Gentry 1997a). Fitogeográficamente está subdividida en el bosque tropical lluvioso o hylaea (<200100 m de altitud, principalmente en el departamento de Loreto) y el bosque tropical de tierras bajas o bosque subtropical (200-500 m de altitud, principalmente en los departamentos de Ucayali y Madre de Dios) (Young 1992, Gentry 1997b, Gentry y León 1997, Ortiz-S 1997). 228 MALACOLOGÍA LATINOAMERICANA Ambientes Acuáticos En relación con el ambiente acuático continental, tres son los principales sistemas de drenaje (Young 1992, Ortega y Chang 1998) (Fig. 2): el sistema de drenaje del Pacífico que incluye todos los cuerpos de agua de la costa del Perú y los lagos y lagunas altoandinas y tributarios de los ríos que desembocan en el océano Pacífico, así como los cuerpos de agua formados por efecto antrópico (canales de regadío de chacras y haciendas, represas, lagunas de oxidación, acequias y alcantarillas de las grandes urbes). Este sistema está caracterizado por un régimen de descargas irregular y torrentoso con estacionalidad marcada en cuanto al estío y la época de lluvias. El segundo sistema es el del lago Titicaca ubicado a 3800 m.s.n.m que es más bien un sistema cerrado, pues si bien recibe algunos afluentes su principal fuente de agua son las lluvias invernales en la región altoandina y único desfogue es el río Desaguadero, el cual se adentra en Bolivia y termina en el lago Popó de alto nivel de salinidad. El tercer sistema es el amazónico que al igual que el sistema del pacífico se inicia del deshielo de los nevados altoandinos. El Río Amazonas empieza en las alturas del Colca hacia el llano amazónico discurriendo desde los 4100 metros hasta los 174 metros. En su trayecto en el Perú, la cuenca alta se diferencia notablemente de la baja. La primera está constituida por lagunas, riachuelos y ríos poco caudalosos de aguas frías y claras de escasa productividad; luego alrededor de los 1500 m.s.n.m. los ríos se hacen caudalosos y toman un color oscuro acarreando gran cantidad de minerales y limo que generan alta productividad primaria; finalmente al unirse el río Marañón y el Huallaga en el norte del Perú y posteriormente con el río Ucayali en el oriental poblado de Nauta (Loreto) se forma el Amazonas. En su trayecto y por el régimen estacional de sus principales afluentes (el río Marañón tiene dos crecidas, diciembre-febrero y abril-julio) se forman ambientes lénticos de diferente origen. En el llano amazónico los ríos caudalosos presentan por lo general un curso sinuoso formando meandros, estos por procesos de erosión y sedimenta- ción de los márgenes van a formar los llamados lagos de herradura o cochas, con el consecuente cambio de curso del río. MOLUSCOS MARINOS Antecedentes Los moluscos marinos del Pacífico Oriental han suscitado el interés científico de una manera más amplia y sostenida en el tiempo que lo que sucedió con los moluscos continentales, lo podemos comprobar no sólo con las publicaciones de artículos en revistas científicas, sino también con libros para un público más amplio. Tales publicaciones en su mayoría incluyen a especies que son registradas también en el Perú (e.g., Keen 1971, Abbott 1974, Kerstitch 1989). En 1909, Dall publicó una lista bastante completa para su tiempo, registrando 439 especies presentes en Perú. En los últimos 15 años, investigadores peruanos han actualizado la lista (Alamo yValdivieso 1987, 1997, Paredes et al. 1998, 1999) registrando más de 1000 especies; la publicación de Alamo y Valdivieso además incluye ilustraciones para un gran número de especies. Paredes et al. (1999) también hacen una reseña histórica desde las primeras colecciones hechas de Perú por Franco Dávila [17111786], hasta las trabajos más representativos dentro de la última mitad del siglo XX. Por ello nosotros no vamos a extendernos al respecto aquí, sino más bien vamos a comentar y complementar algunos otros datos. En lo referente a las colecciones científicas, el Museo de Historia Natural de la Universidad Nacional Mayor de San Marcos cuenta con material recolectado por los Drs. Koepcke en la década de 1950, y posteriormente por el Dr. Fortunato Blancas y otras personas. A partir de 1991 se ha reactivado el trabajo taxonómico, poniéndose especial empeño en la incorporación de material completo (incluyendo partes blandas) (Paredes et al. 1999). El Instituto del Mar del Perú (IMARPE) también posee una importante colección de moluscos, citada por Alamo y Valdivieso (1987, 1997). INTERNATIONAL JOURNAL OF TROPICAL BIOLOGY AND CONSERVATION 229 214 Otras (73) Mitridae 10 Lottiidae 10 Fasciolariidae 12 Ranellidae 12 Conidae 13 Nassariidae 13 Terebridae 16 Cancellaridae 17 18 Turridae 20 Crepidulidae 23 Olividae 24 Fissurellidae 26 Buccinidae Naticidae 27 Trochidae 28 40 Collumbellidae 47 Muricidae 1 10 100 1000 # de Especies Fig. 3. Diversidad de especies por familia de gasterópodos marinos. Están agrupadas en “Otras” las representadas por menos de diez especies. Biodiversidad En el mar peruano se ha reportado hasta el presente 1018 especies de moluscos, siendo la Clase Gastropoda la dominante (570= 55,99%), seguida por Bivalvia (370=36.35%). El grupo minoritario lo forman las Clases Cephalopoda (36= 3.54%), Polyplacophora (34=3.34%), Monoplacophora (3=0.29%), Scaphopoda (3=0.29%) y Aplacophora (2=0.2%). El listado de las especies se encuentra en el Apéndice 1. Entre los gasterópodos están representadas 90 familias, 17 de las cuales tienen 10 o más especies, predominando Muricidae (47 spp.) y Collumbellidae (40) (Fig. 3). Los bivalvos por su parte están representados por 54 familias, sobresaliendo Veneridae (57 spp.) seguida de lejos por Tellinidae (37) (Fig. 4). Las siguientes dos Clases más diversas, Cephalopoda y Polyplacophora, están dominadas por las familias Ommastrephidae (5 spp.) e Ischnochitonidae (5), respectivamente. El número de especies aquí indicado consideramos que es apenas una muestra de la riqueza del mar Peruano, puesto que muchos grupos están aún submuestreados, como es el caso de los gasterópodos sin concha. Distribución El mayor número de moluscos del mar peruano se distribuye en las aguas tropicales de la Provincia Panameña al norte de los 05° 40’S, existiendo una menor diversidad en el área de la Provincia Peruana. Entre las 1018 especies existen las restringidas a una de las dos provincias biogeográficas (572 en la Provincia Panameña y 107 en la Provincia Peruana), las que 230 MALACOLOGÍA LATINOAMERICANA Otras (44) 144 CORBULIDAE 11 PSAMMOBIIDAE 11 DONACIDAE 12 MACTRIDAE 13 15 PECTINIDAE 17 SEMELIDAE 25 MYTILIDAE 28 ARCIDAE 37 TELLINIDAE 57 VENERIDAE 1 10 100 1000 # de Especies Fig. 4. Diversidad de especies por Familia de Bivalvos marinos. Están agrupadas en “Otras” las de menos de diez especies. están en ambas (205), aquellas cuyo rango sobrepasa a la Provincia Peruana, llegando hasta la Magallánica (34) y las que llegan también al norte (19). Existen 73 especies endémicas para el Perú, y 4 compartidas con las Islas Galápagos; las de rango de distribución opuesto son muy pocas, están reportadas 4 especies cosmopolitas (Paredes et al. 1999). Cabe mencionar casos de distribución disyunta (al menos tentativamente), como ocurre con los gasterópodos Diloma nigerrima (Trochidae), Prunum curtum (Marginellidae) y Bulla punctulata (Bullidae), entre otros. La razón puede ser la naturaleza del sustrato (Purchon 1968) en el litoral que no es uniforme (playas arenosas, pedregosas, de canto rodado, fangosas y orillas rocosas), condiciones a las que se han adaptado los moluscos para ocupar la gran variedad de nichos que se presentan en estos ambientes. Con los cambios oceanográficos ocasionados por los eventos “El Niño” y “La Niña” se produce desplazamientos de las especies tropicales hacia la Provincia Peruana (Paredes et al. 1998a), los cuales todavía requieren ser explicados. Vacíos de información. La mayor parte del conocimiento que se tiene sobre los moluscos de la costa peruana corresponde a las orillas y playas así como los fondos someros. Prácticamente no hay información sobre los moluscos que integran el bentos de profundidad ni tampoco sobre los opistobranquios que son componentes del zooplancton marino (Gymnosomata y Thecosomata) de los cuales no existen muestras en las colecciones de las Universidades e IMARPE. En cuanto a micromoluscos gasterópodos se requiere urgentes estudios. Desde la década de 1980 contamos con material identificado (y confirmado por el Dr. J. McLean) de Tralia sp. (Ellobiidea), Pedipes sp., Assiminea sp. y Odostomia sp. (Pyramidellidae); recientemente nos ha sido posible empezar la revisión de Eatoniella sp. y Eatonina sp. basados en el trabajo de Ponder y Worsfold (1994) . Es necesario que así como actualmente se realiza monitoreos en el área de Pisco (Ica) y la Bahía de Ancón (Lima), estos sean también llevados a cabo en áreas que se consideran prioritarias como Puerto Pizarro (Tumbes), Paita (Piura), Chimbote (Ancash), Callao (Lima), Pucusana y San Juan de Marcona (Ica), Mollendo (Arequipa), Ilo (Moquegua) y La Yarada (Tacna). Ecología La distribución geográfica actual de los moluscos marinos está gobernada en su mayor parte por la naturaleza de las aguas (Corriente fría Peruana y Corriente cálida Ecuatorial). La distribución descrita líneas arriba tiene cambios temporales, que suceden cuando se presentan eventos “El Niño” y “La Niña”, con variaciones importantes de incremento o disminución de la temperatura de las aguas superficiales del mar, respectivamente (Tarazona y Valle 1998). Durante “El Niño”, unas especies de la Provincia Peruana, y con mayor intensidad en el área de Pisco, se ven favorecidas por la tropicalización, entre ellas están Argopecten purpuratus (Bivalvia, Pectinidae), Stramonita chocolata (Gastropoda, Muricidae) y Octopus mimus (Cephalopoda, Octopodidae). Según Arntz y Fahrbach (1996) estas especies podrían tener una capacidad genética que les permite soportar grandes variaciones de temperatura, logrando un desarrollo muy rápido y una mayor producción. Asimismo, los autores citados creen que la ausencia de estas especies en las aguas tropicales podría deberse a la competencia, los depredadores y los parásitos, INTERNATIONAL JOURNAL OF TROPICAL BIOLOGY AND CONSERVATION causas que habrían determinado la restricción de la distribución a la costa central y sur del Perú. Por el contrario, significa alta mortandad para otras especies como es el caso de los bivalvos Semele spp. (Semelidae), Mesodesma donacium (Mesodesmatidae) y Gari solida (Psammobiidae) en menor grado, por no tolerar el aumento de las temperaturas. En las orillas rocosas de la Provincia Peruana las comunidades de mitílidos se ven afectadas por el fuerte oleaje y el incremento explosivo de los depredadores como Stichaster striatus (“estrella de mar”). Las rocas desnudas son colonizadas rápidamente por las macroalgas lo cual impide el asentamiento y la recolonización de los mítilidos. Otras especies se favorecieron de la gran disponibilidad de alimento, bien sea por una alta reproducción de la presa, por ejemplo el bivalvo Argopecten purpuratus que benefició a Octopus mimus, o por la mortandad, como fue el caso de la especie carroñera Stramonita chocolata. Por otro lado, hay un desplazamiento de especies tropicales hacia el sur (Tarazona y Valle 1998). Paredes et al. (1998a) han reportado la presencia de 16 especies de gasterópodos y bivalvos tropicales, en el área de la corriente de Humboldt. Durante “El Niño” las larvas llegan favorecidas por las corrientes y los vientos, y es posible que posteriormente permanezcan al encontrar refugios apropiados en ciertas zonas como el área de Pisco (Ica). Esto podría explicar la distribución de los gasterópodos Bulla punctulata (Bullidae), Prunum curtum (Marginellidae) y Malea ringens (Tonnidae). Guzmán et al. (1998) han informado que en Antofagasta durante los últimos 15 años, en los eventos “El Niño” se han presentado estadios juveniles del caracol Bulla punctulata y los bivalvos Donax marincovichi (Donacidae) y Pteria sterna (Pteriidae). Es interesante notar que estos autores se refieren a los TAMAs (Termally Anomalous Molluscan Assemblages), que son resultado de la influencia de los eventos “El Niño”, según los paleontólogos. Han sido descritos TAMAs en Ilo (18°LS), Chimbote (14°LS) y Bahía de Antofagasta (23°LS, Chile). Los paleontólogos también sostienen (Rollins et al. 1986) que hace 5000 años, el límite entre la Provincia Pana- 231 meña y Peruana se encontraba 500 km al sur de su límite actual, explicando así la presencia del gasterópodos Cerithium stercusmuscarum (Cerithiidae) y el bivalvo Cryptomya californica (Myidae) en el área de Chimbote (Ancah). En relación con la distribución de las especies por hábitats, los estudios ecológicos son muy escasos (Vegas-Vélez 1963, Peña 1971, Paredes 1974, Paredes y Tarazona 1980, Tarazona et al. 1986). Se conoce mejor la diversidad en los hábitats de la zona litoral, en especial dentro de los límites de la provincia Panameña. Conservación Las principales amenazas para la biodiversidad la constituyen la destrucción de hábitats y la extracción indiscriminada. Definitivamente, muchas áreas están disturbadas, bien sea por acción natural o por la intervención humana, con la consecuente alteración de la diversidad malacológica. En los últimos 20 años, nosotros hemos apreciado en la costa norte del Perú que los dos últimos grandes eventos “El Niño” (1982-83 y 199798) han afectado la biodiversidad malacológica. Las lluvias torrenciales en Piura y Tumbes aumentaron grandemente el caudal de los ríos que desembocan en el mar y asimismo las grandes marejadas, cubriendo de arena las orillas rocosas de Mancora (Piura), Bocapán y El Rubio (Tumbes). Sólo como un ejemplo mencionaremos que en la década de 1970 pudimos recolectar numerosas especies de nudibranquios que no han vuelto a ser observados. Aunado a esto está otro factor disturbador, la contaminación. En Puerto Pizarro (Tumbes) la contaminación (ya antes de 1982) había afectado a los invertebrados y en especial a caracoles tan comunes como Natica spp. (Naticidae), Modulus catenulatus (Modulidae), Theodoxus luteofasciatus (Neritidae), siendo actualmente raros; el bivalvo Doscinia dunkeri, que era tan fácil encontrarlo excavando en la arena, es imposible encontrarlo ahora en la arena negra por la contaminación. Además se comprueba que los caracoles de la especie Cerithium stercusmuscarum (Cerithiidae) son muy resistentes y todavía abundan en la playa arenosa. 232 MALACOLOGÍA LATINOAMERICANA Ya se han mencionado los efectos de la contaminación en el área de Tumbes, resultado principalmente de la actividad langostinera. En otros lugares de la costa peruana las industrias pesquera, minera, avícola, etc. continúan deteriorando el ecosistema marino, sin que se haga nada para que se cumplan los pocos dispositivos legales acerca de la contaminación. Los lugares más críticos son Puerto Pizarro (Tumbes), Chimbote (Ancash), Pisco (Ica) e Ilo (Moquegua). Existe una importante actividad pesquera en torno a los moluscos marinos, pero se lleva a cabo sin un mayor conocimiento sobre la biología de las especies, con la excepción de Argopecten purpuratus (“concha de abanico”), lo que ha permitido el desarrollo de su cultivo (e.g., Wolff y Wolff 1983, Chávez 1987, Mendo et al. 1987, Yamashiro y Mendo 1988). Con respecto a la protección legal de moluscos marinos, de manera general lo están las poblaciones presentes en las dos únicas áreas naturales protegidas por el Estado: la Reserva Nacional de Paracas (Ica) (2176 km2) y el Santuario Nacional Manglares de Tumbes (30 km2), las que cubren una pequeña extensión del mar peruano (Rodríguez 1996). Importancia Aparte de la importancia ecológica que tienen los moluscos en los diferentes ecosistemas, desde un punto de vista práctico puede destacarse su amplia utilización desde tiempos de los primeros pobladores del Perú, que lo utilizaron en lo más variado como en alimentación, cebo de pesca, con fines religiosos, ornamentales, y para la elaboración de anzuelos y otros artefactos (e.g., Bourget 1990, Sandweiss y Rodriguez 1991). En los tiempos actuales sigue siendo una importante fuente de proteína, y la extracción es a nivel comercial. Flores et al. (1994) mencionan que entre 1983 y 1992 la extracción de moluscos marinos pasó de 20050 t a más de 120000 t, lo que constituyó cerca al 8% del total de la extracción de frutos del mar, constituida principalmente por peces pelágicos. MOLUSCOS DULCEACUÍCOLAS Antecedentes En el Perú han sido pocos los intentos por establecer la diversidad malacológica dulceacuícola, siendo el primero de ellos Morelet (1863) quien registra 27 especies. Es importante destacar los trabajos del siglo antepasado de Alcides d’Orbigny (1834- 1847), Reeve (1857), Hupé (1857) y Lea (1834), quienes sientan la base para el estudio de la malacología en el Perú. En el siglo pasado Haas (1955) publica una gran contribución al determinar la malacofauna del Lago Titicaca, determinando 13 nuevas especies para el Perú y estableciendo dicho cuerpo de agua como centro de endemismo de los hidróbidos peruanos. A partir de esa década podemos dividir las investigaciones sobre moluscos de agua dulce en tres grandes grupos. El primero incluye estudios malacológicos referentes a la taxonomía y algunos datos sobre su biología y ecología, entre los que cabe destacar a Arrarte (1953), Weyrauch (1963) y Bellido (1970). El segundo está dedicado al estudio de especies amazónicas potencialmente aprovechables en la alimentación destacando Campos (1973) con estudios sobre Anodontites trapesialis, así como Castillo (1974) y Villacorta (1976) en Pomacea canaliculata y Mayta (1978), Alcántara et al. (1996), Alcántara y Nakagawa (1996) en P. maculata. El tercer grupo, que incluye la mayoría de estudios, está dedicado a establecer la interacción hospedero-parásito (Larrea et al. 1990) lo que permitió el desarrollo del conocimiento de algunos grupos en particular, como los basommatóforos—Lymnaeidae, Physidae (Córdova et al. 1962, Bendezú y Landa 1973, Tantaleán et al. 1974), Planorbidae (Parense et al. l964)—y algunos hidróbidos entre los que están Aroapyrgus colombiensis y Heleobia cuminggi (Ito et al. 1982, Miyasaki 1978). Sin embargo, muchas de estas investigaciones no han llegado a uniformizar criterios sobre la distinción de especies ya que mayormente se basan en la morfología conquiolar, de INTERNATIONAL JOURNAL OF TROPICAL BIOLOGY AND CONSERVATION 25 25 Total spp. Spp. endémicas Géneros 20 20 15 15 10 5 7 20 15 6 3 5 3 4 3 0 3 2 0 3 01 32 1 3 11 211 Am pu lla rii da Pl e an or bi da Ly e m na ei da e Th ia rid ae e ae ae ae da id id id si yl er lin y i c c h Ph ro C An eu Pl 5 Total spp. Spp. endémicas Géneros 12 8 10 0 ae id bi o r yd H 20 4 7 6 2 1 0 e da di o op et yc M Pi si di id ae 26 25 H yr id ae 30 233 3 1 0 1 ae id er h Et 1 0 1 ae lid cu i b or C Fig. 5: Diversidad de especies y géneros por familia de gasterópodos dulceacuícolas. Fig. 6: Diversidad de especies y géneros por Familia de Bivalvos Dulceacuícolas. gran variabilidad y que genera confusiones (Malek 1985), lo que es resuelto en parte por el mismo autor para las especies de importancia médica, pero dejando aún muchos vacíos de información para las localidades peruanas. (57 spp.) sobre los pulmonados (32). Haciendo el análisis de la diversidad de especies por familias también predominan los prosobranquios, Hydrobiidae (26) y Ampullariidae (25), seguidas por la familia más diversa de los pulmonados, Planorbidae (20); las restantes 10 familias no tienen más de cuatro especies. La familia Hydrobiidae también es la más rica en número de géneros (7) (Fig. 5). En relación con los bivalvos, la riqueza de especies está concentrada en la familia Mycetopodidae (20), seguida por Hyriidae (12), de distribución en selva (vertiente oriental y amazonia). Las tres familias restantes no pasan de las seis especies (Fig. 6). Con respecto a las especies endémicas (36), predominan los hidróbidos (14) y ampulláridos (6). Los pulmonados no pasan de 9 especies endémicas en su conjunto. Entre los bivalvos se encuentran sólo 7 especies endémicas. Volviendo al total de especies, lo listado aquí corresponde a las especies consideradas válidas por el momento, pues los táxones descritos o reportados para Perú son más, que se encuentran dentro de las sinonimias respectivas. Un caso especial es el del género Pomacea que presenta un gran número de especies en nuestro país (23). El estado actual de la sistemática de los Ampullariidae neotropicales es aún deficiente y pueden esperarse cambios drásticos como lo ocurrido con el “complejo flagellata” de América Central que Paín (1964) redujo a una única especie con cuatro formas, incluyendo 45 nombres en su sinonimia (30 específicos y 15 subespecíficos). Pomacea canaliculata es otro Diversidad Los registros para Perú de especies de moluscos dulceacuícolas han estado dispersos en la literatura científica, pero hubo intentos de ponerlos dentro de una sola lista. El primero en hacerlo fue Morelet que en 1863 mencionó 27 especies (22 gasterópodos y 5 bivalvos). Investigadores peruanos en la década de 1990 reportan progresivamente 28, 34, y 76 especies de gasterópodos, así como 24 especies de bivalvos (Huamán et al. 1991, Vivar et al. 1993b, Paredes et al. 1998b). Sin embargo, la lista está aún incompleta. Nuestro estudio se ha basado en una cuidadosa revisión bibliográfica y de las colecciones Malacológicas del Laboratorio de Parasitología de la Facultad de Ciencias Biológicas de la Universidad Ricardo Palma, del Laboratorio de Fauna Dulceacuícola de la Facultad de Ciencias Biológicas de la Universidad Nacional Mayor de San Marcos y de la colección del Museo de Historia Natural de la Universidad Nacional Mayor de San Marcos. Como resultado tenemos un listado de 129 especies (Apéndice 2), con mayor diversidad en la clase Gastrópoda (89 especies, 68,99%) que en la clase Bivalvia (40 especies, 31,01%). Entre los gasterópodos predominan los prosobranquios 234 MALACOLOGÍA LATINOAMERICANA CUADRO 1 Distribución por regiones biogeográficas de los géneros de Moluscos Dulceacuícolas del Perú. Género Costa ( 0 - 1000 ) Vert. Occidental ( >1000 - 3500 ) Puna > 3500 Vert. Oriental 3500 - >500 Asolene (1) Marissa (1) Pomacea (23) [6] Aroapyrgus (1) Brachypyrgulina (1) [1] Heleobia (18) [11] Heligmopoma (1) [1] Ramphopoma (2) Strombopoma (2) [1] Tryonia (1) [1] Hemisinus (2) Melanoides (1) Pachychilus (3) Chilina (3) [2] Fossaria (1) Lymnaea (2) Pseudosuccinea (1) Physa (2) [1] Biomphalaria (12) [3] Drepanotrema (5) [1] Helisoma (3) [1] Gundlachia (3) [1] Callonaia (1) Castalia (4) Diplodon (3) [1] Diplodontites (1) [1] Paxyodon (1) Prisodon (1) Triplodon (1) Anodonta (4) [2] Anodontites (8) [2] Iheringiella (1) Leila (2) Monocondylaea (1) Mycetopoda (2) in X X X X X X X X in X in X X X X X X X X X X X X X X X X X X in X in X X in X X X X X X X in X X X Mycetopodella (1) Tamsiella (1) Barlettia (1) Eupera (2) [1] Pisidium (1) Sphaerium (3) Corbicula (1) X X X X X X X X X X X X X Amazonia 500 - 100 X X X X X X X X X X X X X X X X ( ): Total de especies; [ ]: # spp. endémicas; in: introducido X X X X INTERNATIONAL JOURNAL OF TROPICAL BIOLOGY AND CONSERVATION caso particular; consta de siete nombres específicos que se repiten en la bibliografía y que han recibido todas las combinaciones inimaginables: canaliculata, gigas, lineata, australis, insularum, haustrum, dolioides. Como resultado existe una total confusión dentro de este grupo. Toda esta situación es bastante bien explicada por Cazzanigga (1987) y Thiengo et al. (1992). Cazzanigga plantea la necesidad de establecer la delimitación específica sobre nuevas bases además del estudio meramente conquiológico, sugerencia aceptada por Thiengo en sus trabajos de anatomía interna de P. canaliculata y P. lineata . Una solución temporal que se propone es el establecimiento de P. canaliculata como supraespecie hasta que se cuente con suficientes conocimientos para asignar a las especies su real estatus taxonómico (Cazzanigga 1987). Distribución Para hacer el análisis de las distribuciones dentro del contexto de las regiones biogeográficas para Perú (Cuadro 1), no sólo utilizamos los datos levantados de la literatura sino también aquellos de las colecciones tomando ventaja de los ejemplares identificados hasta género, pues nos permitió cubrir un rango más amplio, debido a lo poco explorado que se encuentra el país con respecto a la fauna malacológica continental. El mayor número de géneros se encuentra en la Vertiente Oriental y Amazonía (33), en donde predominan los bivalvos. De ellos, Castalia, Paxyodon, Leyla y Mycetopoda son encontrados restringidos a ambas regiones, así como lo estaban Pomacea (Gastrópoda) y Anodontites, que ya han sido introducidos a la costa norte del país. Hay géneros restringidos a una de esas regiones; así, en la Vertiente Oriental están Pachychilus, Diplodon, Diplodontites, Anodonta, Mycetopodella, Monocondylaea, Barlettia y Eupera, mientras que Marissa, Asolene, Tryonia, Prisodon, Triplodon, Callonaia, Tamsiella y Iheringiella están solamente en la Amazonia. Después de la selva, la Costa es la más diversa (16 géneros), seguida por la Puna (11) y 235 la Vertiente Occidental (7); en toda esta área predominan los gasterópodos. La Vertiente Occidental no tiene ningún género restringido, sino más bien comparte con una (Aroapyrgus también está en la costa) o más regiones biogeográficas. Sólo un género (Chilina) está restringido a la costa, mientras que cinco (Brachypyrgulina, Heligmopoma, Rhamphopoma, Strombopoma y Pisidium—bivalvo) a la Puna. Sphaerium (bivalvo) es un género andino de más amplia distribución pues también es encontrado en la vertiente occidental y oriental. Es importante hacer notar que las especies endémicas están mayormente concentradas en la vertiente oriental y amazonia (sistema de drenaje del Atlántico) y en la puna (principalmente en el sistema de drenaje del Lago Titicaca). Hay géneros con distribución disyunta como Physa, Helisoma, Pseudosuccinea y Drepanotrema que no están en la Puna, y Heleobia y Gundlachia que no están en la vertiente occidental, mas sí en costa y puna. Un caso particular en estas distribuciones disyuntas lo dan las especies introducidas como Melanoides tuberculata, ausente en la puna y vertiente occidental, y las especies de selva Anodontites trapesialis y Pomacea maculata introducidas a la costa norte y centro-sur de Perú, respectivamente; también P. bidgesii (“Mystery golden snail”) es encontrada a lo largo de la costa, principalmente en acuarios y ambientes semicontrolados. En relación con la distribución geográfica de las especies, la mayoría (93 = 72, 09%) son de amplia distribución, estando restringidas al Perú sólo 36 (27,91%); una tendencia similar muestran las plantas acuáticas (Young y León 1993). La especie de más amplia distribución en el país es Heleobia cuminggi (Hydrobiidae). Las especies de los géneros Fossaria, Biomphalaria y Lymnaea tienen las más amplias distribuciones entre los basommatóforos, faltando Lymnaea sólo en la amazonia, seguidos por Helisoma y Physa que sólo faltan en la Puna (algunas especies fueron introducidos a la amazonia). La dispersión de estos dos últimos géneros es favorecida por el uso ornamental en acuarismo de Physa venustula y 236 MALACOLOGÍA LATINOAMERICANA Helisoma duryi, así como su gran poder de adaptación; P. venustula es cosmopolita y H. duryi es introducida. Ya se ha dicho que la sistemática de las especies dulceacuícolas aún no está muy bien dilucidada, aún los gasterópodos pulmonados mejor estudiados (familias Planorbidae, Lymaneidae y Physidae) presentan dificultades. La especie europea Lymnaea truncatula (Müller 1774) ha sido reportada en el Norte de Bolivia en zonas fronterizas al Perú (cerca al lago Titicaca) con base en técnicas moleculares, lo que coloca en situación incierta la presencia de L. diaphana y F. viatrix en la zona sur (Oviedo et al. 1995, Jabbour-Zahab 1997), más aún si consideramos que los limneidos reportados para el norte de Bolivia eran L. viatrix y L. cubensis. Asimismo, en el Norte de Chile se ha confirmado la presencia de L. Truncatula (Mas-Coma y Pointier com. pers.), con lo cual la distribución y registros taxonómicos de los limneidos peruanos podría cambiar drásticamente.En cuanto a los tiáridos (Arenas 1999, com. pers.) pone en duda el reporte de Tarebia granifera para la Costa Norte del Perú que hacen Vivar et al (1993a) y Huamán et al. (1993), por lo que no la mencionamos en la lista que aquí presentamos. Vacíos de información. La región costera es sin duda la mejor explorada, a juzgar por el mayor número de publicaciones con respecto a especies que involucran esta región, existiendo algunos vacíos como en la región del bosque tropical ecuatorial de Tumbes (Arenas com. pers.). La zona altoandina tiene aún algunos vacíos, fundamentalmente los departamentos de Apurímac y Ayacucho, donde sólo se conoce la presencia de Biomphalaria andecola y Fossaria viatrix (Arenas, observación personal; Huamán et al., 1994). En el sur del país, la zona mejor estudiada es sin duda el lago Titicaca, pues el trabajo de Haas (1955) ha sido respaldado por otros autores (Boss 1978, Dejoux 1992) estableciendo la validez de su aporte. Los mayores vacíos están fundamentalmente en la vertiente oriental de los Andes: en el nor-oriente (Cajamarca, San Martín y Amazonas) y en el sur-oriente (Puno y Madre de Dios), así como en la amazonia, principalmente los bosques de varzea (inundables) e igapó en Loreto, cerca a la frontera con Colombia. Ecología Las distribuciones geográficas de los moluscos dulceacuícolas del Perú pueden ser analizadas desde un punto de vista ecológico, es decir de las condiciones bióticas y abióticas a las que se ven expuestas en su hábitat particular. Hemos visto que gasterópodos y bivalvos no presentan la misma tendencia de distribución. El mayor grupo, tanto de gasterópodos como de bivalvos se encuentra en la Hoya Amazónica. Para el caso de los gasterópodos le siguen el sistema de drenaje del Lago Titicaca, y el muy pobre sistema de drenaje del Pacífico. Proporcionalmente, cosa contraria ocurre con los bivalvos que están representados por sólo una especie [Pisidium titicacence (Pilsbry 1924)] en el sistema de drenaje del Titicaca, mientras que en el Pacífico están cuatro especies. Los gasterópodos tienen mayor plasticidad ecológica—entendida como la habilidad para sobrevivir en una gran variedad de hábitats y condiciones extremas—que los bivalvos. A manera de ejemplo podríamos citar a Heleobia cuminggi registrada desde el nivel del mar hasta a más de 3000 m de altitud y en diversos tipos de ambientes acuáticos. Por el contrario, también los hay aquellos restringidos a altitudes extremas como Heleobia andecola a 4800 m y de Biomphalaria andecola a 4200 m, encontrados en pequeños cuerpos de agua, donde difícilmente se encontraría bivalvos. Analizando sus preferencias por regiones biogeográficas a un nivel taxonómico superior, son varios los géneros de gasterópodos encontrados en las cinco regiones biogeográficas, en tanto que los bivalvos están más restringidos (Cuadro 1). Dentro de este aspecto es importante la capacidad anfibia y de realizar estivaciones por tiempo prolongado de algunos gasterópodos como la mayoría de los prosobranquios (e.g., Pomacea) y algunos basommatóforos (e.g., Lymnaea), lo que les permite permanecer en cuerpos de agua temporales y en regiones con régimen hídrico INTERNATIONAL JOURNAL OF TROPICAL BIOLOGY AND CONSERVATION estacional marcado, en tanto que los bivalvos sólo pueden resistir la desecación por unas cuantas horas. En cuanto a la repartición del espacio en cuerpos de agua lénticos, los pulmonados tienden a habitar las aguas poco profundas donde la posibilidad de dispersión son mayores, mientras que los prosobranquios y los pulmonados endémicos tienden a vivir en aguas profundas donde el transporte pasivo por aves o agentes aéreos es menor, explicando el predominio en especies de los prosobranquios. Las especies del género Pomacea están restringidas a la región amazónica, siendo los limitantes de su distribución no sólo de naturaleza climática sino también la fisiografía fluvial. Los sistemas hidrográficos sencillos, con ríos aislados de lecho pedregoso, a veces intermitentes, no favorecen la dispersión de los Ampullariidae (Cazzanigga 1987). Un hecho que merece destacarse es la introducción en la costa de P. bridgesi y P. maculata para su utilización en acuarismo y programas de acuicultura, respectivamente (Mayta, 1978; Arenas et al., 1996; Eufrasio, 1999; CER Huachipa, 2000; FONDEPES, 2000). Especies del mismo género y de importancia económica como P. canaliculata y P. maculata, también han motivado estudios de aspectos de su bioecología, tanto en estado natural como en laboratorio (Castillo 1974, Villacorta 1976, Mayta 1978, Alcántara et al. 1996, Alcántara y Nakagawa 1996). Los bivalvos amazónicos presentan una fuerte variabilidad inter e intra específica debido a la presencia de estadios larvarios parásitos que utilizan peces dulceacuícolas para su desarrollo, que se dispersan o migran en las cuencas hidrográficas a diversos hábitats de condiciones ecológicas distintas. Es por ello que su ordenamiento taxonómico debe basarse en el estudio de las partes blandas como recomiendan Valdivia et al. (1995), que citan para la región amazónica y altoandina 4 familias, 17 géneros y 25 especies. Fuera de la región amazónica es encontrada Anodontites trapesialis, en la costa norte del país, a donde ha sido introducida para utilización en acuicultura en cultivos 237 integrados de peces y patos. De esta especie se conoce sus preferencias de sustrato y presión batimétrica (Campos 1973). Se tiene datos más precisos sobre la ecología de moluscos de la costa. Así, Larrea (1989) brinda algunos aportes a la ecología de los limneidos señalando su asociación con las macrofitas acuáticas y su tolerancia a aguas con sustancias en descomposición. Vivar et al. (1996) realizan un importante estudio sobre los factores fisicoquímicos que afectan la distribución de los gasterópodos de las lagunas de Villa (Lima), señalando que la salinidad es el principal factor que restringe la misma, siendo mejor tolerada por Heleobia cuminggi. Vivar et al. (1998) realizan una de las contribuciones más importantes al brindar algunos datos sobre la ecología de los moluscos de los pantanos de Villa y su conservación. Arenas (com. pers) estudió los moluscos de la desembocadura del río Lurín (Lima), encontrando a Melanoides tuberculata en la zona intermareal. Asimismo, reseñan que esta especie soporta grandes rangos de sulfuro de hidrógeno, pH y carbonatos. Otro aspecto importante es la realización de estudios de dinámica poblacional en laboratorio para Fossaria viatrix, Pseudosuccinea columella y Physa venustula para su utilización en programas de control biológico (Larrea et al. 1998, Velásquez et al. 1999). El hombre también ha intervenido en la configuración actual de las distribuciones bien sea por introducciones directas o indirectas. Algunas veces estas introducciones pueden ser benéficas, tal es el caso de los caracoles introducidos en otros países para control biológico de especies hospederas de tremátodos (Perera et al. 1991, Pointier y Delay 1995, Perera y Walls 1996). Sin embargo, estas introducciones que aparentemente son benéficas, pueden ser contraproducentes, pues si bien es cierto que se puede disminuir las poblaciones del hospedero, disminuyendo la incidencia de la enfermedad, la malacofauna autóctona puede ser afectada; asimismo otras especies de moluscos dulceacuícolas introducidos para acuicultura pueden convertirse en serias plagas de cultivos como es el caso de Pomacea canaliculata y P. bridgesii en Filipinas y Hawaii (Mochida 1988, Cowie 1993). En el Perú algunas introducciones parecen 238 MALACOLOGÍA LATINOAMERICANA ser la causa de la disminución de poblaciones o desaparición de las especies, pues luego de la introducción de Melanoides tuberculata a nuestro país (vía desconocida), aunada a la progresiva degradación de los ambientes dulceacuícolas, han empezado a desaparecer especies antes comunes. Así, en la Zona Reservada de los Pantanos de Villa (Lima) ya no es posible encontrar a Ancylus concentricus, Drepanotrema limayanum, Helisoma trivolvis, Helisoma duryi y Physa peruviana [Vivar et al. 1998]. Otro tanto sucede en el río Lurín (Arenas com. pers.) con las especies Physa peruviana, Drepanotrema cimex, Helisoma peruvianum, Helisoma trivolvis y Heleobia cumingii. La especie invasora Melanoides tuberculata es en la actualidad el gasterópodo más conspicuo en los cuerpos de agua de la costa peruana (Arenas et al. 1999a, Arenas com. pers.). Desde su introducción en la década de 1970 ha extendido su distribución vertiginosamente colonizando en su totalidad la costa Peruana y recientemente ha sido registrada en algunas localidades del centro y nor-oriental de la selva peruana (Arenas et al. 1999, Arenas com. pers.). Los mecanismos que envuelven esta fascinante y violenta expansión han sido tratados en detalle, conociéndose que M. tuberculata tiene características biológicas y reproductivas de un buen invasor: es partenogenético y ovovivíparo lo que le permite la rápida dispersión a través de un solo individuo. Por otro lado su estrategia de crecimiento K, de longevidad y tasa de reclutamiento elevadas le permite desplazar poblaciones de moluscos pulmonados (Pointier y Delay 1995). Otro factor importante en la dispersión ha sido la introducción de plantas comercializadas por acuaristas, contando además con una gran plasticidad ecológica que le permite vivir en una gran variedad de hábitats (Pointier y Delay 1995, Arenas et al. 1999, Arenas com. pers.). Esta especie no ha colonizado las zonas altoandinas y andinas. Conservación En el Perú, según el ámbito de acción de La Ley 27308, Ley Forestal y de Fauna Silvestre y el Decreto Supremo 013 –99-AG, están prote- gidas las especies que desarrollen alguna etapa de su reproducción fuera del agua (aquí están incluidos solamente los ampuláridos en el caso de caracoles dulceacuícolas), estando prohibida su extracción y comercialización a excepción de aquellos especímenes que provengan de zoocriaderos, aunque el control ciertamente no es efectivo. Asimismo, no existen normas legales para la conservación de moluscos estrictamente dulceacuícolas, estando protegidas las poblaciones de estos últimos solamente en las unidades de conservación del Sistema Nacional de Areas Naturales Protegidas por el Estado. Sin embargo no hay un control estricto, tal es así que al menos en tres áreas protegidas (Zona Reservada Pantanos de Villa, Santuario Nacional Lagunas de Mejía y Zona Reservada de Tumbes) ya se ha establecido el caracol introducido Melanoides tuberculata (Vivar et al. 1998, Arenas et al. 1999, Arenas com. pers.). Por otro lado, muchas especies autóctonas están siendo amenazadas por la contaminación de los cuerpos de agua, en especial aquellos con fuerte presión humana como el Lago Titicaca y los Pantanos de Villa y aquellos sometidos a los impactos negativos de la actividad minera como el Lago de Junín . Importancia Los moluscos son un elemento fundamental de la biota límnica por su rol como descomponedores secundarios en la autodepuración de los cuerpos de agua eutrofizados, así como por ser una de las principales fuentes de alimento de las comunidades de peces, algunas aves y reptiles, por su alto índice de producción somática. Esta cualidad ha sido también reconocida por las poblaciones humanas que han utilizado en su alimentación gasterópodos y bivalvos amazónicos desde épocas Prehispánicas, entre ellas están especies de gasterópodos del género Pomacea, de las que existen vestigios de conchas en el sitio arqueológico de Ullpa Caño (San martín) de 2000 años de antigüedad (Arenas y Vivar 1997, Arenas com. pers.). En la actualidad siguen siendo usadas las especies de Pomacea, INTERNATIONAL JOURNAL OF TROPICAL BIOLOGY AND CONSERVATION las que son aptas para el cultivo, pues presentan una significativa capacidad reproductiva, son omnívoras (Villacorta 1976, Mayta 1978), y tienen un valor proteico de 8,12 %, (Castillo 1974). Otra especie consumida es Anodontites trapesialis. Este bivalvo goza de buena aceptación, principalmente en el Huallaga central, donde se consume preferentemente en la forma de seco salado, tiene un alto contenido proteico (15.8%) (Campos 1973), pero su crecimiento es muy lento, por lo que no se recomienda su explotación y consumo masivo (Mansur, com. pers.). Recientemente se ha estado ensayando sistemas de policultivo de A. trapesialis, junto con peces (Oreochromis niloticus “tilapia”) y patos en la costa peruana, en los departamentos de Piura y Lambayeque, con la consecuente introducción de la especie, que parece estar bien adaptada, dando óptimos resultados en esta actividad acuícola (Arenas com. pers.). Otros aspectos importantes de su interacción con el hombre y que han contribuido decididamente en el estudio de este grupo son, por un lado su rol como hospederos intermediarios de Tremátodes y Nemátodes que afectan la salud del hombre y de su ganado, y por el otro su papel como plaga de cultivos (Cazzanigga 1987, Cowie 1993, Arenas y Vivar 1997). Vivar y Larrea (1991) mencionan a Fossaria viatrix, Pseudosuccinea columella y Lymnaea diaphana como hospederos de Fasciola hepatica, a Biomphalaria tenagophila y Aroapyrgus colombiensis como hospederos de Schistosoma mansoni, aunque estas dos últimas especies no han sido encontradas infectadas naturalmente en el Perú. Las comunidades de moluscos dulceacuícolas pueden ser también utilizadas como bioindicadores para la caracterización de cuencas, pues su diversidad, equidad y dominancia pueden diferenciar las regiones de mayor impacto urbano e industrial de los cuerpos de agua (Vargas et al. 1999). Asimismo, son indicadores ambientales (e.g., Pomacea spp.) en la contaminación por metales pesados (Vieira et al. 1995), constituyendo una alternativa para la ejecución y control de programas de impacto ambiental. 239 MOLUSCOS TERRESTRES Antecedentes El aporte al conocimiento de los moluscos terrestres del Perú ha sido hecho por relativamente pocos autores. El primer y único listado de especies registradas en el país fue publicado por Morelet (1863), quien reportó 190 táxones. Las especies descritas posteriormente aparecieron en diversas obras científicas, principalmente en los idiomas alemán, francés e inglés. Las recolectas del material peruano eran realizadas principalmente por viajeros extranjeros que usualmente recolectaban también otros grupos de organismos, como insectos por ejemplo (Clench 1945, Dance 1966, Breure 1973, Lamas 1980a, 1980b). Entre ellos destacan Castelnau [1812-1880], Cumming [17911865], d’Orbigny [1802-1857], Philippi [18081904], Raimondi [1826-1890], Tschudi [18181889], Warscewicz [1812-1866], Jelski [18371896] y Sztolcman [1854-1928]. Entre los autores que sobresalen en el siglo pasado está el zoólogo alemán Wolfgang K. Weyrauch [1907-1970], quien trabajó en el Museo de Historia Natural de la Universidad Nacional Mayor de San Marcos (MUSM) entre 1938 y 1961, y posteriormente radicó en Argentina [1962-1970] trabajando en la colección de moluscos del Instituto Miguel Lillo, donde continuó describiendo especies de América del Sur, particularmente del Perú (Weyrauch 1967). Describió un total de 136 especies y subespecies peruanas, cuyos holotipos, en su mayoría, están depositados en el Museo Senckenberg de Frankfurt (Zilch 1970). Parte del material obtenido en sus recolectas metódicas, correspondiente a especies nuevas, fue enviado fuera del país para su estudio y descripción por destacados malacólogos como Pilsbry y Haas en Estados Unidos, Zilch en Alemania, y Loosjes y Loosjes-Van Bemmel en Holanda. Lamentablemente, en la colección de Moluscos del MUSM quedó muy poco de ese material. Un zoólogo peruano, Angel Flórez [1923-1981], Profesor de la Universidad San Antonio Abad del Cuzco, también contribuyó, aunque si bien no hizo gran número 240 MALACOLOGÍA LATINOAMERICANA 1000 424 Especies Géneros 75 100 55 33 15 25 17 56 30 20 19 18 13 13 12 8 10 4 2 5 2 4 3 2 2 1 Cl au sil id ae Sy str op H hi elm id ae in th og ly pt id ae He lic in id ae N eo cy clo tid ae Su bu lin id ae Or th ali cid ae ae id ul lim Bu ae ae ae 9) id id id (1 s n p i s p o e a r a ro a tr m la O Ch Ca So Fig. 7. Diversidad de especies y géneros por Familia de Gasterópodos Terrestres. Se agrupa en “Otras” a las familias con menos de 10 especies. de descripciones de especies nuevas (Flórez 1968, 1970, 1978, 1979), sí formó una importante colección de referencia del sur del país, que ahora se encuentra depositada en el MUSM. La colección científica de referencia de moluscos del MUSM fue iniciada por Weyrauch con material recolectado por Raimondi, el propio Wayrauch, y otros que aportaron en diferentes medidas, mereciendo especial mención Hans y María Koepcke y Fortunato Blancas. En 1983 la colección del MUSM fue reactivada y desde entonces ha crecido considerablemente, gracias a los aportes principalmente de colecciones privadas como las de Pedro Hocking (Lima) y Angel Flórez (Cuzco), y de expediciones apoyadas por el Consejo Nacional de Ciencia y Tecnología (CONCYTEC), y los Programas BIOLAT (Smithsonian Institution) y BIOTROP (Univ. Kansas) de los EE.UU. Ahora, el MUSM conserva algún material tipo, especialmente de las especies de Neniinae (Clausiliidae) descritas por Loosjes y Loosjes-Van Bemmel (1989). Existen otras dos instituciones en el Perú que custodian algún material de moluscos terrestres: la Universidad Nacional San Antonio Abad del Cuzco y la Universidad Nacional de Trujillo. Lamentablemente, la mayor parte del material en dichas colecciones aún corresponde básicamente a conchillas, pero se va incrementando paulatinamente el material preservado en alcohol. Gran parte del material recientemente incorporado a tales colecciones corresponde a nuevos registros para el país y ciertamente a nuevas especies para la ciencia (Ramírez 1993, 1996). Diversidad El Perú es un país megadiverso como lo indicamos líneas arriba, pero aún faltan muchos lugares por recorrer y especies por descubrir y describir para la ciencia, como lo vaticinaba Solem (1984) para moluscos terrestres del Neotrópico. Por otro lado, no existe una publicación que compendie lo conocido. En la última década del siglo XX fueron publicadas listas de familias y géneros presentes en el Perú con el número de especies para cada una de ellas (Paredes et al. 1998b, Ramírez 1997). Aquí presentamos la lista de especies basada en una búsqueda exhaustiva de material bibliográfico, lo que incluye descripciones originales, compendios, etc., que sería largo citar aquí. En el ordenamiento taxonómico de las categorías supragenéricas se ha seguido fundamentalmente lo propuesto por Boss (1982) y Solem (1978), y para géneros a Vaught (1989) con modificaciones según Thompson (1980) para los Ceresidae, Bartsch y Morrison (1942) para los INTERNATIONAL JOURNAL OF TROPICAL BIOLOGY AND CONSERVATION Cyclophoridae [=Neocyclotidae], Thomé (1975) para los Veronicélidos, Leme (1973) para los Strophocheilacea, Breure (1979) para los Bulimulidae, Richardson (1993) para los Bulimulacea, y Ramírez (1993) para los Systrophiidae. Los táxones que hemos encontrado registrados para Perú son 957, pero en la lista se enumeran 763 especies, estando la diferencia dentro de las sinonimias (Apéndice 3). En el último compendio de especies de moluscos del mundo (Goto y Poppe 1996) aparecen sólo 503 (52,56%) de esos 957 táxones. En un contexto global vemos que las 763 especies reconocidas para Perú constituyen el 2,54 % del total mundial, calculado en 30000 (Solem 1984b). Para América del Sur se calcula unas 2000 especies (Boss 1971), de las cuales el Perú tiene el 38,15 %, comparativamente mucho más que lo reportado para países como Argentina (238) (Fernández 1973) y Chile (150) (Stuardo y Vega 1985). Este número resulta significativo comparado con las 850 especies estimadas para toda América del Norte (Solem, 1984b). Están presentes 49 prosobranchios y 714 pulmonados (7 systelommatóforos y 707 stylommatóforos). En ellos están representados 30 familias y 94 géneros. La mayor diversidad de especies recae en la familia Bulimulidae (424), seguida por Clausiliidae (75) y Systrophiidae (55). Un importante número de familias (19) está representado por menos de 10 especies (Fig. 7). En cuanto a géneros, la familia Clausiliidae ostenta el mayor número (17) seguida por Bulimulidae (15). Hubo varios táxones referidos en la literatura como presentes en Perú, pero que en la actualidad corresponden a otro país, o que taxonómicamente no pudieron ser ubicados adecuadamente, no habiendo certeza en la localidad; ninguno de estos casos se tomó en cuenta al sacar el número total de especies de moluscos terrestre para Perú. Entre los que corresponden a otros países están cuatro táxones mencionados por Morelet (1863), tres de ellos de la familia Bulimulidae y que según la clasificación actual (Breure 1979) son Bostryx affinis (Broderip y Sowerby 1832), Plectostylus chilensis (Lesson 1826) y Rhabdotus pallidior 241 (Sowerby 1833), y la otra es de la familia Helminthoglyptidae, Averallia coactiliata (Férussac 1838). Las dos primeras especies se encuentran en Chile, la tercera está dentro de un género que se distribuye en México y sur de los Estados Unidos, y para A. coactiliata se menciona como localidad “circa Touspan in Peruvia (Desh.)” que correspondería más bien a la localidad mexicana de Tuxpán, en Veracruz (Selander y Vaurie 1962). Adicionalmente, el género Averallia es de distribución centroamericana (Pilsbry 1894). Otra especie de Morelet en similar situación es Varicella peruviana (Lamarck 1822) de la familia Oleacinidae, ya puesta en duda por Pilsbry (1907-1908) quien dice que debe ser más bien de Haití o Jamaica. Hidalgo (1893-1900) cita para Lima a la que ahora se conoce como Leiostracus (Leiostracus) vittatus (Spix, 1827), pero que tiene distribución en Brasil, al otro lado de la Cordillera de los Andes (Bruere 1979). Goto y Poppe (1996) tienen a Solaropsis gibboni (Pfeiffer 1846) para “Perú”, pero las referencias con localidades específicas que hemos consultado la mencionan para Colombia y Ecuador, aunque su presencia no estaría del todo descartada pues el género se distribuye también en Perú. Finalmente, Scutalus (Kuschelenia) tupacii (d’Orbigny 1835), reportada para Lima y Cuzco, fue ya descartada por Weyrauch (1967). Por otro lado, los táxones de los que no hay certeza sobre su ubicación son: Achatina kercadonis Grat., Achatina cochlea Rv., Glandina donellii King y Bulimus septenarius Brug. mencionadas por Morelet (1863), Achatina flammigera Férussac mencionada por Drouët (1859) y Lubomirski (1880), y Bulimulus (Lissoacme) pullatus (Brod.) reportada por Haas (1933). Haciendo un análisis de lo descrito hasta el presente, nos remontamos hasta 1774. Lo descrito a finales del siglo XVIII en realidad no corresponde a especies propiamente de Perú, son más bien de amplia distribución o introducidas, como es el caso de Vallonia pulchella y Helix aspersa—ambas descritas por Müller en 1774—, respectivamente. En el siglo XIX hubo una efervescencia en publicación de nuevas especies para 242 MALACOLOGÍA LATINOAMERICANA 350 # de taxa descritos 300 250 200 150 100 50 0 1774 - 1800 1801 - 1850 1851 - 1900 Lapso de tiempo 1901 - 1950 1951 - 1999 Fig. 8. Frecuencia de descripción de taxa de moluscos terrestres presentes en Perú. América del Sur, así tenemos que de las presentes en Perú, 178 táxones fueron descritos en la primera mitad y 301 en la segunda mitad de tal siglo. Durante el siglo XX encontramos menor número de táxones nuevos, 209 dentro de los primeros cincuenta años, y 260 táxones en la segunda mitad del siglo (Fig. 8). Los que aportaron mayoritariamente durante 1801-1850 fueron Férussac, Lamarck, Sowerby, Broderip, d’Orbigny, Pfeiffer, Philippi y Reeve. Aquellos que sobresalen durante 1851-1900 son Pfeiffer, d’Orbigny, Hupé, Albers, Moricand, Morelet, Philippi, Hidalgo, Lubomirski y Pilsbry. En la primera mitad del siglo XX continúa aportanto grandemente Pilsbry (Clench y Turner 1962), junto con Preston, Wagner, Dall, Polinski, Bartsch y Morrison, Da Costa, y Haas, entre otros. Los que aportaron en las descripciones de nuevos táxones para Perú fueron muy escasos en la segunda mitad del siglo XX, sobresaliendo entre ellos Haas (Solem 1967), Zilch, Weyrauch (Zilch, 1970), Loosjes y Loosjes-van Bemmel (1966, 1984, 1989), y Breure (1979). Distribución Para el análisis de la distribución levantamos información geográfica de la literatura así como de material en colecciones científicas. En el Perú fueron revisadas las del Museo de Historia Natural de la Universidad Nacional Mayor de San Marcos, de la Universidad Nacional de Trujillo y Universidad Nacional San Antonio Abad del Cuzco. En los Estados Unidos fueron revisadas tres importantes colecciones: National Museum of Natural History (Washington), Academy of Natural Sciences de Philadelphia (Filadelfia) y el Field Museum of Natural History (Chicago). Aunque buen número del material corresponde a especies nuevas, los datos obtenidos de ellos nos dieron excelente información a nivel de géneros que inclusive nos permitió cubrir mayor área geográfica de lo que es posible con el número de especies descritas. En el Cuadro 2 se presenta la distribución de los géneros dentro de las cinco grandes regiones fitogeográficas propuestas por Gentry (1982, 1997a). Los moluscos terrestres son encontrados en todas las regiones del país, desde la costa desértica hasta el bosque tropical húmedo, pasando por los altos Andes (Morelet 1863, Fischer 1887, Jaeckel 1969, Cabrera y Willink 1973, Parkinson et al. 1987, Abbott 1989). En las vertientes orientales de los Andes está la mayor diversidad de géneros, seguida de lejos por la vertiente occidental, la amazonia y la costa; la más pobre es la región de la puna (Cuadro 2). La mayoría de especies registradas en Perú tienen distribuciones restringidas al país. Si analizamos estas distribuciones en categorías superiores, es posible reconocer varios géneros endémicos. Así, destacan Neopetraeus, INTERNATIONAL JOURNAL OF TROPICAL BIOLOGY AND CONSERVATION 243 CUADRO 2 Distribución por regiones biogeográficas de los géneros de moluscos terrestres del Perú. Género Bourciera Costa 0 - 1000 Vert. Occidental >1000 - 3500 Puna > 3500 (1) Vert. Oriental 3500 - >500 Amazonia 500 - 100 X Helicina (24) X X X X X Aperostoma (14) X X Calaperostoma X Archecharax (3) (3) Incerticyclus (1) ? Lagocyclus (2) ? Adelopoma (1) X Colosius (1) *Heterovaginina (1) X X X Latipes (1) X *Montivaginulus (1) X Novovaginula (1) Sarasinula X (1) X Vaginulus (1) X Pupoides (2) X Bothriopupa (1) X Gastrocopta X (4) Pupisoma (1) X Vallonia (1) in *Andinia (1) X X X X X X X X in X *Andiniella (5) *Bequaertinenia X (1) X X X Columbinia (12) X *Ehrmanniella (3) X X *Gracilinenia X (2) *Hemicena (1) X Incania (7) X *Peruinia X (6) *Pfeifferiella (3) *Pseudogracilinenia X (2) X *Steatonenia (1) (7) Temesa (21) X X *Gibbonenia (1) *Steeriana X X X X X X *Weyrauchiella (1) X X X ? X *Zilchiella (1) X Strophocheilus (1) X Continúa… 244 MALACOLOGÍA LATINOAMERICANA CUADRO 2 (… continuación) Distribución por regiones biogeográficas de los géneros de moluscos terrestres del Perú. Género Costa 0 - 1000 Megalobulimus (9) Vert. Occidental >1000 - 3500 Puna > 3500 X Vert. Oriental 3500 - >500 Amazonia 500 - 100 X X Omalonyx (1) X Succinea (4) X X X Ceciliodes (1) X Lamellaxis (1) X X X Leptinaria X X X (3) X Obeliscus (8) X X Opeas (5) X X Subulina (2) X X X X X X Streptartemon (1) X Austroselenites (2) Drepanostomella (2) X Guestieria (2) X Happia (2) X X Miradiscops (4) X X X Systrophia (28) X Tamayoa (1) Wayampia (10) X *Zilchistrophia (3) ? X X X X X X X X X X X X X X X Ammonoceras (3) X Bostryx (141) X Bulimulus (8) X Drymaeus (123) ? Dryptus (1) X *Llaucanianus (1) X X ? X ? X X X X X X Naesiotus (18) X X X X *Neopetraeus (15) X *Newboldius (4) X X Plekocheilus (10) X X Scutalus X Plectostylus (1) (51) Simpulopsis (1) X X X X X *Sphaeroconcha (1) X Stenostylus (3) X Thaumastus X (38) Cyclodontina (1) X X X X X X Continúa... INTERNATIONAL JOURNAL OF TROPICAL BIOLOGY AND CONSERVATION 245 CUADRO 2 (... continuación) Distribución por regiones biogeográficas de los géneros de moluscos terrestres del Perú. Género Costa 0 - 1000 Vert. Occidental >1000 - 3500 Puna > 3500 Corona (2) Orthalicus (5) Porphyrobaphe (1) X X X (6) (2) Limax (1) X X X X X in in (2) (1) in in X X Labyrinthus (8) (10) X X X X X X X X X X X X X X X X Solaropsis (3) Epiphragmophora (32) Leptarionta X in (7) Isomeria (4) Psadara in in Oxychilus (1) Euglandina in X in Milax (1) Hawaiia X X Zilchogyra (3) Habroconus X X Ptychodon (4) Deroceras Amazonia 500 - 100 X Sultana (10) Radiodiscus Vert. Oriental 3500 - >500 X (1) Helix (1) Total de Géneros Válidos= 94 in X X X X in in Total de especies: (755) + 8[I.s.]) = 763 *: endémico; ( ): total de especies; ?: localidad no precisada; in: introducido; I.s.: Incertae sedis Newboldius, Llaucanianus, Sphaeroconcha de los bulimúlidos (Breure 1979); Zilchistrophia de los sistrofiidos (Weyrauch 1960, Ramírez 1993); y 12 de los 16 géneros de clausiliidos en Perú. Coincidentemente, todas las distribuciones de estos endémicos se encuentran en la zona andina, predominando en selva alta (vertiente oriental). A nivel de familia no existe ninguna endémica para Perú, pero hay una subfamilia (Neniinae, familia Clausiliidae) que está mejor representada aquí que en los otros países del Neotrópico (Loosjes y Loosjes-Van Bemmel 1984, Szekeres 1984). Por otro lado, la mayoría de las especies de más amplia distribución (incluyen también a otros países) están en la amazonia (e.g., Megalobulimus popelairianus, Sultana sultana), igual como sucede con otros miembros de la biota neotropical, como árboles y lianas (Gentry 1986). Vacíos de información. Las especies registradas para el Perú en gran medida no son el resultado de una búsqueda exhaustiva y sistemática; apenas unos pocos lugares han sido trabajados de esa manera, con lo que muchos grupos quedan submuestreados, tal 246 MALACOLOGÍA LATINOAMERICANA es el caso de los veronicéllidos, sistrofiidos y micromoluscos (e.g., vertiginidos, pupillidos), por citar algunos (Ramírez 1993, 1996, Paredes et al. 1998a). Analizando la posición geográfica de tales localidades, podemos notar que están ubicadas mayormente cerca a vías de comunicación terrestre. Fuera de ellas, el vacío de información es prácticamente total, sobresaliendo el bosque tropical húmedo. Otra zona de amplio vacío de información es la suroccidental del país, paradójicamente con mejores vías de comunicación (Ramírez 1996). Biogeografía Histórica No es mucho lo que se puede decir sobre la biogeografía histórica de los moluscos terrestres del Perú debido a la falta de información. Pero con base en las distribuciones presentadas y la historia geológica del país podríamos intentar un comentario. Perú es parte de América del Sur. La tectónica de placas nos indica que ni su posición geográfica, ni sus límites han sido los mismos en todos los tiempos. Hasta el Mesozoico fue parte suroccidental del supercontinente Pangea, que entonces se dividió en Laurasia y Gondwana. América del Sur se separó de Africa hace 100 millones de años (Cretáceo Superior) y su conexión con América del Norte mediante el Istmo de Panamá fue mucho más tarde, hace 5,7 m.a., al final del Terciario (Plioceno) (Raven y Axelrod 1974). Adicionalmente a estos cambios, la formación de la cordillera de los Andes—que alcanza su forma actual al final del Plioceno (Young 1992)—trae un componente más a la biogeografía de la biota del Perú. Por un lado se amplía la superficie y el rango altitudinal, y por el otro, junto con la corriente de Humboldt se forma un gran desierto en la costa occidental, y la región amazónica tiene toda una historia de inundación y sedimentación, con el drenaje final hacia el océano Atlántico (Gentry 1997a). En el Perú también se encuentra la parte más baja de la cordillera de los Andes, el Abra de Porculla (2 145 m) y la llamada Depresión de Huancabamba (Dpto. Piura), que vino a ser una barrera para especies andinas, y más bien un puente para las amazónicas (Young y Reynel, 1997). Para Perú están registradas 30 familias de moluscos terrestres. Entre ellas hay familias muy antiguas y que probablemente alcanzaron su cúspide durante el Paleozoico, es decir que estaban distribuidas en la Pangea, como es el caso de los Vallonidae, Pupillidae, Ferussaciidae, Succineidae, y Helicinidae. Pilsbry (1911) menciona que una de las características remarcables de la fauna sudamericana es el escaso número de los Orthurethras primitivos, representado solamente por unos pocos Pupillidae y Ferussaciidae, “probablemente derivados de América Central en el Terciario, y cercanamente relacionados a especies Antillanas y Mexicanas”. Los grupos de procedencia gondwánica son los Strophocheilacea, Bulimulacea, Systrophiidae, Veronicellidae y Charopidae (Pilsbry 1911, Bruggen 1967, Breure 1979, Ramírez 1993), mientras que los de procedencia norteña son Diplommatinidae, Neocyclotidae, Helmintoglyptidae, Clausiliidae y Spiraxidae (Pilsbry 1911, Parodiz 1980, 1982). La distribución de la mayoría de las familias mencionadas son amplias (Peake 1978), pero la familia Clausiliidae, de distribución mundial, es la única restringida a los Andes con excepción del género Columbinia (Cuadro 2). En el Neotrópico, dicha familia tiene una subfamilia (Neniinae) endémica, con su mayor diversidad en el Perú (Loosjes-Loosjes-van Bemmel 1966, Parodiz 1982). Asimismo, es la que tiene el mayor número de géneros endémicos y es el segundo grupo más diverso en el Perú (Cuadro 2, Fig. 7). Es necesario hacer notar además que en relación con los Andes también está el mayor centro de endemismo en el Perú, no sólo para moluscos sino también para otros invertebrados (Lamas 1982, Silva 1996), para plantas (Gentry 1986, 1992) y para vertebrados (Ascorra et al. 1996, 1998, Rodriguez 1996b), lo que indica que la formación de la cordillera de los Andes debe haber dado un gran empuje a la diversificación de la biota, en especial de los moluscos terrestres del Perú. INTERNATIONAL JOURNAL OF TROPICAL BIOLOGY AND CONSERVATION Biogeografía ecológica La actual distribución de las familias en el Perú indudablemente es el resultado de la historia de cada grupo así como de la ecología de los mismos. Hay algunas familias distribuidas en un amplio rango de hábitats, y a ambos lados de los Andes, como es el caso de los Veronicellidae, Pupillidae, Vertiginidae, Clausiliidae, Succineidae, Ferussaciidae, Systrophiidae, Bulimulidae, Charopidae, Camaenidae, Helmintoglyptidae. Sin embargo, sólo ocho de esas familias tienen representantes en al actualidad por encima de los 3500 m (Cuadro 2), siendo el género Scutalus (Bulimulidae) el que predomina seguido por Temesa (Clausilidae), y son los que alcanzan las máximas altitudes. Haas (1947) reporta a S. sanborni y T. incarum a 15000-18000 pies (4572-5486 m), en Carhuamayo (Junín). La familia Neocyclotidae y las únicas especies reportadas de Odontostomidae y Cyclodontidae están restringidas a la amazonia y vertiente oriental. Varias otras que tienen predominancia en el oriente, también se encuentran en el norte del Perú, en donde hay una vía hacia el oeste, la Depresión de Huancabamba. Ellas son las familias Helicinidae, Megalobulimidae, Orthalicidae, Camaenidae y Solaropsidae. En la costa, al oeste de los Andes, también es posible encontrar representantes de táxones tropicales, como el caso de Porphyrobaphe (Orthalicidae), Plekocheilus (Bulimulidae) y Helicina, pero por encima del área de influencia de la Corriente de Humboldt, en la provincia biogeográfica del Bosque Seco Ecuatorial (CDC-Perú y Herrera-MacBryde 1997). No hay una familia o subfamilia nativa restringida a la zona desértica costera de Perú. Aquí predominan las especies del género Bostryx seguidas de lejos por las del género Scutalus (Bulimulidae). En el desierto la biota se encuentra restringida principalmente a las formaciones de “lomas”, ecosistemas a manera de islas de vegetación que deben su existencia a la humedad traída por las neblinas advectivas de invierno. Las “lomas” tienen clima estacional, con una “época seca” durante el verano, caracterizada por temperaturas altas, muy baja 247 humedad y escasa hasta nula cobertura vegetal, y una “época húmeda o de lomas” durante el invierno, cuando la humedad permite el desarrollo de vegetación herbácea; entre las dos épocas están las transiciones respectivas. Los caracoles estivan durante la “época seca”. Eventualmente, tal estacionalidad es alterada por “El Niño”, principalmente por las lluvias de verano que permiten el reverdecimiento de las “lomas” (y de gran parte del desierto) durante el período usual de “época seca” (Dillon 1997, Rundel et al. 1991). Los caracoles responden a tales cambios producidos por “El Niño” con un crecimiento explosivo de las poblaciones y una expansión en sus límites de distribución, como lo observado en Bostryx cospersus (Bulimulidae) y Succinea peruviana (Ramírez 1984; Ramírez et al. 1998, 1999a, 1999c). En cuanto a la riqueza de especies por área, la vertiente oriental y la amazonia son las que presentan el mayor número de especies, sin embargo la abundancia por especie es baja. El caso opuesto encontramos en la costa. A modo de comparación podemos tomar a las Lomas de Lachay, la más representativa de la costa central (Dpto. Lima), en donde se ha registrado 10 especies en 5,070 has (Ramírez et al. 1999c), mientras que en una hectárea de bosque de bambú en la región del Camisea (Vertiente Oriental; Dpto. Cuzco) se ha encontrado 32 especies de moluscos terrestres (Ramírez et al. 1999b) En tiempos actuales, el hombre está contribuyendo a la expansión de la distribución de las especies, caso de las introducidas. De ellas, unas se mantienen bastante restringidas como es el caso de las familias Zonitidae y Limacidae, que son encontradas en la costa, mientras que otras como Helix aspersa (Helicidae) y las babosas (Milacidae) han ampliado su rango y se encuentran también en la vertiente oriental de los Andes. Conservación Las especies de moluscos terrestres del Perú se encuentran protegidas por la legislación nacional en la medida que estén representadas 248 MALACOLOGÍA LATINOAMERICANA en las áreas naturales protegidas por el Estado (Tarazona et al. 1998). Fuera de ellas no existe ninguna disposición particular para su conservación como sí es el caso para los vertebrados (Pulido 1998). Tampoco están en la lista roja de las especies en peligro. Sin embargo, no podemos saber el estatus real de las mismas debido a que se conoce poco acerca de sus poblaciones, pero es de esperar que aquellas especies de géneros endémicos corran más peligro, pues los bosques naturales de selva alta (hábitat principal de aquellas) están desapareciendo vertiginosamente debido a la acción humana (Ramírez 1996). Importancia Los moluscos terrestres son importantes tanto por los servicios que brinda dentro de los ecosistemas, como por ser utilizados o afectar al hombre. Son importantes como indicadores biogeográficos de eventos tectónicos tempranos (Solem 1984a); como clave para el entendimiento de la evolución morfológica; como grandes digestores de celulosa, concentradores de calcio, y fuente de alimento para vertebrados e invertebrados; como objetos estéticos; y como proveedores de productos farmacéuticos (Emberton 1995). El hombre peruano ha utilizado caracoles terrestres desde épocas prehispánicas, principalmente en su alimentación (Engel 1970, Ravines 1991). En la actualidad, la región oriental del país aún conserva esta costumbre; las especies más consumidas corresponden al género Megalobulimus (Megalobulimidae) (Ramírez y Cáceres 1991, Campoverde 1992, Arenas y Heredia 1999). En la costa se está iniciando una industria conservera utilizando la especie introducida Helix aspersa. Otro uso frecuente que se le da es en medicina folklórica. Diversas especies, dependiendo de la región, son usadas para combatir afeciones bronquiales; por ejemplo, en Carpapata (Junín) los pobladores usan especies del género Thaumastus [Paredes et al. 1998b]. Otras especies son dañinas para la agricultura; en la costa lo son Helix aspersa (Helicidae) y Heterovagina peruviana (Veronicellidae) (de la Torre 1952). Poco es lo que se conoce acerca de moluscos terrestres peruanos como hospederos de parásitos; en el caracol de Lomas Succinea peruviana, ha sido reportado el esporocisto del tremátode Leucochloridium sp. cuya adulto, que debe residir en alguna especie de ave del lugar, es aún desconocido (Ramírez 1992). AGRADECIMIENTOS El presente trabajo es el resultado de muchos años de trabajo, principalmente en la búsqueda de literatura muy antigua que no es posible conseguir en Perú, y como se puede deducir, muchas personas nos ayudaron en una u otra medida en esa gestión. Listar sus nombres aquí sería muy largo; sin embargo, nos referiremos a aquellas personas e instituciones que contribuyeron en mayor medida. C. Paredes agradece al Fondo Especial de Desarrollo Universitario mediante la Universidad Nacional Mayor de San Marcos (FEDU-UNMSM) por las subvenciones recibidas; a S. Millen y J. McLean por confirmación de material, y a F. Cardoso por su apoyo constante en el trabajo de campo y con la computadora. J. Arenas agradece al Fondo Mundial para la Conservación de la Naturaleza mediante la Beca Russell E-Train WWF- UPCH, acuerdo RP- 05 1998, por el apoyo económico en el trabajo de campo. A N. Cazzanigga de la Universidad Nacional del Sur Bahía Blanca Argentina, a G. Perera del Instituto Pedro Kouri-La Habana, Cuba, a M. C. Mansur de la Fundacao Zoobotanica Rio Grande do Sul, a S.Thiengo del Instituto Oswaldo Cruz Rio de Janeiro Brasil y a A. Takeda de la Universidade Estadual de Maringa por el gentil apoyo bibliográfico. R. Ramírez agradece a CONCYTEC, FEDU-UNMSM, a los Programas BIOLAT (Smithsonian Institution) y BIOTROP (Universidad de Kansas), y al Molluscan Biodiversity Institute por el apoyo a proyectos sobre la diversidad malacológica terrestres en diversas partes de Perú. A la Fulbright-LASPAU por la beca concedida para sus estudios de Maestría en la Universidad de Kansas (Lawrence, USA), con el estudio de INTERNATIONAL JOURNAL OF TROPICAL BIOLOGY AND CONSERVATION 249 la familia Systrophiidae, aquí muy en especial a W. Duellman por el apoyo constante y las facilidades brindadas en el Museo de Historia Natural. A las instituciones que brindaron becas para la revisión de material peruano y literatura especializada: Smithsonian Institution (NMNH), Academy of Natural Sciences of Philadelphia (ANSP), Field Museum of Natural History (FMNH). A las siguientes personas por las facilidades brindadas durante la estadía en sus respectivas instituciones: Hershler, Harasewych, y P. Greenhal (NMNH), Davis, Emberton y Richardson (ANSP), a Bieler, Voight y Baker (FMNH), y a E. Gittenberger (Leiden, Holanda). Se agradece a Thomé (Brasil) por su gentil revisión de nuestro material de Veronicéllidos. No podemos dejar de agradecer a los miembros de casa (Museo de Historia Natural, Universidad Nacional Mayor de San Marcos), principalmente al Dr. G. Lamas por su invalorable apoyo tanto en lo referente a la obtención de literatura muy antigua, como en la logística; a N. Medina, N. Pillco y S. Córdova, por su entusiasta apoyo en el ordenamiento de los datos geográficos, y a J. Santistevan y C. Palma por su apoyo en el manejo de base de datos y la preparación de los mapas (Figs.1 y 2). Un especial agradecimiento y homenaje a los desaparecidos Solem (FMNH) y Loosjes (Holanda), por el gran apoyo brindado, tanto a la distancia como cuando tuvimos la oportunidad de visitarlos personalmente. que destacar que 73 especies marinas son endémicas de Perú. El ambiente terrestre también posee una impresionante diversidad malacológica. Hasta la fecha hay 763 especies reconocidas que representa un 2.54% del total mundial estimado para los moluscos terrestres y el 38% de las especies esperadas para America del Sur. Las familias con mayor cantidad de especies son Bulimulidae con 424 spp., Clausiliidae con 75 spp y Systrophiidae con 55 spp. El grupo de moluscos menos diverso es el de las especies dulceacuícolas, hasta la fecha se han reportado 129 especies. En este grupo se han registrado 35 especies endémicas siendo los hidróbidos los que brindan el mayor aporte (14 spp.). Tanto para moluscos marinos como continentales se analiza los factores que afectan la distribución de las especies, su ecología y su conservación. Además, se establece cuales son las regiones menos estudiades y los grupos que requieren de más atención. Adicionalmente, se comenta sobre la historia del estudio de cada uno de los grupos y su utilización. RESUMEN Alcantara, F. & N. Nakagawa. 1996. Cultivo preliminar del churo Pomacea maculata (Ampullariidae, Gastropoda, Perry, 1810). 8: 29-34 Perú es un país muy diverso, tanto en especies como en hábitats. Según el sistema de Holdridge 84 de 103 zonas de vida están representadas en el país. En este trabajo se reconocen 18 zonas ecológicas de los cuales dos ecosistemas son marinos. La malacofauna peruana cuenta con 1910 especies registradas. La mayor diversidad está en el mar con 1018 especies de las cuales 570 son gasterópodos, 370 son bivalvos, 36 son cefalópodos, 34 son poliplacóforos, 3 son monoplacóforos, 3 escafópodos y 2 son aplacóforos. Las familias con mayor cantidad de especies son Veneridae (57spp.), Muricidae (47spp.), Collumbellidae (40 spp.) y Tellinidae (37 spp.). El 56% de las especies marinas se presentan en la provincia Panameña, el 11 % están presentes sólo en la provincia Peruana y el porcentaje restante están presentes en ambas provincias. Además hay REFERENCIAS Abbott, R.T. 1974. 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APÉNDICE 1 Moluscos marinos Clase APLACOPHORA Subclase CHAETODERMOMORPHA Orden CHAETODERMATIDA Familia CHAETODERMATIDAE 1 Chaetoderma araucanae Osorio & Tarifeño, 1976 Subclase SOLENOGASTRES Orden CAVIBELONIA Familia SIMROTHIELLIDAE 2 Simrothiella schizoradulata (Salwini-Plawen, 1978) Clase MONOPLACOPHORA Orden TRYBLIDIIDA Superfamilia TRYBLIDIOIDEA Familia NEOPILINIDAE 3 Neopilina bruuni Menzies, 1968 Familia VEMIDAE 4 Vema bacescui (Menzies, 1968) 5 Vema ewingi (Clarke & Menzies, 1959) Clase SCAPHOPODA Orden DENTALIIDA Familia DENTALIIDAE 6 Fissidentalium megathyris (Dall, 1890) 7 Rhabdus dalli (Pilsbry & Sharp, 1897) Familia GADILIDAE 8 Cadulus peruvianus Dall, 1908 Clase POLYPLACOPHORA Orden NEOLORICATA Suborden LEPIDOPLEURINA Familia LEPTOCHITONIDAE 9 Leptochiton opacus (Dall, 1908) Suborden ISCHNOCHITONINA Familia ISCHNOCHITONIDAE Subfamilia ISCHNOCHITONINAE 10 Ischnochiton catenulatus Sowerby, 1832 11 Ischnochiton fimbriatus Sowerby, 1840 12 Ischnochiton imitator Smith, 1881 13 Ischnochiton inca Orbigny, 1841 14 Ischnochiton punctulatissimus Sowerby, 1832 15 Ischnochiton pusillus (Sowerby, 1832) 16 Ischnochiton rugulatus (Sowerby, 1832) 17 Radsiella rugulata (Sowerby, 1832) 18 Stenoplax limaciformis (Sowerby, 1832) Subfamilia CALLISTOPLACIDAE 19 Callistochiton pulchellus (Gray, 1828) 20 Callistochiton viviparus Plate, 1902 Subfamilia CHAETOPLEURINAE 21 Chaetopleura (Chaetopleura) hennahi (Sowerby, 1832) 22 Chaetopleura (Chaetopleura) lurida (Sowerby, 1832) 23 Chaetopleura peruviana (Lamarck, 1819) 24 Chaetopleura roddae Ferreira, 1984 25 Chaetopleura unilineata Leloup, 1954 Subfamilia LEPIDOCHITONINAE 26 Lepidochitona stigmata (Dall, 1909) Familia MOPALIIDAE 27 Placiphorella blainvillii (Broderip, 1832) 258 MALACOLOGÍA LATINOAMERICANA Familia CHITONIDAE Subfamilia CHITONINAE 28 Chiton cumingsii Frembly, 1828 29 Chiton granulosus Frembly, 1827 30 Chiton granosus Frembly, 1828 31 Chiton latus Sowerby, 1825 32 Chiton stokesii Broderip, 1832 Subfamilia ACANTHOPLEURINAE 33 Acanthopleura granulata (Gmelin, 1790) 34 Acanthopleura echinata (Barnes, 1824) 35 Acanthopleura nigra (Barnes, 1824) Subfamilia TONICIINAE 36 Tonicia argyrosticta Philippi, 1845 37 Tonicia elegans lineolata Frembly, 1828 Tonicia elegans grayi Sowerby, 1832 38 Tonicia lebruni Rochebrune, 1883 39 Tonicia rubridens Pilsbry, 1892 40 Tonicia swainsoni (Sowerby, 1832) Suborden ACANTHOCHITONINA Familia ACANTHOCHITONIDAE Subfamilia ACANTHOCHITONINAE 41 Acanthochitona hirudiniformes hirudiniformes (Sowerby, 1832) Acanthochitona hirudiniformes peruvianus (Sowerby, 1832) 42 Acanthochitona ferreirai Lyons, 1988 Clase GASTROPODA Subclase PROSOBRANCHIA Orden ARCHAEOGASTROPODA Superfamilia PLEUROTOMARIACEA Familia SCISSURELLIDAE 43 Sinezona rimuloides (Carpenter, 1865) Superfamilia FISSURELLACEA Familia FISSURELLIDAE Subfamilia DIODORINAE 44 Diodora alta (C.B. Adams, 1852) 45 Diodora fontaineana (Orbigny, 1841) 46 Diodora inaequalis (Sowerby, 1835) 47 Diodora pica (Sowerby, 1835) 48 Diodora punctifissa Mclean, 1970 49 Diodora pusilla Berry, 1959 50 Diodora saturnalis (Carpenter, 1864) Subfamilia FISSURELLINAE 51 Fissurella (Cremides) asperella Sowerby, 1835 52 Fissurella (Cremides) microtrema Sowerby, 1835 53 ?Fissurella (Cremides) obscura Sowerby, 1835 54 Fissurella (Cremides) virescens Sowerby, 1835 55 Fissurella bridgesii Reeve, 1849 56 Fissurella costata Lesson, 1831 57 Fissurella crassa Lamarck, 1822 58 Fissurella cumingi Reeve, 1849 59 Fissurella decemcostata McLean, 1970 60 Fissurella latimarginata Sowerby, 1835 61 Fissurella limbata Sowerby, 1835 62 Fissurella maxima Sowerby, 1835 63 Fissurella peruviana Lamarck, 1822 64 Fissurella pulchra Sowerby, 1835 Subfamilia FISSURELLIDINAE 65 Lucapinella crenifera (Sowerby, 1835) 66 Lucapinella milleri Berry, 1959 67 Lucapinella peruviana Weyrauch, [1970] Superfamilia PATELLACEA Familia LOTTIIDAE Subfamilia LOTTIINAE 68 Lottia araucana (Orbigny, 1839) 69 Lottia ceciliana (Orbigny, 1841) 70 Lottia orbignyi (Dall, 1909) 71 Scurria mesoleuca (Menke, 1851) 72 Scurria parasitica (Orbigny, 1841) 73 Scurria scurra (Lesson, 1830) 74 Scurria variabilis (Sowerby, 1839) 75 Scurria viridula (Lamarck, 1819) 76 Scurria zebrina (Lesson, 1830) Subfamilia PATELLOIDINAE 77 Patelloida lineata (Philippi, 1846) Familia PATELLIDAE Subfamilia PATELLINAE 78 Patella (Ancistromesus) mexicanus (Broderip & Sowerby, 1829) Subfamilia NACELLINAE 79 Nacella clypeaster (Lesson, 1830) SuperfamiliaCOCCULINACEA Familia BATHYSCIADIIDAE 80 Bathysciadium pacificum Dall, 1908 SuperfamiliaTROCHACEA Familia TROCHIDAE Subfamilia MARGARITINAE 81 Bathybembix (Bathybembix) bairdii (Dall, 1889) 82 Bathybembix (Bathybembix) humboldti Rehder, 1971 83 Bathybembix (Bathybembix) macdonaldi (Dall, 1890) 84 Bathybembix (Solaricida) equatorialis (Dall, 1896) Subfamilia MONODONTINAE 85 Diloma nigerrima (Gmelin, 1791) 86 Tegula (Agathistoma) corvus (Philippi, 1850) 87 Tegula (Agathistoma) ligulata ligulata (Menke, 1850) 88 Tegula (Agathistoma) mariana Dall, 1919 89 Tegula (Agathistoma) melaleucus (Jonas, 1844) 90 Tegula (Agathistoma) panamensis (Philippi, 1849) 91 Tegula (Agathistoma) picta McLean, 1970 92 Tegula (Agathistoma) verrucosa McLean, 1970 93 Tegula (Chlorostoma) atra (Lesson, 1830) 94 Tegula (Chlorostoma) luctuosa Orbigny, 1841 95 Tegula (Chlorostoma) quadricostata (Gray, 1828) 96 Tegula (Chlorostoma) tridentata (Potiez & Michaud, 1838) 97 Tegula fuscescens (Philippi, 1844) 98 Tegula moesta (Jonas, 1844) 99 Tegula patagonica (Orbigny, 1840) Subfamilia CALLIOSTOMATINAE 100 Calliostoma (Otukaia) chilena Rehder, 1971 101 Calliostoma aequiscultum Carpenter, 1865 102 Calliostoma antonii (Philippi, 1843) 103 Calliostoma bonita Strong, Hanna & Hertlein, 1933 104 Calliostoma fonkii (Philippi, 1860) 105 Calliostoma gordanum Mclean, 1970 INTERNATIONAL JOURNAL OF TROPICAL BIOLOGY AND CONSERVATION 106 Calliostoma jacquelinae McLean, 1970 107 Calliostoma leanum (C. B. Adams, 1852) 108 Calliostoma rema Strong, Hanna & Hertlein, 1933 Familia SKENEIDAE 109 Cyclostremiscus (Cyclostremiscus) peruvianus Pilsbry & Olsson, 1945 110 Cyclostremiscus (Cyclostremiscus) trigonatus (Carpenter, 1857) 111 Ganesa atomus Pilsbry & Lowe, 1932 Familia TURBINIDAE Subfamilia TURBININAE 112 Prisogaster niger (Wood, 1828) 113 Turbo (Callopoma) fluctuosus Wood, 1828 114 Turbo (Callopoma) saxosus Wood, 1828 115 Turbo (Marmarostoma) squamiger Reeve, 1843 116 Turbo (Taeniaturbo) magnificus Jonas, 1844 Subfamilia ASTRAEINAE 117 Astraea (Uvanilla) buschii (Philippi, 1844) Familia PHASIANELLIDAE 118 Tricolia macleani Marincovich, 1973 119 Tricolia perforata (Philippi, 1848) 120 Tricolia phasianella (Phillippi, 1849) 121 Tricolia umbilicata (Orbigny, 1840) Suborden NERITIOMORPHA Superfamilia NERITACEA Familia NERITIDAE Subfamilia NERITINAE 122 Nerita (Ritena) scabricostata Lamarck, 1822 123 Nerita (Theliostyla) funiculata Menke, 1851 124 Nerita cerostoma Troschel, 1852 125 Nerita owenii Mawe, 1828 126 Theodoxus (Vittoclithon) luteofasciatus Miller, 1879 Orden MESOGASTROPODA Superfamilia LITTORINACEA Familia LITTORINIDAE Subfamilia LITTORININAE 127 Littoraria (Littoraria) fasciata (Gray, 1839) 128 Littoraria (Littoraria) varia (Sowerby, 1832) 129 Littoraria (Littoraria) zebra (Donovan, 1825) 130 Littorina (Austrolittorina) araucana Orbigny, 1840 131 Littorina (Austrolittorina) aspera Philippi, 1846 132 Littorina (Austrolittorina) peruviana (Lamarck, 1822) 133 Littorina (Littorinopsis) paytensis Philippi, 1847 134 Littorina modesta Philippi, 1846 135 Littorina umbilicata Orbigny, 1840 SuperfamiliaRISSOACEA Familia RISSOIDAE Subfamilia RISSOINAE 136 Manzonia (Alvinia) limensis Ponder & Worsfold, 1994 137 Onoba fortis Pilsbry & Olsson, 1941 Subfamilia RISSOININAE 138 Rissoina (Rissoina) cancellata Philippi, 1847 139 Rissoina (Rissoina) helena Bartsch, 1915 140 Rissoina (Rissoina) inca Orbigny, 1840 Familia BARLEEIDAE Subfamilia BARLEEINAE 141 Barleeia meridionalis Ponder & Worsfold, 1994 259 Familia CAECIDAE 142 Caecum chilense Stuardo, 1962 143 Fartulum moorei Marincovich, 1973 Familia VITRINELLIDAE 144 Episcynia bolivari Pilsbry & Olsson, 1946 145 Solariorbis (Solariorbis) ametabolus Pilsbry & Olsson, 1952 146 Solariorbis (Solariorbis) hypolius Pilsbry & Olsson, 1952 147 Solariorbis (Systellomphalis) elegans Pilsbry & Olsson, 1952 148 Teinostoma (Pseurodotella) ecuadorianum Pilsbry & Olsson, 1941 149 Teinostoma (Pseurodotella) percarinatum Pilsbry & Olsson, 1945 150 Vitrinella (Vitrinellops) multispiralis Pilsbry & Olsson, 1952 Familia TORNIDAE 151 Macromphalina hypernotia Pilsbry & Olsson, 1952 152 Macromphalina peruvianus (Pilsbry & Olsson, 1945) Superfamilia CERITHIACEA Familia PLANAXIDAE 153 Planaxis planicostatus Sowerby, 1825 Familia MODULIDAE 154 Modulus catenulatus (Philippi, 1849) Familia CERITHIIDAE Subfamilia CERITHIINAE 155 Bittium peruvianum (Orbigny, 1841) 156 Cerithium (Thericium) adustum Kiener, 1841 157 Cerithium (Thericium) menkei Carpenter, 1857 158 Cerithium (Thericium) stercusmuscarum Valenciennes, 1833 Familia LITIOPIDAE 159 Alaba guayaquilensis Bartsch, 1928 160 Alaba interruptelineata Pilsbry & Lowe, 1932 Familia POTAMIDIDAE Subfamilia POTAMIDINAE 161 Cerithidea (Cerithideopsis) mazatlanica Carpenter, 1857 162 Cerithidea (Cerithideopsis) montagnei (Orbigny, 1841) 163 Cerithidea (Cerithideopsis) pulchra (C.B. Adams, 1852) 164 Cerithidea (Cerithideopsis) valida (C.B. Adams, 1852) Subfamilia BATILLARIINAE 165 Rhinocoryne humboldti (Valenciennes, 1832) Familia TURRITELLIDAE Subfamilia TURRITELLINAE 166 Turritella banksi Reeve, 1840 167 Turritella broderipiana Orbigny, 1840 168 Turritella cingulata Sowerby, 1825 169 Turritella gonostoma Valenciennes, 1832 170 Turritella leucostoma Valenciennes, 1832 171 Turritella nodulosa King & Broderip, 1832 172 Turritella rubescens Reeve, 1849 Subfamilia VERMICULARIINAE 173 Stephoma pennatum Mörch, 1860 174 Vermicularia pellucida eburnea (Reeve, 1842) 260 MALACOLOGÍA LATINOAMERICANA Familia VERMETIDAE 175 Eualetes centiquadrata (Valenciennes, 1846) 176 Petaloconchus (Macrophragma) flavescens (Carpenter, 1857) 177 Petaloconchus (Macrophragma) innumerabilis Pilsbry & Olsson, 1935 178 Serpulorbis eruciformis (Mörch, 1862) 179 Serpulorbis squamigerus Carpenter, 1856 180 Vermetus (Thylaeodus) compta (Carpenter, 1864) Superfamilia STROMBACEA Familia STROMBIDAE 181 Strombus (Lentigo) granulatus Swainson, 1823 182 Strombus (Strombus) gracilior Sowerby, 1825 183 Strombus (Tricornis) galeatus Swainson, 1823 184 Strombus (Tricornis) peruvianus Swainson, 1823 Superfamilia HIPPONICACEA Familia HIPPONICIDAE 185 Cheilea cepacea (Broderip, 1834) 186 Cheilea corrugata (Broderip, 1834) 187 Hipponix grayanus Menke, 1853 188 Hipponix panamensis C.B. Adams, 1852 189 Hipponix pilosus (Deshayes, 1832) Superfamilia CREPIDULACEA Familia CREPIDULIDAE 190 Calyptraea (Calyptraea) mamillaris Broderip, 1834 191 Calyptraea (Trochita) trochiformis (Born, 1778) 192 Crepidula aculeata (Gmelin, 1791) 193 Crepidula arenata (Broderip, 1834) 194 Crepidula excavata (Broderip, 1834) 195 Crepidula incurva (Broderip, 1834) 196 Crepidula lessonii (Broderip, 1834) 197 Crepidula marginalis (Broderip, 1834) 198 Crepidula nivea C. B. Adams, 1852 199 Crepidula onyx Sowerby, 1824 200 Crepidula rostrata C.B. Adams, 1852 201 Crepidula striolata Menke, 1851 202 Crepipatella dilatata (Lamarck, 1822) 203 Crepipatella dorsata (Broderip, 1834) 204 Crucibulum (Crucibulum) lignarium (Broderip, 1834) 205 Crucibulum (Crucibulum) monticulus Berry, 1969 206 Crucibulum (Crucibulum) quiriquinae (Lesson, 1830) 207 Crucibulum (Crucibulum) scutellatum (Wood, 1828) 208 Crucibulum (Crucibulum) spinosum (Sowerby, 1824) 209 Crucibulum (Dispotaea) pectinatum (Carpenter, 1856) Familia CAPULIDAE 210 Capulus ungaricoides (Orbigny, 1841) Superfamilia CYPRAEACEA Familia CYPRAEIDAE 211 Cypraea (Macrocypraea) cervinetta Kiener, 1843 212 Cypraea (Pseudozonaria) arabicula (Lamarck, 1811) 213 Cypraea (Pseudozonaria) nigropunctata Gray, 1828 214 Cypraea (Pseudozonaria) robertsi (Hidalgo, 1906) 215 Cypraea (Zonaria) annettae aequinoctialis (Schilder, 1933) 216 Cypraea exanthema Linnaeus, 1767 Familia OVULIDAE Subfamilia OVULINAE 217 Jenneria pustulata [Lightfoot, 1786] 218 Neosimnia aequalis (Sowerby, 1832) 219 Simnia avena (Sowerby, 1832) 220 Simnialena rufa (Sowerby, 1832) Familia TRIVIIDAE Subfamilia TRIVIINAE 221 Niveria pacifica (Sowerby, 1832) 222 Pusula fusca (Sowerby, 1832) 223 Pusula radians (Lamarck, 1811) 224 Pusula solandri (Sowerby, 1832) 225 Pusula sanguinea (Sowerby, 1832) Subfamilia ERATOINAE 226 Erato (Eratopsis) oligostata Dall, 1902 227 Hespererato columbella (Menke, 1847) 228 Hespererato scabriuscula (Sowerby, 1832) Superfamilia NATICACEA Familia NATICIDAE Subfamilia POLINICINAE 229 Polinices (Polinices) galapagosus (Récluz, 1844) 230 Polinices (Polinices) helicoides (Gray, 1825) 231 Polinices (Polinices) intemeratus (Philippi, 1853) 232 Polinices (Polinices) otis (Broderip & Sowerby, 1829) 233 Polinices (Polinices) panamensis (Récluz, 1844) 234 Polinices (Polinices) ravidus (Souleyet, 1852) 235 Polinices (Polinices) uber (Valenciennes, 1832) 236 Polinices agujanus Dall, 1908 237 Polinices alveatus (Troschel, 1852) 238 Polinices cora (Orbigny, 1840) 239 Polinices crawfordianus Dall, 1908 240 Polinices dubius (Récluz, 1843) 241 Polinices philippianus (Nyst, 1845) 242 Polinices rapulum (Reeve, 1855) Subfamilia NATICINAE 243 Natica (Natica) caneloensis Hertlein & Strong, 1955 244 Natica (Natica) colima Strong & Hertlein, 1937 245 Natica (Natica) grayi Philippi, 1852 246 Natica (Natica) scethra Dall, 1908 247 Natica (Naticarius) chemnitzii Pfeiffer, 1840 248 Natica (Naticarius) unifasciata Lamarck, 1822 249 Natica (Stigmaulax) broderipiana Récluz, 1844 250 Natica (Stigmaulax) elenae Récluz, 1844 251 Natica inexpectans Olsson, 1971 252 Natica undata Philippi, 1852 Subfamilia SININAE 253 Eunaticina heimi Jordan, 1934 254 Sinum cymba (Menke, 1828) 255 Sinum debile (Gould, 1853) Superfamilia TONNACEA Familia TONNIDAE 256 Malea ringens (Swainson, 1822) Familia FICIDAE 257 Ficus ventricosa (Sowerby, 1825) Familia CASSIDAE Subfamilia CASSINAE 258 Cypraecassis (Levenia) coarctata (Sowerby, 1825) 259 Cypraecassis tenuis (Wood, 1828) Subfamilia OOCORYTINAE 260 Oocorys elevata Dall, 1908 261 Oocorys rotunda Dall, 1908 INTERNATIONAL JOURNAL OF TROPICAL BIOLOGY AND CONSERVATION Subfamilia PHALIINAE 262 Semicassis centiquadrata (Valenciennes, 1832) Familia RANELLIDAE Subfamilia RANELLINAE 263 Argobuccinum rude (Broderip, 1833) 264 Argobuccinum scabrum (King, 1831) Subfamilia CYMATIINAE 265 Cymatium (Gutturnium) amictoideum Keen, 1971 266 Cymatium (Monoplex?) lignarium (Broderip, 1833) 267 Cymatium (Septa) pileare (Linnaeus, 1758) 268 Cymatium (Septa) vestitum (Hinds, 1844) 269 Cymatium (Turritriton) gibbosum (Broderip, 1833) 270 Cymatium cingulatum (Lamarck, 1822) 271 Cymatium costatum (Born, 1778) 272 Linatella (Linatella) wiegmanni (Anton, 1839) Subfamilia PERSONINAE 273 Distorsio constricta (Broderip, 1833) 274 Distorsio decussata (Valenciennes, 1832) Familia BURSIDAE 275 Bursa affinis Broderip, 1833 276 Bursa caelata (Broderip, 1833) 277 Bursa calcipicta Dall, 1908 278 Bursa nana (Broderip & Sowerby, 1829) 279 Bursa ventricosa Broderip, 1832 Superfamilia CERITHIOPSACEA Familia CERITHIOPSIDAE Subfamilia CERITHIOPSINAE 280 Seila assimilata (C.B. Adams, 1852) SuperfamiliaEPITONIACEA Familia EPITONIIDAE 281 Amaea (Scalina) ferminiana (Dall, 1908) 282 Amaea (Scalina) tehuanarum Du Shane & McLean, 1968 283 Nitidiscala cumingii (Carpenter, 1856) 284 Nitidiscala elenense Sowerby, 1844 285 Nitidiscala pazianum (Dall, 1917) 286 Nitidiscala statuminatum (Sowerby, 1844) 287 Opalia (Dentiscala) funiculata (Carpenter, 1857) Familia JANTHINIDAE 288 Janthina janthina (Linnaeus, 1758) Orden NEOGASTROPODA Superfamilia MURICACEA Familia MURICIDAE Subfamilia MURICINAE 289 Chicoreus (Phyllonotus) tortuosus (Sowerby, 1841) 290 Chicoreus (Phyllonotus) squamosus (Broderip, 1832) 291 Hexaplex brassica (Lamarck, 1822) 292 Hexaplex erythrostomus (Swainson, 1831) 293 Hexaplex princeps (Broderip, 1833) 294 Hexaplex radix (Gmelin, 1791) 295 Hexaplex regius (Swainson, 1821) 296 Murex (Murex) elenensis Dall, 1909 Subfamilia MURICOPSINAE 297 Favartia peasei (Tryon, 1880) 298 Homalocantha multicrispata (Dunker, 1869) 299 Homalocantha oxyacantha (Broderip, 1833) 300 Murexiella dipsacus (Broderip, 1833) 261 301 Murexiella laurae Vokes, 1970 302 Murexiella vittata (Broderip, 1833) Subfamilia OCENEBRINAE 303 Acanthina brevidentata (Wood, 1828) 304 Acanthina tuberculata Gray, 1835 305 Ceratostoma fontainei (Tryon, 1880) 306 Crassilabrum crassilabrum (Sowerby, 1834) 307 Eupleura muriciformis (Broderip, 1833) 308 Eupleura nitida (Broderip, 1833) 309 Pteropurpura (Centrifuga) centrifuga (Hinds, 1844) 310 Pterorytis hamatus (Hinds, 1844) Subfamilia ERGALATAXINAE 311 Xanthochorus buxea (Broderip, 1833) 312 Xanthochorus broderippi (Michelotti, 1841) 313 Xanthochorus cassidiformis (Blainville, 1832) Subfamilia TROPHONINAE 314 Trophon carduus (Broderip, 1833) 315 Trophon peruvianus Lamarck, (1822) 316 Trophon sorenseni Hertlein & Strong, 1951 Subfamilia RAPANINAE 317 Concholepas concholepas (Bruguière, 1789) 318 Mancinella planospira (Lamarck, 1822) 319 Mancinella speciosa (Valenciennes, 1832) 320 Mancinella triangularis (Blainville, 1832) 321 Morula ferruginosa (Reeve, 1846) 322 Morula lugubris (C. B. Adams, 1852) 323 Neorapana muricata (Broderip, 1832) 324 Purpura columellaris (Lamarck, 1822) 325 Purpura pansa Gould, 1853 326 Stramonita chocolata (Duclos, 1832) 327 Stramonita delessertiana (Orbigny, 1841) 328 Stramonita haemastoma (Linnaeus, 1767) 329 Thais (Thais) callaoensis (Gray, 1828) 330 Thais (Thaisella) kiosquiformis (Duclos, 1832) 331 Thais (Vasula) melones (Duclos, 1832) 332 Thais costata (Blainville, 1832) 333 Thais peruensis Dall, 1909 334 Thais styllmanberryi Peña, 1973 335 Vitularia salebrosa (King & Broderip, 1832) Familia CORALLIOPHILIDAE 336 Babelomurex hindsii (Carpenter, 1857) 337 Coralliophila (Pseudomurex) nux (Reeve, 1846) 338 Coralliophila (Pseudomurex) parva (E. A. Smith, 1877) 339 Coralliophila (Pseudomurex) squamosa (Broderip, 1833) Familia BUCCINIDAE Subfamilia BUCCININAE 340 Aeneator fontainei (Orbigny, 1841) Subfamilia PHOTINAE 341 Northia northiae (Griffith & Pidgeon, 1834) 342 Phos (Cymatophos) crassus Hinds, 1843 343 Phos (Metaphos) articulatus Hinds, 1844 344 Triumphis (Triumphis) distorta (Wood, 1828) Subfamilia PISANIINAE 345 Caducifer (Monostiolum) biliratus (Reeve, 1846) 346 Cantharus (Cantharus) rehderi Berry, 1962 347 Cantharus (Pollia) berryi McLean, 1970 348 Cantharus (Pollia) elegans (Griffith & Pidgeon, 1834) 349 Cantharus (Pollia) gemmatus (Reeve, 1846) 262 MALACOLOGÍA LATINOAMERICANA 350 Cantharus (Pollia) janellii (Kiener, 1835-1836) 351 Cantharus (Pollia) pagodus (Reeve, 1846) 352 Cantharus (Pollia) ringens (Reeve, 1846) 353 Cantharus (Pollia) sanguinolentus (Duclos, 1833) 354 Cantharus (Pollia) vibex (Broderip, 1833) 355 Cantharus inca (Orbigny, 1841) 356 Cantharus panamicus (Hertlein & Strong, 1951) 357 Engina fusiformis Stearns, 1894 358 Engina mantensis Bartsch, 1928 359 Engina maura (Sowerby, 1832) 360 Engina pulchra (Reeve, 1846) 361 Engina tabogaensis Bartsch, 1931 362 Solenosteira fusiformis (Blainville, 1832) 363 Solenosteira gatesi Berry, 1963 364 Solenosteira mendozana (Berry, 1959) 365 Solenosteira pallida (Broderip & Sowerby, 1829) Familia COLUMBELLIDAE Subfamilia COLUMBELLINAE 366 Columbella fuscata Sowerby, 1832 367 Columbella labiosa Sowerby, 1822 368 Columbella major Sowerby, 1832 369 Columbella paitensis Lesson, 1830 370 Columbella strombiformis Lamarck, 1822 Subfamilia PYRENINAE 371 Aesopus aliciae Marincovich, 1973 372 Anachis (Glyptanachis) lentiginosa (Hinds, 1844) 373 Anachis (Glyptanachis) rugulosa (Sowerby, 1844) 374 Bifurcium bicanaliferum (Sowerby, 1832) 375 ?Costoanachis berryi Shasky, 1970 376 Costoanachis costellata (Broderip & Sowerby, 1829) 377 Costoanachis fluctuata (Sowerby, 1832) 378 Costoanachis moesta (C.B. Adams, 1852) 379 Costoanachis nigricans (Sowerby, 1844) 380 Costoanachis rugosa (Sowerby, 1832) 381 Costoanachis varicosa (Gaskoin, 1852) 382 Mazatlania fulgurata (Philippi, 1846) 383 Mazatlania hesperia Pilsbry & Lowe, 1932 384 Mitrella (Cilara) secalina (Philippi, 1846) 385 Mitrella baccata (Gaskoin, 1852) 386 Mitrella buccinoides (Sowerby, 1832) 387 Mitrella dorma Baker, Hanna & Strong, 1938 388 Mitrella elegans (Dall, 1871) 389 Mitrella lalage Pilsbry & Lowe, 1932 390 Mitrella oblita (Reeve, 1859) 391 Mitrella santabarbarensis (Gould & Carpenter, 1857) 392 Mitrella unicolor (Sowerby, 1832) 393 Mitrella unifasciata (Sowerby, 1832) 394 Nassarina (Zanassarina) atella Pilsbry & Lowe, 1932 395 Parametraria macrostoma (Reeve, 1858) 396 Parvanachis dalli Bartsch, 1931 397 Parvanachis gaskoini Carpenter, 1857 398 Parvanachis milium (Dall, 1916) 399 Parvanachis pardalis (Hinds, 1843) 400 Parvanachis pygmaea (Sowerby, 1832) 401 Strombina (Cotonopsis) mendozana Shasky, 1970 402 Strombina (Strombina) gibberula (Sowerby, 1832) 403 Strombina (Strombina) lanceolata (Sowerby, 1832) 404 Strombina (Strombina) marsksi Hertlein & Strong, 1951 405 Strombina (Strombina) recurva (Sowerby, 1832) Familia NASSARIIDAE Subfamilia NASSARIINAE 406 Nassarius catallus (Dall, 1908) 407 Nassarius collarius (C.B. Adams, 1852) 408 Nassarius complanatus (Powys, 1835) 409 Nassarius dentifer (Powys, 1835) 410 Nassarius exilis (Powys, 1835) 411 Nassarius fontainei (Orbigny, 1841) 412 Nassarius gayi (Kiener, 1835) 413 Nassarius guaymasensis (Pilsbry & Lowe, 1932) 414 Nassarius luteostoma (Broderip & Sowerby, 1829) 415 Nassarius planocostatus (A. Adams, 1852) 416 Nassarius taeniolatus (Philippi, 1845) 417 Nassarius versicolor (C.B. Adams, 1852) 418 Nassarius wilsoni (C.B. Adams, 1852) Familia MELONGENIDAE 419 Melongena patula (Broderip & Sowerby, 1829) Familia FASCIOLARIIDAE Subfamilia FASCIOLARIINAE 420 Pleuroploca granosa (Broderip, 1832) 421 Pleuroploca princeps (Sowerby, 1825) Subfamilia FUSININAE 422 Fusinus (Fusinus) dupetitthouarsi (Kiener, 1840) 423 Fusinus ambustus (Gould, 1853) 424 Fusinus panamensis Dall, 1908 Subfamilia PERISTERNIINAE 425 Latirus hemphilli (Hertlein & Strong, 1951) 426 Latirus rudis (Reeve, 1847) 427 Leucozonia cerata (Wood, 1828) 428 Leucozonia knorrii (Reeve, 1847) 429 Metula amosi Vanatta, 1913 430 Opeatostoma pseudodon (Burrow, 1815) Subfamilia COLUBRARIINAE 431 Colubraria (Colubraria) lucasensis Strong & Hertlein, 1937 Familia VOLUTIDAE Subfamilia LYRIINAE 432 Lyria (Enaeta) barnesii (Gray, 1825) 433 Lyria (Enaeta) cumingii (Broderip, 1832) Subfamilia ZIDONINAE 434 Adelomelon benthalis Dall, 1890 Subfamilia CALLIOTECTINAE 435 Calliotectum vernicosum Dall, 1890 Familia HARPIDAE Subfamilia HARPINAE 436 Harpa crenata Swainson, 1822 Subfamilia MORUNINAE 437 Morum (Morum) tuberculosum (Reeve, 1842) Familia VASIDAE Subfamilia VASINAE 438 Vasum caestus (Broderip, 1833) Subfamilia COLUMBARINAE 439 Columbarium tomicici McLean & Andrade, 1982 Familia OLIVIDAE Subfamilia OLIVINAE 440 Oliva (Oliva) incrassata [Lightfoot, 1786] 441 Oliva (Oliva) julieta Duclos, 1835 442 Oliva (?Oliva) kaleontina Duclos, 1835 INTERNATIONAL JOURNAL OF TROPICAL BIOLOGY AND CONSERVATION 443 Oliva (Oliva) peruviana Lamarck, 1811 444 Oliva (Oliva) polpasta Duclos, 1833 445 Oliva (Oliva) spendidula Sowerby, 1825 446 Oliva (Oliva) spicata (Röding, 1798) 447 Oliva (Strephonella) undatella Lamarck, 1810 Subfamilia OLIVELLINAE 448 Olivella (Dactylidella) anazora (Duclos, 1835) 449 Olivella (Lamprodroma) volutella (Lamarck, 1811) 450 Olivella (Minioliva) inconspicua (C.B. Adams, 1852) 451 Olivella (Niteoliva) morrisoni Olsson, 1956 452 Olivella (Niteoliva) peterseni Olsson, 1956 453 Olivella (Olivella) altatae Burch & Campbell, 1963 454 Olivella (Olivella) broggii Olsson, 1956 455 Olivella (Olivella) fletcherae Berry, 1958 456 Olivella (Olivella) gracilis (Broderip & Sowerby, 1829) 457 Olivella (Olivella) riverae Olsson, 1956 458 Olivella (Olivella) tergina (Duclos, 1835) 459 Olivella (Pachyoliva) columellaris (Sowerby, 1825) 460 Olivella (Pachyoliva) semistriata (Gray, 1839) 461 Olivella (Zanoetella) zanoeta (Duclos, 1835) Subfamilia AGARONIINAE 462 Agaronia testacea (Lamarck, 1811) Familia MARGINELLIDAE Subfamilia MARGINELLINAE 463 Persicula imbricata (Hinds, 1844) 464 Prunum (Prunum) curtum (Sowerby, 1832) 465 Prunum (Prunum) sapotilla (Hinds, 1844) Familia MITRIDAE Subfamilia MITRINAE 466 Mitra (Isara) effusa Broderip, 1836 467 Mitra (Strigatella) inca Orbigny, 1841 468 Mitra (Strigatella) lens Wood, 1828 469 Mitra (Strigatella) semigranosa Von Martens, 1897 470 Mitra (Strigatella) tristis Broderip, 1836 471 Mitra marshali Bartsch, 1931 472 Mitra orientalis Griffith & Pidgeon, 1834 473 Mitra swainsonii Broderip, 1836 Subfamilia IMBRICARIINAE 474 Subcancilla gigantea (Reeve, 1844) 475 Subcancilla hindsii (Reeve, 1844) SuperfamiliaCANCELLARIACEA Familia CANCELLARIIDAE Subfamilia CANCELLARIINAE 476 Aphera tessellata (Sowerby, 1832) 477 Cancellaria (Bivetiella) pulchra Sowerby, 1832 478 Cancellaria (Bivetopsia) chrysostoma Sowerby, 1832 479 Cancellaria (Cancellaria) decussata Sowerby, 1832 480 Cancellaria (Cancellaria) urceolata Hinds, 1843 481Cancellaria (Euclia) cassidiformis Sowerby, 1832 482 Cancellaria (Ovilia) cumingiana Petit de la Saussaye, 1844 483 Cancellaria (Ovilia) obtusa Deshayes, 1830 484 Cancellaria (Pyruclia) bulbulus Sowerby, 1832 485 Cancellaria (Pyruclia) solida Sowerby, 1832 486 Hertleinia mitriformis (Sowerby, 1832) 487 Narona clavatula (Sowerby, 1832) 488 Narona exopleura (Dall, 1908) 489 Solatia buccinoides (Sowerby, 1832) 263 490 Sveltia centrota Dall, 1896 491 Trigonostoma (Ventrilia) bullatum (Sowerby, 1832) 492 Trigonostoma (Ventrilia) tuberculosum (Sowerby, 1832) Superfamilia CONACEA Familia CONIDAE 493 Conus (Chelyconus) purpurascens Sowerby, 1833 494 Conus (Conus) gladiator Broderip, 1833 495 Conus (Conus) princeps Linnaeus, 1758 496 Conus (Conus) tiaratus Sowerby, 1833 497 Conus (Cylinder) lucidus Wood, 1828 498 Conus (Leptoconus) poormani Berry, 1968 499 Conus (Leptoconus) recurvus Broderip, 1833 500 Conus (Leptoconus) regularis Sowerby, 1833 501 Conus (Leptoconus) virgatus Reeve, 1849 502 Conus (Lithoconus) fergusoni Sowerby III, 1873 503 Conus (Pyruconus) patricius Hinds, 1843 504 Conus (Ximeniconus) perplexus Sowerby, 1857 505 Conus (Ximeniconus) ximenes Gray, 1839 Familia TURRIDAE Subfamilia PSEUDOMELATOMINAE 506 Agladrillia pudica (Hinds, 1843) 507 Tiaraturris libya (Dall, 1919) Subfamilia TURRINAE 508 Gemmula (Ptychosyrinx) chilensis (Berry, 1959) 509 Gemmula hindsiana Berry, 1958 Subfamilia TURRICULINAE 510 Aforia goodei (Dall, 1890) 511 Anticlinura peruviana (Dall, 1908) 512 Cochlespira cedonulli (Reeve, 1843) 513 Knefastia pilsbryi (Lowe, (1931)) 514 Knefastia princeps Berry, 1953 515 ?Leucosyrix clionella Dall, 1908 Subfamilia CRASSISPIRINAE 516 Crassispira (Crassiclava) cortezi Shasky & Campbell, 1964 517 Hinsiclava resina (Dall, 1908) Subfamilia ZONULISPIRINAE 518 Pilsbryspira (Pilbryspira) aterrima (Sowerby, 1834) 519 Pilsbryspira (Pilbryspira) collaris (Sowerby, 1834) 520 Ptychobela lavinia (Dall, 1919) Subfamilia CLATHURELLINAE 521 Strombinoturris crockeri Hertlein & Strong, 1951 Subfamilia MANGELIINAE 522 Agasthotoma ordinaria (E.A. Smith, 1882) Subfamilia DAPHNELLINAE 523 Xanthodaphne egregia (Dall, 1908) Familia TEREBRIDAE 524 Hastula luctuosa (Hinds, 1844) 525 Terebra armillata Hinds, 1844 526 Terebra brandi Bratcher & Burch, 1970 527 Terebra dislocata (Say, 1822) 528 Terebra formosa Deshayes, 1857 529 Terebra glauca Hinds, 1844 530 Terebra larvaeiformis Hinds, 1844 531 Terebra lucana Dall, 1908 532 Terebra ninfae Campbell, 1961 533 Terebra ornata Gray, 1834 534 Terebra peruviana Weyrauch, [1970] 264 MALACOLOGÍA LATINOAMERICANA 535 Terebra puncturosa Berry, 1961 536 Terebra purdyae Bratcher & Burch, 1970 537 Terebra robusta Hinds, 1844 538 Terebra strigata Sowerby, 1825 539 Terebra variegata Gray, 1834 Superfamilia RISSOELLOIDEA Familia RISSOELLIDAE 540 Rissoella (Rissoella) peruviana Ponder & Worsfold, 1994 Subclase HETEROBRANCHIA Superorden ALLOGASTROPODA Superfamilia ARCHITECTONICACEA Familia ARCHITECTONICIDAE 541 Architectonica (Architectonica) nobilis Röding, 1798 542 Architectonica (Discotectonica) placentalis (Hinds, 1844) Superfamilia PYRAMIDELLACEA Familia PYRAMIDELLIDAE Subfamilia ODOSTOMIINAE 543 Odostomia (Ividella) mariae Bartsch, 1928 544 Chrysallida communis (C.B. Adams, 1852) Subfamilia TURBONILLINAE 545 Turbonilla (Pyrgiscus) cora (Orbigny, 1840) Familia AMATHINIDAE 546 Iselica carotica Marincovich, 1973 Subclase OPISTHOBRANCHIA Orden CEPHALASPIDEA Superfamilia PHILINOISACEA Familia ACTEONIDAE 547 Acteon traskii Stearns, 1897 548 Acteon venustus (Orbigny, 1840) Familia SCAPHANDRIDAE 549 Acteocina angustior Baker & Hanna, 1927 550 Scaphander cylindrellus Dall, 1908 Familia AGLAJIDAE 551 Navanax aenigmaticus (Bergh, 1894) Familia BULLIDAE 552 Bulla (Bulla) punctulata A. Adams, 1850 Familia HAMINEIDAE Subfamilia HAMINEINAE 553 Haminoea peruviana (Orbigny, 1837) Orden SACOGLOSSA Familia JULIIDAE Subfamilia JULIINAE 554 Julia thecaphora (Carpenter, 1857) Familia ELYSIIDAE 555 Elysia cf. hedgpethi Marcus, 1961 556 Tridachiella diomedea (Bergh, 1894) Orden APLYSIOMORPHA Superfamilia APLYSIOACEA Familia APLYSIIDAE Subfamilia APLYSIINAE 557 Aplysia (Aplysia) juliana Quoy & Gaimard, 1832 558 Aplysia (Aplysia) nigra Orbigny, 1837 559 ?Aplysia (Pruvotaplysia) parvula Mörch , 1863 560 ?Aplysia (Varria) dactylomela Rang, 1828 561 Aplysia (Varria) inca Orbigny, 1837 562 ?Aplysia (Varria) keraudreni Rang, 1828 Subfamilia DOLABRIFERINAE 563 Dolabrifera nicaraguana Pilsbry, 1896 Orden NOTASPIDEA Superfamilia UMBRACULACEA Familia UMBRACULIDAE 564 Umbraculum ovale (Carpenter, 1856) 565 Umbraculum umbraculum [Lightfoot, 1786] Orden THECOSOMATA Suborden EUTHECOSOMATA Familia LIMACINIDAE 566 Limacina bulimoides (Orbigny, 1836) 567 Limacina inflata (Orbigny, 1836) 568 Limacina trochiformis (Orbigny, 1836) Familia CAVOLINIIDAE Subfamilia CAVOLINIINAE 569 Cavolina inflexa (Lesueur, 1813) 570 Cavolina longirostris (Blainville, 1821) 571 Cavolina tridentata (Niebuhr, 1775) 572 Cavolina uncinata (Rang, 1829) 573 Diacria quadridentata (Blainville, 1821) Subfamilia CLIONAE 574 Creseis acicula (Rang, 1828) 575 Creseis virgula (Rang, 1828) 576 Hyalocylis striata (Rang, 1828) 577 Styliola subula (Quoy & Gaimard, 1827) Orden NUDIBRANCHIA Suborden DORIDOIDEA Superfamilia ANADORIDACEA Familia OKENIIDAE 578 Okenia luna Millen, Schrödl, Vargas & Indacochea, 1994 Familia POLYCERIDAE 579 Polycera cf. alabe Collier & Farmer, 1964 Superfamilia EUDORIDACEA Familia CADLINIDAE 580 Cadlina sparsa (Odhner, 1922) Familia CHROMODORIDIDAE 581 Hypselodoris cf. agassizzi (Bergh, 1894) 582 Tyrinna evelinae (Marcus, 1958) Familia ROSTANGIDAE 583 Rostanga pulchra MacFarland, 1905 Familia DORIDIDAE 584 ?Doris peruviana Orbigny, 1837 Familia DISCODORIDIDAE Subfamilia DISCODORIDINAE 585 Anisodoris punctuoloata (Orbigny, 1837) Familia PLATYDORIDIDAE Subfamilia PLATYDORIDINAE 586 Platydoris punctatella Bergh, 1898 Suborden DENDRONOTOIDEA Superfamilia DENDRONOTACEA Familia DENDRONOTIDAE 587 Dendronotus cf. frondosus (Ascanius, 1774) INTERNATIONAL JOURNAL OF TROPICAL BIOLOGY AND CONSERVATION Familia DOTIDAE 588 Doto cf. uva Marcus, 1955 Familia PHYLLIROIDAE 589 Phylliroe lichtensteini Eschscholtz, 1825 Suborden AEOLIDIOIDEA Superfamilia EUAEOLIDIACEA Familia FLABELLINIDAE 590 Flabelina cf. falklandica (Eliot, 1907) Familia FIONIDAE 591 Fiona pinnata (Eschscholtz, 1831) Familia GLAUCIDAE 592 Glaucus atlanticus Forster, 1777 593 Glaucus distichoicus Orbigny, 1837 Familia FACELINIDAE Subfamilia FACELININAE 594 Bajaeolus bertschi Gosliner & Bhrens, 1986 595 Phidiana lottini (Lesson, 1831) 596 Phidiana natans (Orbigny, 1837) Familia AEOLIDIIDAE 597 Aeolidia serotina Bergh, 1873 Subclase PULMONATA Orden ARCHAEOPULMONATA Superfamilia ELLOBIACEA Familia ELLOBIIDAE Subfamilia ELLOBIINAE 598 Sarnia frumentum (Petit, 1842) Subfamilia MELAMPODINAE 599 Melampus (Melampus) carolianus (Lesson, 1842) 600 Tralia (Alexia) reflexilabris (Orbigny, 1840) Subfamilia PEDIPEDINAE 601 Marinula concinna (C.B. Adams, 1852) 602 Marinula pepita King, 1832 Orden BASOMMATOPHORA SuperfamiliaSIPHONARIACEA Familia TRIMUSCULIDAE 603 Trimusculus peruvianus (Sowerby, 1835) 604 Trimusculus reticulatus (Sowerby, 1835) 605 Trimusculus stellatus (Sowerby, 1835) Familia SIPHONARIIDAE 606 Siphonaria (Heterosiphonaria) gigas Sowerby, 1825 607 Siphonaria (Heterosiphonaria) maura Sowerby, 1835 608 Siphonaria (Pachysiphonaria) laeviuscula (Sowerby, 1835) 609 Siphonaria (Pachysiphonaria) lessoni Blainville, 1824 610 Siphonaria (Pachysiphonaria) tristensis (Leach, 1824) 611 Siphonaria lineolata Sowerby, 1835 612 Siphonaria tenuis Philippi, 1860 Clase CEPHALOPODA SubclaseCOLEOIDEA Orden TEUTHIDA Suborden MYOPSIDA Familia LOLIGINIDAE 613 Loligo gahi Orbigny, 1835 614 Lolliguncula (Loliolopsis) diomedeae (Hoyle, 1904) 615 Lolliguncula (Lolliguncula) panamensis Berry, 1911 265 Suborden OEGOPSIDA Familia ENOPLOTEUTHIDAE 616 Abraliopsis (Pfefferiteuthis) affinis (Pfeffer, 1912) Familia ANCISTROCHEIRIDAE 617 Ancistrocheirus lesueuri (Orbigny, 1848) Familia PYROTEUTHIDAE 618 Pterygioteuthis giardi Fischer, 1895 Familia OCTOPOTEUTHIDAE 619 Octopoteuthis deletron Young, 1972 620 Taningia danae Joubin, 1931 Familia ONYCHOTEUTHIDAE 621 Onychoteuthis banksi (Leach, 1817) Familia GONATIDAE 622 Gonatus antarcticus Lönnberg, 1898 Familia CTENOPTERYGIDAE 623 Ctenopteryx sicula (Verány, 1851) Familia BATHYTEUTHIDAE 624 Bathyteuthis bacidifera Roper, 1968 Familia HISTIOTEUTHIDAE 625 Histioteuthis corona cerasina Nesis, 1971 626 Histioteuthis hoylei (Goodrich, 1896) Familia OMMASTREPHIDAE Subfamilia TODARODINAE 627 Todarodes filippovae Adam, 1975 Subfamilia OMMASTREPHINAE 628 Dosidicus gigas (Orbigny, 1835) 629 Eucleoteuthis luminosa (Sasaki, 1915) 630 Ommastrephes bartramii (Lesueur, 1821) 631 Stenoteuthis oualaniensis (Lesson, 1830) Familia THYSANOTEUTHIDAE 632 Thysanoteuthis rhombus Troschel, 1857 Familia CHIROTEUTHIDAE 633 Chiroteuthis veranyii (Férussac, 1835) Familia MASTIGOTEUTHIDAE 634 Mastigoteuthis dentata Hoyle, 1904 Familia CRANCHIIDAE Subfamilia CRANCHIINAE 635 Leachia dislocata Young, 1972 636 Liocranchia reinhardtii (Steenstrup, 1856) Orden VAMPYROMORPHA Familia VAMPYROTEUTHIDAE 637 Vampyroteuthis infernalis Chun, 1903 Orden OCTOPODA Suborden CIRRATA Familia OPISTHOTEUTHIDAE 638 Grimpoteuthis bruuni Voss, 1982 Suborden INCIRRATA Familia BOLITAENIDAE 639 Japetella diaphana Hoyle, 1885 Familia OCTOPODIDAE Subfamilia OCTOPODINAE 640 Euaxoctopus panamensis Voss, 1971 641 Octopus mimus Gould, 1852 642 Robsonella fontanianus (Orbigny, 1835) Familia VITRELEDONELLIDAE 643 Vitreledonella richardi Joubin, 1918 266 MALACOLOGÍA LATINOAMERICANA Familia OCYTHOIDAE 644 Ocythoe tuberculata Rafinesque, 1814 Familia TREMOCTOPODIDAE 645 Tremoctopus violaceus gracilis (Eydoux & Souleyet, 1852) Familia ARGONAUTHIDAE 646 Argonauta argo Linnaeus, 1758 647 Argonauta hians Lightfoot, 1786 648 Argonauta nouryi Lorois, 1852 Clase BIVALVIA SubclasePROTOBRANCHIA Orden SOLEMYOIDA SuperfamiliaSOLEMYACEA Familia SOLEMYIDAE 649 Acharax johnsoni (Dall, 1891) 650 Solemya (Petrasma) panamensis Dall, 1908 SubclasePALAEOTAXODONTA Orden NUCULOIDA SuperfamiliaNUCULACEA Familia NUCULIDAE 651 Nucula (Lamellinucula) exigua Sowerby, 1833 652 Nucula (Lamellinucula) paytensis A. Adams, 1856 653 Nucula (Leionucula) colombiana Dall, 1908 654 Nucula (Leionucula) grayi Orbigny, 1846 655 Nucula (Nucula) chrysocome Dall, 1908 656 Nucula (Nucula) declivis Hinds, 1843 657 Nucula agujana Dall, 1908 658 ?Nucula savatieri Mabille & Rochebrune, 1889 SuperfamiliaNUCULANACEA Familia NUCULANIDAE Subfamilia NUCULANINAE 659 Adrana crenifera (Sowerby, 1833) 660 Nuculana (Jupiteria) callimene (Dall, 1908) 661 Nuculana (Jupiteria) cuneata (Sowerby, 1833) 662 Nuculana (Jupiteria) eburnea (Sowerby, 1833) 663 Nuculana (Jupiteria) elenensis (Sowerby, 1833) 664 Nuculana (Jupiteria) fastigata Keen, 1958 665 Nuculana (Jupiteria) ornata (Orbigny, 1845) 666 Nuculana (Nuculana) peruviana (Dall, 1908) Familia SPINULIDAE 667 Spinula (Spinula) calcar (Dall, 1908) Familia MALLETIIDAE 668 Malletia (Malletia) peruviana Dall, 1908 SubclasePTERIOMORPHIA Orden ARCOIDA SuperfamiliaARCACEA Familia ARCIDAE Subfamilia ARCINAE 669 Arca (Arca) pacifica (Sowerby, 1833) 670 Barbatia (Acar) gradata (Broderip & Sowerby, 1829) 671 Barbatia (Acar) pusilla (Sowerby, 1833) 672 Barbatia (Acar) rostae Berry, 1954 673 Barbatia (Barbatia) lurida (Sowerby, 1833) 674 Barbatia (Cucullaearca) reeveana (Orbigny, 1846) 675 Fugleria illota (Sowerby, 1833) 676 Litharca lithodomus (Sowerby, 1833) Subfamilia ANADARINAE 677 Anadara (Anadara) concinna (Sowerby, 1833) 678 Anadara (Anadara) mazatlanica (Hertlein & Strong, 1943) 679 Anadara (Anadara) obesa (Sowerby, 1833) 680 Anadara (Anadara) similis (C.B. Adams, 1852) 681 Anadara (Anadara) tuberculosa (Sowerby, 1833) 682 Anadara (Cunearca) aequatorialis (Orbigny, 1846) 683 Anadara (Cunearca) bifrons (Carpenter, 1857) 684 Anadara (Cunearca) nux (Sowerby, 1833) 685 Anadara (Cunearca) perlabiata (Grant & Gale, 1931) 686 Anadara (Cunearca) reinharti (Lowe, 1935) 687 Anadara (Grandiarca) grandis (Broderip & Sowerby, 1829) 688 Anadara (Larkinia) multicostata (Sowerby, 1833) 689 Anadara (Rasia) emarginata (Sowerby, 1833) 690 Anadara (Rasia) formosa (Sowerby, 1833) 691 Anadara (Scapharca) biangulata (Sowerby, 1833) 692 Anadara (Scapharca) labiosa (Sowerby, 1833) 693 Bathyarca corpulenta (E.A. Smith, 1885) 694 Bathyarca endemica (Dall, 1908) 695 Lunarca brevifrons (Sowerby, 1833) Subfamilia STRIARCINAE 696 Arcopsis (Arcopsis) solida (Sowerby, 1833) Familia NOETIIDAE Subfamilia NOETIINAE 697 Noetia (Eontia) olssoni Sheldon & Maury, 1922 698 Noetia (Noetia) reversa (Sowerby, 1833) SuperfamiliaLIMOPSACEA Familia LIMOPSIDAE 699 Limopsis (Limopsis) zonalis Dall, 1908 Familia GLYCYMERIDIDAE 700 Glycymeris (Axinactis) inaequalis (Sowerby, 1833) 701 Glycymeris (Glycymeris) lintea Olsson, 1961 702 Glycymeris (Glycymeris) maculata (Broderip, 1832) 703 Glycymeris (Glycymeris) ovata (Broderip, 1832) 704 Glycymeris (Tucetona) strigilata (Sowerby, 1833) Orden MYTILOIDA SuperfamiliaMYTILACEA Familia MYTILIDAE Subfamilia MYTILINAE 705 Aulacomya ater (Molina, 1782) 706 Brachidontes granulatus (Hanley, 1843) 707 Brachidontes playasensis (Pilsbry & Olsson, 1935) 708 Brachidontes puntarenensis (Pilsbry & Lowe, 1932) 709 Brachidontes semilaevis (Menke, 1848) 710 Choromytilus chorus (Molina, 1782) 711 Mytella arciformis (Dall, 1909) 712 Mytella guyanensis (Lamarck, 1819) 713 Mytella speciosa (Reeve, 1857) 714 Perumytilus purpuratus (Lamarck, 1819) 715 Semimytilus algosus (Gould, 1850) 716 Septifer (Septifer) zeteki Hertlein & Strong, 1946 Subfamilia MODIOLINAE 717 Amygdalum americanum Soot-Ryen, 1955 718 Dacrydium (Dacrydium) albidum Pelseneer, 1903 INTERNATIONAL JOURNAL OF TROPICAL BIOLOGY AND CONSERVATION 719 Modiolus (Modiolus) americanus (Leach, 1815) 720 Modiolus (Modiolus) capax (Conrad, 1837) 721 Modiolus (Modiolus) rectus (Conrad, 1837) Subfamilia CRENELLINAE 722 Crenella divaricata (Orbigny, 1847) 723 Gregariella chenuana (Orbigny, 1846) 724 Gregariella chenui (Récluz, 1842) Subfamilia LITHOPHAGINAE 725 Adula soleniformis (Orbigny, 1846) 726 Lithophaga (Diberus) plumula (Hanley, 1844) 727 Lithophaga (Labis) attenuata (Deshayes, 1836) 728 Lithophaga (Labis) peruviana (Orbigny, 1846) 729 Lithophaga (Myoforceps) aristata (Dillwyn, 1817) Orden PTERIOIDA Suborden PTERIINA SuperfamiliaPTERIACEA Familia PTERIIDAE 730 Pinctada mazatlanica (Hanley, 1856) 731 Pteria cumingii (Reeve, 1857) 732 Pteria sterna (Gould, 1851) Familia ISOGNOMONIDAE 733 Isognomon (Isognomon) janus Carpenter, 1857 734 Isognomon (Isognomon) recognitus (Mabille, 1895) SuperfamiliaPINNACEA Familia PINNIDAE 735 Atrina maura (Sowerby, 1835) 736 Atrina oldroydii Dall, 1901 737 Atrina tuberculosa (Sowerby, 1835) 738 Pinna rugosa Sowerby, 1835 Orden LIMOIDA SuperfamiliaLIMACEA Familia LIMIDAE 739 Acesta (Acesta) patagonica (Dall, 1902) 740 Limaria (Limaria) hemphilli (Hertlein & Strong, 1946) 741 Limatula similaris (Dall, 1908) 742 Promantellum orbignyi Lamy, 1930 743 Promantellum pacifica (Orbigny, 1846) Orden OSTREOIDA Suborden OSTREINA SuperfamiliaOSTREACEA Familia OSTREIDAE Subfamilia OSTREINAE 744 Agerostrea megodon (Hanley, 1846) 745 Ostrea (Ostrea) conchaphila Carpenter, 1857 746 Ostrea chilensis Philippi, 1845 Subfamilia CRASSOSTREINAE 747 Crassostrea columbiensis (Hanley, 1846) 748 Crassostrea corteziensis (Hertlein, 1951) 749 Crassostrea palmula (Carpenter, 1857) 750 Striostrea prismatica (Gray, 1825) Subfamilia LOPHINAE 751 Lopha (Lopha) angelica (Rochebrune, 1895) Subfamilia PYNODONTEINAE 752 Hyotissa solida (Sowerby, 1871) 267 Suborden PECTININA SuperfamiliaPECTINACEA Familia PECTINIDAE Subfamilia CHLAMYDINAE 753 Argopecten circularis (Sowerby, 1835) 754 Argopecten purpuratus (Lamarck, 1819) Subfamilia PECTININAE 755 Cyclopecten exquisitus Grau, 1959 756 Cyclopecten polyleptus (Dall, 1908) 757 Cyclopecten vitreus (Gmelin, 1791) 758 Hyalopecten neoceanus (Dall, 1908) 759 Leptopecten (Leptopecten) velero (Hertlein, 1935) 760 Leptopecten (Pacipecten) tumbezensis (Orbigny, 1846) 761 Lyropecten (Nodipecten) subnodosus (Sowerby, 1835) 762 Pecten (Flabellipecten) sericeus Hinds, 1845 763 Pecten (Oppenheimopecten) perulus Olsson, 1961 764 Pecten (Oppenheimopecten) vogdesi Arnold, 1906 765 Pseudamussium (Peplum) fasciculatum (Hinds, 1845) Subfamilia SPONDYLIDAE 766 Spondylus (Spondylus) calcifer Carpenter, 1857 767 Spondylus (Spondylus) princeps Broderip, 1833 SuperfamiliaANOMIACEA Familia ANOMIIDAE 768 Anomia (Anomia) adamas Gray, 1850 769 Anomia (Anomia) peruviana Orbigny, 1846 770 Pododesmus (Pododesmus) foliatus (Broderip, 1834) SubclaseHETERODONTA Orden VENEROIDA SuperfamiliaLUCINACEA Familia LUCINIDAE Subfamilia LUCININAE 771 Ctena galapagana (Dall, 1901) 772 Lucina (Callucina) lingualis Carpenter, 1864 773 Lucina (Lucinisca) centrifuga (Dall, 1901) 774 Lucina (Lucinisca) fenestrata Hinds, 1845 Subfamilia MYRTEINAE 775 Lucinoma heroica Dall, 1901 Subfamilia DIVARICELLINAE 776 Divalinga (Divalinga) eburnea (Reeve, 1850) Familia UNGULINIDAE 777 Diplodonta subquadrata (Carpenter, 1856) 778 Felaniella (Zemysia) inconspicua (Philippi, 1845) 779 Felaniella (Zemysia) parilis (Conrad, 1848) 780 Phlyctiderma (Phlyctiderma) discrepans (Carpenter, 1857) SuperfamiliaGALEOMMATACEA Familia GALEOMMATIDAE 781 Galeommella peruviana (Olsson, 1961) Familia KELLIIDAE Subfamilia KELLIINAE 782 Aligena cokeri Dall, 1909 783 Kellia suborbicularis (Montagu, 1803) Subfamilia BORNIINAE 784 Bornia (Bornia) chiclaya Olsson, 1961 785 Bornia (Bornia) egretta Olsson, 1961 786 Bornia (Bornia) zorritensis Olsson, 1961 268 MALACOLOGÍA LATINOAMERICANA Familia LASAEIDAE Subfamilia LASAEINAE 787 Lasaea cistula Keen, 1938 788 Lasaea petitiana (Récluz, 1843) 789 Lasaea subviridis Dall, 1899 Familia MONTACUTIDAE Subfamilia MYSELLINAE 790 Mysella (Rochefortia) compressa (Dall, 1913) 791 Mysella (Rochefortia) molinae Ramorino, 1968 792 Mysella (Rochefortia) negritensis Olsson, 1961 Subfamilia OROBITELLINAE 793 Orobitella peruviana Olsson, 1961 794 Orobitella sechura Olsson, 1961 795 Orobitella zorrita Olsson, 1961 SuperfamiliaCARDITACEA Familia CARDITIDAE Subfamilia CARDITINAE 796 Cardita (Byssomera) affinis Sowerby, 1833 Subfamilia CARDITESINAE 797 Cardites crassicostata (Sowerby, 1825) 798 Cardites laticostata (Sowerby, 1833) Subfamilia CARDITAMERINAE 799 Carditella (Carditella) tegulata (Reeve, 1843) 800 Cyclocardia (Cyclocardia) beebei (Hertlein, 1958) Familia CONDYLOCARDIIDAE Subfamilia CONDYLOCARDINAE 801Carditopsis flabellum (Reeve, 1843) SuperfamiliaCHAMACEA Familia CHAMIDAE 802 Chama (Chama) echinata Broderip, 1835 803 Chama (Chama) pellucida Broderip, 1835 804 Chama (Chama) venosa Reeve, 1847 805 Pseudochama corrugata (Broderip, 1835) SuperfamiliaCRASSATELLACEA Familia CRASSATELLIDAE Subfamilia CRASSATELLINAE 806 Eucrassatella (Hybolophus) gibbosa (Sowerby, 1832) Subfamilia SCAMBULINAE 807 Crassinella pacifica C.B. Adams, 1852 SuperfamiliaCARDIACEA Familia CARDIIDAE Subfamilia TRACHYCARDIINAE 808 Papyridea aspersa (Sowerby, 1833) 809 Papyridea mantaensis Olsson, 1961 810 Trachycardium (Dallocardia) senticosum (Sowerby, 1833) 811 Trachycardium (Mexicardia) procerum (Sowerby, 1833) Subfamilia FRAGINAE 812 Americardia guanacastense (Hertlein & Strong, 1947) 813 Trigoniocardia (Apiocardia) obovalis (Sowerby, 1833) 814 Trigoniocardia (Trigoniocardia) granifera (Broderip & Sowerby, 1829) Subfamilia LAEVICARDIINAE 815 Laevicardium (Laevicardium) elenense (Sowerby, 1841) Superfamilia MACTRACEA Familia MACTRIDAE Subfamilia MACTRINAE 816 Harvella elegans (Sowerby, 1825) 817 Mactra (Mactroderma) velata Philippi, 1849 818 Mactra (Micromactra) angusta Reeve, 1854 819 Mactra (Micromactra) californica Conrad, 1837 820 Mactra (Micromactra) vanattae Pilsbry & Lowe, 1932 821 Mactrellona exoleta (Gray, 1837) 822 ?Mulinia coloradoensis Dall, 1894 823 ?Mulinia edulis (King & Broderip, 1832) 824 Mulinia pallida (Broderip & Sowerby, 1829) 825 Spisula (Spisula) adamsi Olsson, 1961 826 Tumbeziconcha thracioides (Adams & Reeve, 1848) Subfamilia PTEROPSELLINAE 827 ?Anatina cyprinus (Wood, 1828) 828 Raeta undulata (Gould, 1851) Familia MESODESMATIDAE Subfamilia MESODESMATINAE 829 Mesodesma donacium Reeve, 1841 SuperfamiliaSOLENACEA Familia SOLENIDAE 830 Solen (Solen) pfeifferi (Dunker, 1861) 831 Solen (Solen) rudis C.B. Adams, 1852 Familia CULTELLIDAE 832 Ensis macha (Molina, 1782) 833 Ensis nitidus (Clessin, 1888) SuperfamiliaTELLINACEA Familia TELLINIDAE Subfamilia TELLININAE 834 Strigilla (Strigilla) chroma Salisbury, 1934 835 Strigilla (Strigilla) disjuncta Carpenter, 1856 836 Tellina (Angulus) felix Hanley, 1844 837 Tellina (Angulus) hiberna Hanley, 1844 838 Tellina (Angulus) tumbezensis (Olsson, 1961) 839 Tellina (Elpidollina) decumbens Carpenter, 1865 840 Tellina (Eurytellina) eburnea Hanley, 1844 841 Tellina (Eurytellina) ecuadoriana Pilsbry & Olsson, 1941 842 Tellina (Eurytellina) hertleini (Olsson, 1961) 843 Tellina (Eurytellina) laceridens Hanley, 1844 844 Tellina (Eurytellina) laplata Pilsbry & Olsson, 1941 845 Tellina (Eurytellina) mantaensis Pilsbry & Olsson, 1943 846 Tellina (Eurytellina) prora Hanley, 1844 847 Tellina (Eurytellina) rubescens Hanley, 1844 848 Tellina (Eurytellina) simulans C.B. Adams, 1852 849 Tellina (Hertellina) nicoyana Hertlein & Strong, 1949 850 Tellina (Lyratellina) lyra Hanley, 1844 851 Tellina (Lyratellina) lyrica Pilsbry & Lowe, 1932 852 Tellina (Phyllodella) insculpta Hanley, 1844 853 Tellina (Phyllodina) fluctigera Dall, 1908 854 Tellina (Scissula) varilineata Pilsbry & Olsson, 1943 855 Tellina (Scissula) virgo Hanley, 1844 856 Tellina (Tellinella) zacae Hertlein & Strong, 1949 857 Tellina (Tellinidella) mompichensis (Olsson, 1961) 858 Tellina (Tellinidella) princeps Hanley, 1844 859 Tellina (Tellinidella) purpurea (Broderip & Sowerby, 1829) INTERNATIONAL JOURNAL OF TROPICAL BIOLOGY AND CONSERVATION Subfamilia MACOMINAE 860 Leporimetis asthenodon (Pilsbry & Lowe, 1932) 861 Leporimetis cognata (Pilsbry & Vanatta, 1902) 862 Leporimetis dombei (Hanley, 1844) 863 Macoma (Macoploma) medioamericana Olsson, 1942 864 Macoma (Psammacoma) grandis (Hanley, 1844) 865 Macoma (Psammacoma) hesperus Dall, 1908 866 ?Macoma (Psammacoma) inornata (Hanley, 1844) 867 Macoma (Psammacoma) lamproleuca (Pilsbry & Lowe, 1932) 868 Psammotreta (Ardeamya) columbiensis (Hanley, 1844) 869 Psammotreta (Psammotreta) aurora (Hanley, 1844) 870 Temnoconcha cognatha (C.B. Adams, 1852) Familia SEMELIDAE 871 ?Abra tepocana Dall, 1915 872 Cumingia lamellosa Sowerby, 1833 873 Cumingia mutica Sowerby, 1833 874 Cumingia pacifica (Dall, 1915) 875 Leptomya ecuadoriana Soot-Ryen, 1957 876 Semele (Amphidesma) pallida (Sowerby, 1833) 877 Semele (Amphidesma) purpurascens (Gmelin, 1791) 878 Semele (Amphidesma) venusta (Reeve, 1853) 879 Semele (Semele) bicolor (C.B. Adams, 1852) 880 Semele (Semele) corrugata (Sowerby, 1833) 881 Semele (Semele) elliptica (Sowerby, 1833) 882 Semele (Semele) flavescens (Gould, 1851) 883 Semele (Semele) lenticularis (Sowerby, 1833) 884 Semele (Semele) solida (Gray, 1828) 885 Semele laevis (Sowerby, 1833) 886 Semele pulchra (Sowerby, 1832) 887 Semele rosea (Sowerby, 1833) Familia PSAMMOBIIDAE Subfamilia PSAMMOBIINAE 888 Gari (Gobraeus) solida (Gray, 1828) 889 Heterodonax bimaculatus purpureus Williamson, 1893 Subfamilia SANGUINOLARIINAE 890 Sanguinolaria (Psammotella) bertini Pilsbry & Lowe, 1932 Subfamilia SOLECURTINAE 891 Solecurtus lineaeus (Gabb, 1861) 892 Tagelus (Tagelus) affinis (C.B.Adams, 1852) 893 Tagelus (Tagelus) dombeii (Lamarck, 1818) 894 Tagelus (Tagelus) longisinuatus Pilsbry & Lowe, 1932 895 Tagelus (Tagelus) peruanus (Dunker, 1861) 896 Tagelus (Mesopleura) bourgeoisae Hertlein, 1951 897 Tagelus (Mesopleura) peruvianus Pilsbry & Olsson, 1941 898 Tagelus (Mesopleura) politus (Carpenter, 1837) Familia DONACIDAE 899 Donax (Chion) caelatus rothi Coan, 1983 900 Donax (Chion) obesulus Reeve, 1854 901 Donax (Chion) obesus Orbigny, 1845 902 Donax (Chion) punctatostriatus Hanley, 1843 903 Donax (Machaerodonax) carinatus Hanley, 1843 269 904 Donax (Machaerodonax) transversus Sowerby, 1825 905 Donax (Paradonax) californicus Conrad, 1837 906 Donax (Paradonax) gracilis Hanley, 1845 907 Donax asper Hanley, 1845 908 Donax dentifer Hanley, 1843 909 Donax marincovichi Coan, 1983 910 Iphigenia altior (Sowerby, 1833) SuperfamiliaARCTICACEA Familia BERNARDINIDAE 911 Halodakra subtrigona (Carpenter, 1857) SuperfamiliaCORBICULACEA Familia CORBICULIDAE 912 Polymesoda (Egeta) anomala (Deshayes, 1855) 913 Polymesoda (Egeta) inflata (Philippi, 1851) 914 Polymesoda (Neocyrena) fontaineii (Orbigny, 1844) 915 Polymesoda (Neocyrena) meridionalis (Prime, 1865) 916 Polymesoda (Polymesoda) notabilis (Deshayes, 1855) SuperfamiliaVENERACEA Familia VENERIDAE Subfamilia VENERINAE 917 Ameghinomya antiqua (King & Broderip, 1832) 918 Periglypta multicostata (Sowerby, 1835) 919 ?Ventricolaria isocardia (Verrill, 1870) Subfamilia CHIONINAE 920 Chione (Chione) compta (Broderip, 1835) 921 Chione (Chione) subimbricata (Sowerby, 1835) 922 Chione (Chione) undatella (Sowerby, 1835) 923 Chione (Chionista) gnidia (Broderip & Sowerby, 1829) 924 Chione (Chionopsis) amathusia (Philippi, 1844) 925 Chione (Chionopsis) crenifera (Sowerby, 1835) 926 Chione (Chionopsis) jamaniana Pilsbry & Olsson, 1941 927 Chione (Chionopsis) ornatissima (Broderip, 1835) 928 Chione (Iliochione) broggi (Pilsbry & Olsson, 1943) 929 Chione (Iliochione) subrugosa (Wood, 1828) 930 Chione (Lirophora) discrepans (Sowerby, 1835) 931 Chione (Lirophora) kellettii (Hinds, 1845) 932 Chione (Lirophora) mariae (Orbigny, 1846) 933 Chione (Lirophora) peruviana (Sowerby, 1835) 934 Chione (Timoclea) squamosa (Carpenter, 1857) 935 Protothaca (Antinioche) beili (Olsson, 1961) 936 Protothaca (Colonche) ecuadoriana (Olsson, 1961) 937 Protothaca (Leukoma) asperrima (Sowerby, 1835) 938 Protothaca (Leukoma) zorritensis (Olsson, 1961) 939 Protothaca (Notochione) columbiensis (Sowerby, 1835) 940 Protothaca (Protothaca) thaca (Molina, 1782) 941 Protothaca (Tropithaca) grata (Say, 1831) Subfamilia MERETRICINAE 942 Tivela (Planitivela) lessonii (Deshayes, 1830) 943 Tivela (Planitivela) nucula (Philippi, 1849) 944 Tivela (Planitivela) planulata (Broderip & Sowerby, 1830) 945 Tivela (Tivela) argentina (Sowerby, 1835) 946 Tivela (Tivela) byronensis (Gray, 1838) 947 Transennella (Transennella) modesta (Sowerby, 1835) 948 Transennella (Transennella) pannosa (Sowerby, 1835) 270 MALACOLOGÍA LATINOAMERICANA Subfamilia PITARINAE 949 Megapitaria aurantiaca (Sowerby, 1831) 950 Megapitaria squalida (Sowerby, 1835) 951 Pitar (Hyphantosoma) hertleini Olsson, 1961 952 ?Pitar (Hyphantosoma) pollicaris (Carpenter, 1864) 953 Pitar (Hysteroconcha) lupanaria (Lesson, 1830) 954 Pitar (Hysteroconcha) multispinosus (Sowerby, 1851) 955 ?Pitar (Hysteroconcha) roseus (Broderip & Sowerby, 1829) 956 Pitar (Lamelliconcha) alternatus (Broderip, 1835) 957 Pitar (Lamelliconcha) concinnus (Sowerby, 1835) 958 Pitar (Lamelliconcha) paytensis Orbigny, 1845 959 Pitar (Lamelliconcha) tortuosus (Broderip, 1835) 960 Pitar (Pitar) elenensis (Olsson, 1961) 961 Pitar (Pitar) helenae Olsson, 1961 962 Pitar (Pitar) inconspicuus (Sowerby, 1835) 963 Pitar (Pitar) tomeanus (Dall, 1902) 964 Pitar (Pitarella) catharius (Dall, 1902) Subfamilia TAPETINAE 965 Eurhomalea decussata (Deshayes, 1835) 966 Eurhomalea rufa (Lamarck, 1818) 967 Irus (Paphonotia) ellipticus (Sowerby, 1834) Subfamilia DOSININAE 968 Dosinia (Dosinia) dunkeri (Philippi, 1844) 969 Dosinia (Dosinia) ponderosa (Schumacher, 1817) Subfamilia CYCLININAE 970 Cyclinella kroeyeri (Philippi, 1847) 971 Cyclinella saccata (Gould, 1851) 972 Cyclinella singleyi Dall, 1902 973 Cyclinella subquadrata (Hanley, 1845) Familia PETRICOLIDAE 974 Petricola (Petricola) charapota Olsson, 1961 975 Petricola (Petricolaria) concinna Sowerby, 1834 976 Petricola (Petricolaria) rugosa Sowerby, 1834 977 Petricola (Rupellaria) denticulata Sowerby, 1834 978 Petricola (Rupellaria) olssoni Bernard, 1983 979 Petricola (Rupellaria) robusta Sowerby, 1834 980 Petricola discors Sowerby, 1834 Orden MYOIDA Suborden MYINA SuperfamiliaMYACEA Familia MYIDAE Subfamilia CRYPTOMYINAE 981 Cryptomya (Cryptomya) californica (Conrad, 1837) Subfamilia SPHENIINAE 982 Sphenia luticola (Valenciennes, 1846) Familia CORBULIDAE Subfamilia CORBULINAE 983 Corbula (Caryocorbula) nasuta Sowerby, 1833 984 Corbula (Caryocorbula) nuciformis Sowerby, 1833 985 Corbula (Caryocorbula) obesa Hinds, 1843 986 Corbula (Caryocorbula) ovulata Sowerby, 1833 987 Corbula (Juliacorbula) bicarinata Sowerby, 1833 988 Corbula (Juliacorbula) biradiata Sowerby, 1833 989 Corbula (Juliacorbula) ecuabula Pilsbry & Olsson, 1941 990 Corbula (Juliacorbula) elenensis (Olsson, 1961) 991 Corbula (Panamicorbula) inflata (C.B.Adams, 1852) 992 Corbula (Serracorbula) tumaca (Olsson, 1961) 993 Corbula (Tenuicorbula) tenuis Sowerby, 1833 SuperfamiliaGASTROCHAENACEA Familia GASTROCHAENIDAE 994 Gastrochaena (Gastrochaena) denticulata Deshayes, 1855 SuperfamiliaHIATELLACEA Familia HIATELLIDAE 995 Hiatella (Hiatella) solida (Sowerby, 1834) Suborden PHOLADINA SuperfamiliaPHOLADACEA Familia PHOLADIDAE Subfamilia PHOLADINAE 996 Barnea (Anchomasa) lamellosa (Orbigny, 1846) 997 Barnea (Anchomasa) subtruncata (Sowerby, 1834) 998 Cyrtopleura (Cyrtopleura) cruciger (Sowerby, 1834) 999 Pholas (Thovana) chiloensis Molina, 1782 Subfamilia MARTESIINAE 1000 Martesia (Martesia) striata (Linnaeus, 1758) 1001 Parapholas acuminata (Sowerby, 1834) Subfamilia JOUANNETIINAE 1002 Jouannetia (Pholadopsis) pectinata (Conrad, 1849) Familia XYLOPHAGAIDAE 1003 Xylophaga globosa Sowerby, 1835 Familia TEREDINIDAE Subfamilia TEREDININAE 1004 Lyrodus pedicellatus (Quatrefages, 1849) Subfamilia BANKIINAE 1005 Nausitora dryas (Dall, 1909) 1006 Nausitora saulii Wright, 1866 SubclaseANOMALODESMATA Orden PHOLADOMYOIDA SuperfamiliaPANDORACEA Familia THRACIIDAE 1007 Asthenothaerus (Skoglundia) colpoica (Dall, 1915) 1008 Cyathodonta tumbeziana Olsson, 1961 1009 Cyathodonta undulata Conrad, 1849 Familia PERIPLOMATIDAE 1010 Periploma (Periploma) planiusculum Sowerby, 1834 Familia LYONSIIDAE 1011 Agriodesma sechurana Pilsbry & Olsson, 1935 1012 ?Entodesma (Entodesma) cuneatum (Gray, 1828) 1013 Entodesma (Entodesma) pictum (Sowerby, 1834) Familia PANDORIDAE 1014 Pandora (Clidiophora) arcuata Sowerby, 1835 SuperfamiliaPOROMYACEA Familia POROMYIDAE 1015 Poromya (Dermatomya) mactroides Dall, 1889 Familia CUSPIDARIIDAE 1016 Cuspidaria (Cuspidaria) chilensis Dall, 1908 1017 ?Cuspidaria (Cuspidaria) patagonica (E.A.Smith, 1885) Familia VERTICORDIDAE 1018 ?Verticordia (Verticordia) ornata (Orbigny, 1853) INTERNATIONAL JOURNAL OF TROPICAL BIOLOGY AND CONSERVATION 271 APÉNDICE 2 Moluscos dulceacuícolas Clase GASTROPODA Subclase PROSOBRANCHIA Orden MESOGASTROPODA Superfamilia VIVIPARACEA Familia AMPULLARIIIDAE 1 Asolene spixii (Dorbigny, 1835) [=A. zonata D’orbigny, 1835] 2 Marisa cornuarietis Linné, 1758 3 Pomacea amazonica (Reeve, 1857) [=A. canaliculata amazónica Martens, 1885] 4 Pomacea aulanieri (Hupé y Deville, 1856) [=A. limnaeiformis Reeve, 1856, Kobelt 1915, A. coutamanensis Preston, 1914] 5 Pomacea baeri (Dautzenberg, 1901) 6 P. bridgesi Reeve, 1856 [=A. scalaris D’ Orbigny, 1835] P. bridgesi diffusa (Blume, 1957) 7 Pomacea canaliculata (Lamarck, 1801) [=A. lineata Wagner, 1827; A. australis d’Orbigny 1835; A. lineta Spix 1827, A.figulina (Orbigny 1835); A. d’orbignyiana, Phillippi, 1851 (Sowerby 1835); A. speciosa Philippi 1851 (Reeve, 1856); A.gigas Spix, 1827 (Philippi 1851); A.gigas, A. haustrum Reeve, 1856, A. inmersa Reeve, 1856, A. Insularum Orbigny, 1835 , A. vermiformis, A. dolioides, A. orbignyana Philippi (Martens, 1857); A. amazonica, A, inmerrsa , A. gigas, A. Inmersum ( Kobelt 1915 ); A.(A) australis, Morretes 1949; A..gigas Spix, 1827, A. linetata, A. australis, A. Insularum, A. Haustrum, A. dolioides; A. dorbigniana, A. haustrum; A. insularum ( Thiengo, 1990; Cazzanigga 1988); A.dorbignyana Phillippi, 1851; A. australis d’orbigny, 1835 (Hylton Scott 1957); P. insularum Orbigny, 1835 (Cazzanigga 1987); P.c. chaquensis Hylton Scott 1948 (Cazzanigga, 1987)] 8 Pomacea catamarcensis (Sowerby, 1874) 9 Pomacea columbiensis Sowerby [=Pomacea chemnitzii Pain, 1960] 10 Pomacea (L.) crassa Swainson, 1823 [=A. browni Jay, 1836; A. peleana, Philippi, 1851; A. impervia Philippi, 1852; A. solida, Von dem Busch, 1854] 11 Pomacea (Limnopomus ) columellaris ( Gould, 1848 ) [=A. sprucei Reeve, A. castelloi (Dall 1904); A. robusta Phil.; A. modesta V.d. Busch, 1859] 12 Pomacea glauca ( Linné, 1758 ) [=A. cuprina Reeve; Helix oculus communis; A. glauca var Effusa; Nerita effusa Muller; A. crocostoma, Phil, var baltaeata; A. guadalupensis; A. castanea Desh .(Phil.); A. cubensis Reeve; A. glauca var luteostoma, Swainson; A. dubia Guilding, var A. prunulum Reeve, var; A. geveanensis Desh 1838; A. geveana, A. villata Martens; var A. oronocensis, Reeve; var A. cuprina, Reeve; var A. Pachystoma, Phil.] 13 Pomacea guyanensis (Lamarck, 1819) [=A. puncticulata Swainson, 1822; A. nobilis Reeve, 1856; A. hae- mastoma, Reeve, 1856; A. erythrostoma, Reeve, 1856] 14 Pomacea haustrum (Reeve, 1857) [=A. amazonica Reeve, 1856 (Sowerby, 1909); A. insularum Hass , 1949] Pomacea haustrum inmersum (Reeve, 1856) 15 Pomacea interupta (Sowerby, 1909) [=A. collumelaris, d’Orbigny; A. castelloi, Sowerby] 16 Pomacea lineata (Spix, 1827) [=A. fasciata Swainson 1822; A. Swainsoni, Phil 1851; A. linnei Phil 1852; A. lennaei Reeve, 1856; A. simplex,Reeve, 1856; A. testudinea Reeve, 1856; A. physis, Hupé, 1857; A. chemnitzii Phil 1852 (Reeve, 1909); A. figulina, Spix 1827 (Wagner); A. levior Sowerby , 1909] 17 Pomacea lymneiformis (Reeve, 1856) [=A. cuprina Reeve] 18 Pomacea maculata (Perry, 1810) [=Helix gigas Spix, 1827; A. crosseana Hidalgo, 1871] 19 Pomacea nobilis (Reeve, 1856) [=A. guyanenesis (Reeve, 1856)] 20 Pomacea notabilis (Reeve, 1856) 21 Pomacea nubila (Reeve, 1856) [=A. nibula Kobelt, 1915; P. (L.) crassa nubila (Reeve) Pain, 1960] 22 Pomacea papyracea (Spix, 1827) 23 Pomacea (Effusa) planorbula (Philippi, 1851) 24 Pomacea urceus (Muller, 1774) [=A.oblonga Swainson, 1820-23; A. rugosa, Lamarck , A. leucostoma, Swainson, 1823; A, dolium Phil, 1851; A. guyanenesis Kobelt, 1915; P. nobilis (Reeve, 1856), P. guyanenesis, (Lamarck, 1819) Kobelt , Martens , Perera y Walls,1997] 25 Pomacea yatesi (Reeve, 1856) Superfamilia RISSOACEA Familia HYDROBIIDAE 26 Aroapyrgus colombiensis Malek & Little, 1971 [=Potamopyrgus mirandoi Weyrauch, 1963] 27 Brachypyrgulina carinifera Hass, 1955 28 Heligmopoma umbilicatum Hass, 1955 29 Heleobia andecola (Orbigny, 1835) 30 Heleobia aperta (Hass, 1955) 31 Heleobia berryi (Pilsbry, 1924) 32 Heleobia culminea (Orbigny, 1840) [=L.andecola f. culminea Hass, 1955] 33 Heleobia cuminggi (Orbigny, 1835) 34 Heleobia cuzcoensis (Pilsbry, 1911) 35 Heleobia chavezi (Weyrauch, 1963) 36 Heleobia florezii (Weyrauch, 1963) 37 Heleobia hernandezae (Weyrauch, 1963) 38 Heleobia lacustris (Hass, 1955) 39 Heleobia languiensis (Hass, 1955) 40 Heleobia neveui (Bavay, 1904) 41 Heleobia picium subgraduata (Hass, 1952) [=Potamopyrgus (Potamopyrgus) subgraduatus Hass, 1952; Littoridina picium subgraduata Weyrauch, 1963] 272 MALACOLOGÍA LATINOAMERICANA 42 Heleobia profunda (Hass, 1955) 43 Heleobia saracocheae (Hass, 1955) 44 Heleobia similis (Weyrauch, 1963) 45 Heleobia stiphra (Hass, 1955) 46 Heleobia vestita (Hass, 1955) 47 Ramphopoma magnun Hass, 1955 48 Ramphopoma parvum Hass, 1955 49 Strombopoma gracile Hass, 1955 50 Strombopoma ortoni (Pilsbry, 1924) 51 Tryonia tricarinata (Boettger, 1871) Superfamilia CERITHIACEA Familia THIARIDAE 52 Hemisinus guayaquilensis Reeve,1859 53 Hemisinus osculati Villa, 1857 [=Hemisinus aspersus Reeve, 1859; Melanopsis maculata Lea; Hemisinus guyaquilensis Reeve, 1859 (Miller, 1879)] 54 Melanoides tuberculata (Muller, 1774) Familia PLEUROCERIDAE 55 Pachychilus aquatilis (Reeve, 1859) [=Melania doryssa aquatilis Adams, 1858] 56 Pachychilus bullata (Lea, 1850) [=Melania ventricosa Moricand, 1856, Morelet, 1863; Melania ventricosa vibex Adams 1878; Melania batesii Reeve, 1860] 57 Pachychilus hian (Lea, 1850) Subclase PULMONATA Orden BASOMMATOPHORA Superfamilia CHILINOIDEA Familia CHILINIDAE 58 Chilina dombeiana (Bruguiere, 1789) [=Conovulus bulimoides Lamarck, 1817; Auricula fluviatilis Lesson 1830; Chilina major Sowerby, 1841; Chilina oldroyde Marshall 1924; Chilina iheringi Marshall 1933] 59 Chilina ovalis Sowerby, 1841 [=Chilina fluctuosa Gray, 1828; Chilina fluctuosa var ovalis Sowerby, 1841] 60 Chilina pulchella Orbigny, 1835 Superfamilia LYMNAEACEA Familia LYMNAEIDAE 61 Fossaria viatrix (Orbigny, 1835) [=Lymnaeus viator Orbigny, 1835] 62 Lymnaea cousini Jousseaume, 1887 [=Lymnaea ubaquensis Piaget, 1914; L. bogotensis Pilsbry, 1935] 63 Lymnaea diaphana King, 1830 [=L. pictonica Rouchebroune y Mabille 1889; L. patagonica Strebel, 1907; L brunneo, flavida Preston, 1910] 64 Pseudosuccinea columella (Say, 1817) [=L. peregrina Clessin, 1882; L. columellaris Adams, 1839; L.viator Orb var? Martens, 1895; L. francisca Poey, 1858] Superfamilia PHYSIACEA Familia PHYSIDAE 65 Physa peruviana Gray, 1828 66 Physa venustula Gould, 1847 Superfamilia PLANORBACEA Familia PLANORBIDAE 67 Biomphalaria andecola (Orbigny, 1835) [=Planorbis montanus Orbigny, 1835; P. titticacensis Clessin, 1884; P. heteropleurus Pilsbry y Vannata, 1896; P. concentratus Pilsbry, 1924; Tropicorbis( Lateorbis) canonicus Hass 1947; Taphius termalus Biese, 1951] 68 Biomphalaria amazonica Paraense, 1966 69 Biomphalaria helophila (Orbigny, 1835) [=Planorbis albicans Pfeiffer, 1839; P. dentatus Gould, 1844; P.dentiferus C B Adams, 1845; P.dentiferus edentatus CB Adams, 1851; Planorbis dentiens Morelet, 1849; P. stagnicola Morelet, 1851; Planorbula dentiens edentula Fischer & Crosse, 1880; Tropicorbis shimeki FC Baker, 1945] 70 Biomphalaria intermedia (Paraense & Deslandes, 1962) 71 Biomphalaria lauricocheae (Philippi, 1869) 72 Biomphalaria occidentalis Paraense, 1981 [=Planorbis clevei Cousin, 1887?] 73 Biomphalaria peregrina (Orbigny, 1835) [=Planorbis chilensis Anton, 1839; Planorbis fuscus Dunker,1848; P. philippianus Dunker, 1848; P. jacobeanus valenciannes Hupé, 1854; P. pedrinus Miller, 1879; P. canonicus Cousin, 1887; P.levistratum Preston, 1912; Tropicorbis schmiererianus Biese,1951; P. montanus Biese 1951; Taphius costatus Biese 1951; Australorbis inflexus Paraense & Deslande, 1956; Taphius tenagophilus, Paraense, 1958] 74 Biomphalaria pucarensis Preston, 1909 75 Biomphalaria straminea (Dunker, 1848) [=Planorbis kunhnianus Dunker, 1848; P. centimetralis Lutz 1918; Taphius peregrinus ( Orbigny ) Hubendick 1961] 76 Biomphalaria raimondi (Philiipii, 1869) 77 Biomphalaria tenagophila (Orbigny, 1835) [=P.bahiensis Dunker, 1850; P. biangulatus Sowerby, 1878; P. immunis Lutz, 1923; P. paysanduensis Marshall, 1930; Australorbis camerunensis Lucena, 1953; Australorbis amphiglyptus Pilsbry, 1951; A. nigricans Lutz, 1919 (Parense & Deslandes 1955)] 78 Biomphalaria trygira (Philippi, 1869) 79 Drepanotrema anatinum (Orbigny, 1835) [=Planorbis haldemani Adams, 1849] 80 Drepanotrema cimex (Moricand, 1839) [=P. macnabianus Adams, 1849; Planorbis angulatus Chitty, 1853 (=D. chitty n.n. Aguayo, 1935); P. bavayi Croose, 1875; P. poeyanus Clessin, 1884; Drepanotrema pulchellus Philippi Schade, 1965] 81 Drepanotrema kermatoides (Orbigny, 1835) [=Planorbis cultratus Orb., 1835 Guyard y Pointier, 1979] 82 Drepanotrema limayanum (Lesson, 1830) [=Planorbis paropseides Orbigny, 1835] 83 Drepanotrema lucidum (Pfeiffer, 1839) [=Planorbis castaneonitens Pilsbry & Vanata, 1896; P. alnorbismelleus Lutz, 1918; P. nordestense (Lucena, 1953)] 84 Helisoma duryi (Wehetby , 1879) 85 Helisoma peruvianum (Broderip, 1832) 86 Helisoma trivolvis (Say, 1817) [=H. equatorium Coussin, 1816] Superfamilia PLANORBACEA Familia ANCYLIDAE 87 Gundlachia concentricus (Orbigny, 1835) 88 Gundlachia crequii (Bavay, 1904) 89 Gundlachia lagunarum (Hass, 1955) INTERNATIONAL JOURNAL OF TROPICAL BIOLOGY AND CONSERVATION Clase BIVALVIA Subclase PALEOHETERODONTA Orden UNIONOIDA Superfamilia UNIONACEA Familia HYRIIDAE 90 Callonaia duprei (Recluz, 1843) [=C. dolabella Sowerby, 1869] 91 Castalia ambigua ambigua Lamarck, 1819 [=Castalia ambigua Lamarck, 1819; C. cuadrilatera Orbigny, 1835; C. acuaticosta Hupe, 1857; C. turgida Hupé, 1857; C. retusa Hupé, 1857; C. crosseana Hidalgo, 1865; C. hanleyana Sowerby, 1869; C. lateriquadrata Sowerby, 1869; Tetraplodon baro Ihering, 1910; Tetyraplodon juruanus Ihering, 1910; Chjevronais colombiana Olsson - Wurtz., 1951] 92 Castalia multisulcata Hupé, 1857 [=C. cordata Adams & Adams, 1857; C.multicostata Sowerby, 1869; C. ecarinata Mousson, 1869; Tetraplodon linki Marshall, 1926; T. stevensi Baker, 1930; C. orinocensis Morrison, 1943; C. ambigua multisulcata Bonetto, 1965] 93 Castalia schombergiana Sowerby, 1869 94 Castalia sulcata orbygnyi Hupé & Deville, 1850 [=Unio orbigny Hupé & Deville, 1850] 95 Diplodon limensis (Kust-Chemnitz, 1851) 96 Diplodon obsolescens Baker, 1914 97 Diplodon suavidicus (Lea, 1856) 98 Diplodontites cookei Kust,- Chemnitz, 1851 99 Paxyodon syrmathophorus Meuschen, 1781 [=Hyria avicularis Lamarck, 1819 Paxyodon syrmatophora rugosissima Sowerby, 1869 100 Prisodon obliquus Schumacher, 1817 101 Triplodon corrugatus (Lamarck, 1819) Superfamilia MUTELLACEA Familia MYCETOPODIDAE 102 Anodonta solidula Lamarck., 1819 103 Anodonta subsinuata Phillippi, 1869 104 Anodonta subrostrata Phillippi, 1869 105 Anodonta ucayalensis Phillippi, 1869 106 Anodontites elongatus (Swainson, 1823) 107 Anodontites (Lamproscapha) ensiformis (Spix & Wagner, 1827) 108 Anodontites incarum (Philippi, 1869) 109 Anodontites tenebricosa (Lea, 1834) [=Mycetopus plicatus, Clessin, 1882; Andontites crispatus tenebricosus Bonnetto & Ezcurra, 1965; Andontites crispata tenebricosa Bonnetto & Drago, 1966] 110 Anodontites trapesialis trapesialis (Lamarck, 1819) [=Anodon. giganteum Spix, 1827; A. (Anodontites) trapesialis susannae (Gray, 1834); A. riograndensis Ihering, 1890 (Ortman, 1921); A. rioplatensis Sowerby, 1870 (Ortman 1921)] Anodontites trapesialis forbesianus (Lea, 1860) [=Anodonta forbesiana Lea, 1860; A. gigantea Spix , Martens 1868; Anodon rioplatensis, Sowerby, 1867; Anodonta trapezialis Lamarck, Doering; Anodonta riograndensis, Ihering, 1890; Glabaris sussannae Gray, Ihering, 1893; Glabaris trapesialis var. cygney- 273 formis Pilsbry, 1896; Gl. simsonianus Pilsbry, 1896; A. (A.) exoticus sussannae, Hass 1931; A. (A.)trapesialis susannae Bonnetto, 1954] 111 Anodontites trapezeus (Spix, 1827) [=Anodon rotundum Spix, 1827; Anodonta spixii Orbigny, 1835; Anodonta cailludi Lea, 1866; Anodonta Pazii. lea, 1866; A. trapeziana var rotundum Doering, 1874; A. rubicunda Doering, 1875; Anodonta trapezea Ihering, 1890; Anodonta trapezea var. spixii, Ihering, 1890; Glabaris trapezia Ihering, 1893; Glabaris Trapezea var caipira Ihering, 1893; Glabaris Trapezea var. Sowerbyana, Ihering, 1893; Anodontites patagonicus rubicunda, Ortmann, 1921] 112 Anodontites trigonus trigonus (Spix, 1827) [=A. (A.) trigonus trautwinianus, Lea] 113 Anodontites weirauchi Hass, 1930 114 Iheringiella sp. 115 Leila blainvilliana (Lea, 1834) [=Anodon parishii, Gray, 1834; Iridina trapesialis, Iridina esula, d’Orbigny, 1835; Leila trapezialis, Hupe, 1857; Anodon hians, Sowerby, 1867, Anodon scriptus, Sowerby, 1867; Leila castelnaudi Martens, 1868; Columba blainvialliana var Riograndensis, Ihering, 1890] 116 Leila esula (Orbigny, 1835) [=Leila pulvinata, Hupe, 1857; Leila castelnauldi, Hupe, 1857; Columba spixii, Ihering, 1890] 117 Monocondylaea semisulcata Adams, 1870 118 Mycetopoda siliquosa Spix, 1827 [=Anodon pygmaeum Spix, 1827; Mycetopoda ventricosa d’Orbigny, 1835; Mycetopus subsinuatus Sowerby, 1868; Mycetopus hupeanus Clessin, 1876; Mycetopus staudingeri, Ihering, 1890; Mycetopus clessini, Iheing, 1893; Mycetopus punctatus, Preston, 1909; Mycetopus krausei, Ihering, 1910; Mycetopoda bahia, Ihering, 1910; Mycetopoda orbignyi, Ihering, 1910; M. siliquosa var. studingeri, Simpson, 1914] 119 Mycetopoda soleniformis Orbigny, 1835 [=Mycetopus solenoides Sowerby, 1839; M. holmbergi Doello-Jurado, 1923; Mycetopoda Iheringi Doello- Jurado, 1923; M. doello-juradoi Ihering 1923] 120 Mycetopodella falcata (Higgins, 1868) 121 Tamsiella sp. Superfamilia MUTELLACEA Familia ETHERIIDAE 122 Barlettia stefanensis (Moricand, 1856) Orden VENEROIDEA Superfamilia CORBICULACEA Familia PISIDIIDAE 123 Eupera simoni Jousseaume, 1889 124 Eupera primei Klappenbach, 1967 125 Pisidium meierbrooki Kuiper & Hinz, 1983 126 Sphaerium forbesii Philippi, 1869 127 Sphaerium lauricocheae Philippi, 1870 128 Sphaerium titicacence (Pilsbry, 1924) Familia Corbiculidae 129 Corbicula sp. 274 MALACOLOGÍA LATINOAMERICANA APÉNDICE 3 Moluscos terrestres Clase GASTROPODA Subclase PROSOBRANCHIA Orden ARCHAEOGASTROPODA Suborden NERITIMORPHA Superfamilia HELICINOIDEA Familia HELICINIDAE 1 Bourciera fraseri Pfeiffer, 1859 2 Helicina acobambensis Pilsbry, 1945 3 Helicina basifilaris Preston, 1914 4 Helicina bourguignatiana Ancey, 1892 5 Helicina carinata d’Orbigny, 1835 6 Helicina chionea Pilsbry, 1949 7 Helicina concentrica Pfeiffer, 1848 8 Helicina contamanoensis Preston, 1914 9 Helicina conus Wagner, 1911 10 Helicina huacapistana Pilsbry, 1949 11 Helicina inca Preston, 1914 12 Helicina lacerata Preston, 1914 13 Helicina laus laus Wagner, 1905 Helicina laus ucayalensis Wagner, 1911 14 Helicina munda Haas, 1951 15 Helicina peruviana Morelet, 1863 16 Helicina phakos Wagner, 1911 17 Helicina psorica Morelet, 1863 18 Helicina pucayaensis Preston, 1914 19 Helicina rotunda d’Orbigny, 1842 20 Helicina schlueteri schlueteri Wagner, 1905 Helicina schlueteri chanchamayoensis Wagner, 1911 Helicina schlueteri densesulcatus Wagner, 1911 21 Helicina serina Preston, 1914 22 Helicina sprucei Pfeiffer, 1857 23 Helicina syngenes Preston, 1914 24 Helicina weyrauchi Haas, 1948 25 Helicina zephyrina Duclos, 1833 Familia CERESIDAE 26 Archecharax aff. orbigny 27 Archecharax blandianus (H. Adams, 1870) 28 Archecharax cousini (Jousseaume, 1887) Suborden NERITIMORPHA Superfamilia CYCLOPHORACEA Familia NEOCYCLOTIDAE 29 Aperostoma allantayum Bartsch & Morrison, 1942 30 Aperostoma balsasense Bartsch & Morrison, 1942 31 Aperostoma blanchetianum (Moricand, 1826) 32 Aperostoma depressum (Da Costa, 1906) 33 Aperostoma dilatatum Haas, 1955 34 Aperostoma indecisum Haas, 1952 35 Aperostoma leai Bartsch & Morrison, 1942 36 Aperostoma peruense Bartsch & Morrison, 1942 37 Aperostoma peruvianus (Da Costa, 1906) 38 Aperostoma pizarroi Bartsch & Morrison, 1942 39 Aperostoma schunkei Haas, 1955 40 Aperostoma superstructum Haas, 1955 41 Aperostoma veracocharum Bartsch & Morrison, 1942 42 Aperostoma viridulum Haas, 1952 43 Calaperostoma chanchapoyasense (Da Costa, 1906) 44 Calaperostoma nigrofasciatum (Miller, 1879) 45 Calaperostoma weyrauchi Haas, 1952 46 Incerticyclus connivens H. Adams, 1866 47 Lagocyclus bartletti (H. Adams, 1870) 48 Lagocyclus crosseanus (Hidalgo, 1866) Familia DIPLOMMATINIDAE 49 Adelopoma sp. Subclase PULMONATA Orden SYSTELLOMMATOPHORA Superfamilia VERONICELLACEA Familia VERONICELLIDAE 50 Colosius sp. 51 Heterovaginina peruviana (Kraus, 1953) 52 Latipes lisei Thomé & Gomes, 1999 53 Montivaginulus coriaceus Kraus, 1954 54 Novavaginula rosaneae Thomé & Gomes, 1999 55 Sarasinula sp. 56 Vaginulus limayanus Lesson, 1830 Orden STYLOMMATOPHORA Suborden ORTHURETHRA Superfamilia PUPILLACEA Familia PUPILLIDAE 57 Pupoides albilabris peruvianus Weyrauch, 1960 58 Pupoides paredesii (d’Orbigny, 1835) [=Pupa limensis Philippi, 1867) Familia VERTIGINIDAE 59 Bothriopupa peruviana Pilsbry, 1934 60 Gastrocopta iheringi (Sutter, 1900) 61 Gastrocopta nodosaria (d’Orbigny, 1835) 62 Gastrocopta pazi (Hidalgo, 1869) 63 Gastrocopta wolfii (Miller, 1879) 64 Pupisoma sp. Familia VALLONIIDAE 65 Vallonia pulchella Müller, 1774 Suborden MESURETHRA Superfamilia CLAUSILIACEA Familia CLAUSILIIDAE 66 Andinia taczanowski (Lubomirski, 1879) 67 Andiniella cumulloana (Pilsbry, 1949) 68 Andiniella flammulata (Loosjes, 1957) 69 Andiniella pomabambensis (Loosjes & Loosjes - Van Bemmel, 1989) 70 Andiniella sztolcmani (Polinski, 1921) [=Nenia acobambensis Pilsbry, 1945] INTERNATIONAL JOURNAL OF TROPICAL BIOLOGY AND CONSERVATION 71 Andiniella wagneri (Polinski, 1921) 72 Bequaertinenia bequaerti (Weyrauch, 1957) 73 Columbinia adamsiana (Pfeiffer, 1860) 74 Columbinia admirabilis Loosjes & Loosjes-Van Bemmel, 1989 75 Columbinia atracta Pilsbry, 1949 76 Columbinia bartletti (H. Adams, 1866) [=Nenia (Columbinia) obesa Haas, 1949] 77 Columbinia binkiae (Pilsbry, 1949) 78 Columbinia bryantwalkeri (Pilsbry, 1922) 79 Columbinia callangana (Ehrmann, 1905) 80 Columbinia gracilis (Pilsbry, 1949) 81 Columbinia huancabambensis (Rolle, 1904) 82 Columbinia juninensis (Smith, 1943) 83 Columbinia marshalli (Pilsbry, 1926) 84 Columbinia sublutea (O. Boettger, 1909) 85 Ehrmanniella boettgeri (Pilsbry, 1945) 86 Ehrmanniella dedicata (Weyrauch & Zilch, 1954) 87 Ehrmanniella quadrata (O. Boettger, 1880) [=Nenia lubomirski Polinski, 1921] 88 Gibbonenia raimondii raimondii (Philippi, 1867) Gibbonenia raimondii versicolor (Jousseaume, 1900) 89 Gracilinenia eugeniae (Polinski, 1921) 90 Gracilinenia filocostulata filocostulata (Lubomirski, 1879) Gracilinenia filocostulata aequistrata Weyrauch, 1956 91 Hemicena polinskiana polinskiana (Pilsbry, 1949) Hemicena polinskiana cerrateae Weyrauch, 1958 Hemicena polinskiana colcabambensis Zilch, 1959 Hemicena polinskiana damianensis Zilch, 1959 92 Incania chacaensis Lubomirski, 1879 [= Clausilia (Nenia) chanchamayoensis Preston, 1907] 93 Incania florezi Weyrauch, 1964 94 Incania jelskii Polinski, 1921 95 Incania mariae Zilch, 1954 96 Incania pilsbryi (Sykes, 1901) [=Nenia macrotis Ehrmann, 1905] 97 Incania trigonostoma (O. Boettger, 1880) 98 Incania warszewiczi Polinski, 1924 99 Peruinia albicolor Weyrauch, 1957 100 Peruinia flachi flachi (O. Boettger, 1889) Peruinia flachi bradina Pilsbry, 1945 Peruinia flachi superba Weyrauch, 1960 Peruinia flachi tingamariae (Pilsbry, 1922) 101 Peruinia granulosa (Sykes, 1900) 102 Peruinia peruana (Troschel, 1847) 103 Peruinia rosenbergi (Preston, 1907) 104 Peruinia slosarski (Lubomirski, 1879) 105 Pfeifferiella haasi Weyrauch, 1957 106 Pfeifferiella koepckei (Zilch, 1953) 107 Pfeifferiella subterranea Weyrauch, 1957 108 Pseudogracilinenia huallagana (Pilsbry, 1949) 109 Pseudogracilinenia jolyi (O. Boettger, 1880) 110 Steatonenia cooki (Pilsbry, 1919) 111 Steeriana (Cylindronenia) canescens canescens Polinski, 1921 Steeriana (Cylindronenia) canescens pangamitoensis Loosjes & Loosjes-Van Bemmel, 1989 275 112 Steeriana (Cylindronenia) cicatricosa Loosjes & Loosjes-Van Bemmel, 1989 113 Steeriana (Cylindronenia) huarangoensis Zilch, 1949 114 Steeriana (Cylindronenia) maranhonensis maranhonensis (Albers, 1854) Steeriana (Cylindronenia) maranhonensis terrestris Weyrauch, 1964 115 Steeriana (Steeriana) cajamarcana Weyrauch & Zilch, 1954 116 Steeriana (Steeriana) celendinensis celendinensis Weyrauch & Zilch, 1954 Steeriana (Steeriana) celendinensis isidroensis Weyrauch & Zilch, 1954 Steeriana (Steeriana) celendinensis minor Weyrauch, 1958 117 Steeriana (Steeriana) malleolata (Philippi, 1867) [=Clausilia steeriana Sykes, 1893] 118 Temesa (Neniatracta) adusta adusta (O. Boettger, 1880) Temesa (Neniatracta) adusta callistoglypta (Pilsbry, 1949) Temesa (Neniatracta) adusta cuencaensis Weyrauch, 1964 Temesa (Neniatracta) adusta dextroversa (Pilsbry, 1949) Temesa (Neniatracta) adusta olssoni (Pilsbry, 1949) Temesa (Neniatracta) adusta tumens (Haas, 1955) 119 Temesa (Neniatracta) andecola (Morelet, 1863) 120 Temesa (Neniatracta) angrandi angrandi (Morelet, 1863) [=Nenia angrandi urubambensi Pilsbry, 1910] Temesa (Neniatracta) angrandi pampasensis (Pilsbry, 1910) Temesa (Neniatracta) angrandi weyrauchi (Pilsbry, 1945) 121 Temesa (Neniatracta) belahubbardi (Pilsbry, 1922) 122 Temesa (Temesa) albocostata albocostata Weyrauch, 1963 Temesa (Temesa) albocostata pygmaea Weyrauch, 1963 123 Temesa (Temesa) balnearum (Crawford, 1939) 124 Temesa (Temesa) bicolor Pilsbry, 1949 125 Temesa (Temesa) breurei Loosjes & Loosjes - Van Bemmel, 1984 126 Temesa (Temesa) clausiliodes (Reeve, 1849) 127 Temesa (Temesa) decimvolvis decimvolvis Weyrauch, 1957 Temesa (Temesa) decimvolvis crassicostata Weyrauch, 1958 Temesa (Temesa) decimvolvis mantaroensis Weyrauch, 1963 Temesa (Temesa) decimvolvis minor Weyrauch, 1963 128 Temesa (Temesa) dohrniana (Neville, 1881) 129 Temesa (Temesa) eka (Pilsbry, 1945) [=Nenia minuscula Pilsbry, 1945] 130 Temesa (Temesa) incarum Pilsbry, 1926 131 Temesa (Temesa) kalinowski Haas, 1955 132 Temesa (Temesa) latestriata Weyrauch, 1958 133 Temesa (Temesa) omissa Weyrauch, 1957 134 Temesa (Temesa) parcecostata (Polinski, 1921) 276 MALACOLOGÍA LATINOAMERICANA 135 Temesa (Temesa) peruviana peruviana (Pfeiffer, 1867) Temesa (Temesa) peruviana rhadina Pilsbry, 1949 136 Temesa (Temesa) pilsbryi pilsbryi Weyrauch, 1956 Temesa (Temesa) pilsbryi laraosensis Weyrauch, 1960 Temesa (Temesa) pilsbryi primigenia Weyrauch, 1960 Temesa (Temesa) pilsbryi shutcoensis Weyrauch, 1960 137 Temesa (Temesa) pusilla (Polinski, 1921) 138 Temesa (Temesa) zilchi Weyrauch, 1963 139 Weyrauchiella huanucensis (Pilsbry, 1949) 140 Zilchiella grandiportus Weyrauch, 1957 Subclase PULMONATA Orden STYLOMMATOPHORA Suborden MESURETHRA Superfamilia STROPHOCHEILACEA Familia STROPHOCHEILIDAE 141 Strophocheilus tenuis Haas, 1955 Familia MEGALOBULIMIDAE 142 Megalobulimus capillaceus (Pfeiffer, 1855) [=?Bulimus rosaceus, Morelet, 1863; ?Bulimus oblongus, Morelet, 1863] 143 Megalobulimus carrikeri (Pilsbry, 1930) 144 Megalobulimus indigens (Fulton, 1914) 145 Megalobulimus leucostoma leucostoma Sowerby, 1835 [=Bulimus castelnaudi Hupé, 1857; Bulimus durfeldti Dohrn, 1863; Bulimus hupeanus Morelet, 1863; Helix (Cochlogena) mathiusii d’Orbigny, 1835] Megalobulimus leucostoma lacunosus d’Orbigny, 1835 146 Megalobulimus lichtensteini lichtensteini Albers, 1854 Megalobulimus lichtensteini semimalleatus Fulton, 1905 147 Megalobulimus maximus maximus (Sowerby, 1825) [=Helix (Cochlogena) kremnoica d’Orbigny, 1835] Megalobulimus maximus huascari (Tschudi, 1852) [=Bulimus (Borus) sanctae-crucis Martens, 1867] Megalobulimus maximus vestitus (Pilsbry, 1926) 148 Megalobulimus popelairianus (Nyst, 1845) 149 Megalobulimus separabilis (Fulton, 1903) [=Strophocheilus jenksianus Pilsbry, 1940] 150 Megalobulimus valenciennesii (Pfeiffer, 1842) Suborden HETERURETHRA Familia SUCCINEIDAE 151 Omalonyx unguis (d’Orbigny, 1835) 152 Succinea aequinoctialis (d’Orbigny, 1837) 153 Succinea andecola Crawford, 1939 154 Succinea meridionalis d’Orbigny, 1837 155 Succinea peruviana (Philippi, 1867) Suborden SIGMURETHRA Infraorden HOLOPODOPES Superfamilia ACHATINACEA Familia FERUSSACIIDAE 156 Ceciliodes consobrina consobrina (d’Orbigny, 1853) Ceciliodes consobrina minutissima (Guppy, 1869) Familia SUBULINIDAE 157 Lamellaxis micra (d’Orbigny, 1835) 158 Leptinaria anomala (Pfeiffer, 1846) 159 Leptinaria lamellata (Potiez & Mechaud, 1835) [=antillearum Shuttleworth] 160 Leptinaria unilamellata (d’Orbigny, 1835) 161 Obeliscus haplostylus (Pfeiffer, 1848) 162 Obeliscus latispira Pilsbry, 1944 163 Obeliscus nanus Haas, 1951 164 Obeliscus pusilla (Adams, 1866) 165 Obeliscus riparia (Pfeiffer, 1852) 166 Obeliscus silvaevagus Weyrauch, 1964 167 Obeliscus teres Haas, 1949 168 Obeliscus triptyx Pilsbry, 1907 169 Opeas beckianum (Pfeiffer, 1846) 170 Opeas contamanoensis Preston, 1914 171 Opeas cuencana (Pfeiffer, 1858) 172 Opeas octogyrum (Pfeiffer, 1856) 173 Opeas pumilum (Pfeiffer, 1840) 174 Subulina octona (Bruguiere, 1789) 175 Subulina yatesi (Pfeiffer, 1855) Superfamilia STREPTAXACEA Familia STREPTAXIDAE 176 Streptartemon deformis (Férussac, 1821) Superfamilia RHYTIDACEA Familia HAPLOTREMATIDAE 177 Austroselenites flora (Pfeiffer, 1850) 178 Austroselenites moyobambensis (Moricand, 1858) Familia SYSTROPHIIDAE 179 Drepanostomella ammoniformis (d’Orbigny, 1835) 180 Drepanostomella andia Pilsbry, 1932 181 Guestieria branickii Lubomirski, 1879 182 Guestieria olssoni Pilsbry, 1932 183 Happia cuzcana (Philippi, 1869) 184 Happia florezi Weyrauch, 1965 185 Miradiscops andivaga (Pilsbry, 1932) 186 Miradiscops brasiliensis (Thiele, 1927) 187 Miradiscops florezi (Weyrauch, 1967) 188 Miradiscops variolata Baker, 1925 189 Systrophia (Entodina) entodonta (Pfeiffer, 1859) 190 Systrophia (Entodina) heligmoida (d’Orbigny, 1835) 191 Systrophia (Entodina) platygyra (Albers, 1857) 192 Systrophia (Systrophia) aff. eatoni 193 Systrophia (Systrophia) affinis (Pilsbry, 1900) 194 Systrophia (Systrophia) altora Weyrauch, 1967 195 Systrophia (Systrophia) haasi Weyrauch, 1960 196 Systrophia (Systrophia) helicycloides (d’Orbigny, 1835) 197 Systrophia (Systrophia) moellendorfii Rolle, 1904 198 Systrophia (Systrophia) ortoni (Crosse, 1871) 199 Systrophia (Systrophia) pilsbryi Weyrauch, 1958 [=obvoluta pilsbryi Weyrauch, 1958] 200 Systrophia (Systrophia) platysma Haas, 1951 201 Systrophia (Systrophia) polycycla (Morelet, 1860) 202 Systrophia (Systrophia) sargenti (Pilsbry, 1900) 203 Systrophia (Systrophia) stenogyra (Pfeiffer, 1854) 204 Systrophia (Systrophia) stenostrepta stenostrepta (Pfeiffer, 1856) INTERNATIONAL JOURNAL OF TROPICAL BIOLOGY AND CONSERVATION Systrophia (Systrophia) stenostrepta declinata (Pilsbry, 1900) 205 Systrophia (Systrophia) systropha (Albers, 1854) [=Systrophia (Systrophia) cereonitens Haas, 1951] 206 Systrophia (Systrophiella) altivaga Crawford, 1939 207 Systrophia (Systrophiella) decagyra (Philippi, 1869) 208 Systrophia (Systrophiella) footei (Dall, 1912) 209 Systrophia (Systrophiella) gyrella (Morelet, 1863) 210 Systrophia (Systrophiella) gyrellina Haas, 1951 211 Systrophia (Systrophiella) planior (Haas, 1951) 212 Systrophia (Systrophiella) planispira Weyrauch, 1967 213 Systrophia (Systrophiella) pseudoplanorbis (Lubomirski, 1879) 214 Systrophia (Systrophiella) tortilis (Morelet, 1863) 215 Systrophia (Systrophiella) variegata (Haas, 1949) 216 Systrophia (Systrophiella) weyrauchi (Haas, 1951) 217 Tamayoa sp 218 Wayampia cayennensis (Pfeiffer, 1841) 219 Wayampia chalicophila (d’Orbigny, 1835) 220 Wayampia guayaquilensis (Pfeiffer, 18529 221 Wayampia incara (Crawford, 1939) 222 Wayampia peruviana (Preston, 1907) 223 Wayampia retinella (Haas, 1949) 224 Wayampia suborbicula (Dohrn, 1882) 225 Wayampia thomasi (Pfeiffer, 1854) 226 Wayampia trochilioneides (d’Orbigny, 1835) 227 Wayampia zilchi (Weyrauch, 1967) 228 Zilchistrophia angigyra (Haas, 1949) 229 Zilchistrophia obvoluta (Haas, 1949) 230 Zilchistrophia tridentata (Weyrauch, 1960) Incertae sedis 231 Ammonoceras pebasensis Preston, 1914 232 Ammonoceras pucayaënsis Preston, 1914 233 Ammonoceras rosenbergiana Preston, 1914 Superfamilia BULIMULACEA Familia BULIMULIDAE 234 Bostryx abancayensis Pilsbry, 1944 [=Bulimulus (Lissoacme) rudistriatus Haas, 1955] 235 Bostryx acalles (Pfeiffer, 1853) 236 Bostryx acme (Haas, 1955) 237 Bostryx acromelas (Morelet, 1863) 238 Bostryx aequicostata Rehder, 1945 [=n.n. para Bulimus scalaroides Pfeiffer, 1867] 239 Bostryx agueroi agueroi Weyrauch, 1960 Bostryx agueroi beltrani Weyrauch, 1964 240 Bostryx aguilari Weyrauch, 1967 241 Bostryx aileenae Breure, 1978 242 Bostryx albicolor (Morelet, 1863) 243 Bostryx andoicus (Morelet, 1863) 244 Bostryx angiportus (Pilsbry, 1932) 245 Bostryx angrandianus (Pilsbry, 1897) [=n.n. para Bulimus radiatus Morelet, 1863] 246 Bostryx anomphalus Pilsbry, 1944 247 Bostryx arcuatus Breure, 1978 248 Bostryx baeri (Dautzenberg, 1901) 249 Bostryx balsanus (Morelet, 1863) 250 Bostryx bermudezae Weyrauch, 1958 251 Bostryx bicolor (Weyrauch, 1967) 277 252 Bostryx binghami (Dall, 1910) 253 Bostryx bisculptus (Pfeiffer, 1869) 254 Bostryx bromeliarum bromeliarum (Pilsbry, 1930) Bostryx bromeliarum grandiportus Weyrauch, 1958 255 Bostryx carinatus carinatus Breure, 1978 Bostryx carinatus trochiformis Breure, 1978 256 Bostryx ceratacme (Pfeiffer, 1855) 257 Bostryx cereicola (Morelet, 1863) 258 Bostryx ceroplasta (Pilsbry, 1896) 259 Bostryx chagualensis Pilsbry, 1932 260 Bostryx chusgonensis Weyrauch, 1960 261 Bostryx circuliportus circuliportus Breure, 1978 Bostryx circuliportus rimacensis Breure, 1978 262 Bostryx claviformis (Haas, 1951) 263 Bostryx coelhoi Breure, 1978 264 Bostryx coerulescens (Pfeiffer, 1858) 265 Bostryx cokerianus (Dall, 1909) 266 Bostryx columellaris (Reeve, 1849) 267 Bostryx conspersus (Sowerby, 1833) 268 Bostryx cracentis Breure, 1978 269 Bostryx crucilineatus Weyrauch, 1967 270 Bostryx cunyacencis Breure, 1978 [=n.n. para Floreziellus florezi Weyrauch, 1967] 271 Bostryx cuspidatus (Morelet, 1863) 272 Bostryx cylindricus Weyrauch, 1960 273 Bostryx delicatulus (Philippi, 1867) 274 Bostryx delumbis (Reeve, 1849) 275 Bostryx denickei (Gray, 1852) 276 Bostryx dentaxis (Pilsbry, 1901) 277 Bostryx dentritoides (Pilsbry, 1896) [=n.n. para Bulimus monticola Philippi, 1869] 278 Bostryx depstus (Reeve, 1849) 279 Bostryx derelictus derelictus Broderip, in Broderip & Sowerby, 1832 Bostryx derelictus ascendens Pilsbry, 1944 280 Bostryx devians Dohrn, 1863 281 Bostryx elatus (Philippi, 1869) 282 Bostryx emaciatus (Morelet, 1863) 283 Bostryx endoplax Pilsbry, 1944 284 Bostryx endoptyx Pilsbry, 1940 285 Bostryx extensus (Haas, 1955) 286 Bostryx ferrugineus (Reeve, 1849) 287 Bostryx fisheri Pilsbry, 1956 288 Bostryx flagellatus (Pilsbry, 1896) 289 Bostryx florezi (Weyrauch, 1967) 290 Bostryx frederici Breure, 1978 291 Bostryx fuligineus Breure, 1978 292 Bostryx globosus Weyrauch, 1967 293 Bostryx gracilis Weyrauch, 1967 294 Bostryx haasi haasi Weyrauch, 1960 Bostryx haasi minor Weyrauch, 1960 295 Bostryx hamiltoni (Reeve, 1849) 296 Bostryx hennahi (Gray, 1830) [=Helix cactorum d’Orbigny, 1835; Bulimus virginalis Morelet, 1860] 297 Bostryx hirsutus Breure, 1978 298 Bostryx huanucensis huanucensis Breure, 1978 Bostryx huanucensis poveli Breure, 1978 299 Bostryx huarazensis Pilsbry, 1944 278 MALACOLOGÍA LATINOAMERICANA 300 Bostryx huayaboensis (Dautzenberg, 1901) 301 Bostryx ignobilis (Philippi, 1867) 302 Bostryx imeldae imeldae Weyrauch, 1958 Bostryx imeldae costifer Weyrauch, 1960 303 Bostryx infundibulum infundibulum (Pfeiffer, 1853) Bostryx infundibulum umbilicatellus (Pilsbry, 1896) Bostryx infundibulum perforatus (Haas, 1951) 304 Bostryx iocosensis (Dautzenberg, 1901) 305 Bostryx kathiae Breure, 1978 306 Bostryx latecolumellaris (Weyrauch, 1967) 307 Bostryx laurentii (Sowerby, 1833) [=Bulimus lorenzii d’Orbigny, 1837] 308 Bostryx lemniscatus (Deshayes, 1838) 309 Bostryx lesueureanus (Morelet, 1860) 310 Bostryx limensis (Reeve, 1849) 311 Bostryx lizarasoae Weyrauch, 1967 312 Bostryx longinquus (Morelet, 1863) 313 Bostryx longispira Weyrauch, 1960 314 Bostryx louisae Breure, 1978 315 Bostryx megomphalus Pilsbry, 1944 316 Bostryx metagyra Pilsbry & Olsson, 1949 317 Bostryx modestus (Broderip, in Broderip & Sowerby, 1832) [=Bostryx (Bostryx) modestus angelmaldonadoi Weyrauch, 1960; Bulimus philippi Pfeiffer, 1842; Bulinus striatulus Sowerby, 1833] 318 Bostryx mollicellus (Reeve, 1849) 319 Bostryx moniezi moniezi (Dautzenberg, 1896) Bostryx moniezi albescens (Dautzenberg, 1896) 320 Bostryx mordani Breure, 1978 321 Bostryx multilineatus Breure, 1978 322 Bostryx multivolvis Pilsbry, 1944 323 Bostryx nigropileatus (Reeve, 1849) [= Bulimus reconditus Reeve, 1849] 324 Bostryx obeliscus Zilch, 1954 325 Bostryx obliquiportus obliquiportus Weyrauch, 1958 Bostryx obliquiportus angispira Weyrauch, 1960 Bostryx obliquiportus inflatiportus Weyrauch, 1960 Bostryx obliquiportus laraosensis Weyrauch, 1960 326 Bostryx olmosensis Breure, 1978 327 Bostryx orophilus (Morelet, 1863) 328 Bostryx ortizi Weyrauch, 1967 329 Bostryx pauli Breure, 1978 330 Bostryx peliostomus (Philippi, 1867) 331 Bostryx peruvianus (Pilsbry, 1944) [=Drymaeus torallyi peruvianus Pilsbry, 1944] 332 Bostryx pictus (Pfeiffer, 1855) [=Bulimulus (Scutalus) punctilineatus Haas, 1951; Naesiotus (Reclasta) tarmensis Weyrauch, 1967] 333 Bostryx piuranus (Albers, 1854) 334 Bostryx placitus Breure, 1978 335 Bostryx planissimus Pilsbry & Olsson, 1949 336 Bostryx platycheilus (Haas, 1955) 337 Bostryx ploegerorum Breure, 1978 338 Bostryx productus Philippi, 1867 339 Bostryx ptyalum (Dall, 1910) 340 Bostryx pygmaeus pygmaeus Weyrauch, 1960 Bostryx pygmaeus costatus (Weyrauch, 1960) 341 Bostryx pyrgidium (Haas, 1955) 342 Bostryx raimondianus Pilsbry, 1896 [=n.n. para Bulimus spretus Philippi, 1869] 343 Bostryx reentsi (Philippi, 1851) 344 Bostryx rehderi Weyrauch, 1960 345 Bostryx rhodolarynx rhodolarynx (Reeve, 1849) [=Bulimus devillei Deville & Hupé, 1850] Bostryx rhodolarynx apurimacensis (Dall, 1917) Bostryx rhodolarynx papillatus (Morelet, 1860) 346 Bostryx rodriguezae Weyrauch, 1967 347 Bostryx rusticellus Morelet, 1860 348 Bostryx sagasteguii (Haas, 1966) 349 Bostryx scalariformis (Broderip, in Broderip & Sowerby, 1832) 350 Bostryx scotophilus Weyrauch, 1967 351 Bostryx scutulatus (Broderip, in B & S, 1832) 352 Bostryx serotinus serotinus (Morelet, 1860) Bostryx serotinus subroseus (Philippi, in Pfr., 1869) 353 Bostryx solutus (Troschel, 1847) 354 Bostryx sordidus (Lesson, 1826) 355 Bostryx spiculatus spiculatus (Morelet, 1860) Bostryx spiculatus florezi (Weyrauch, 1967) Bostryx spiculatus paucicostatus Breure, 1978 Bostryx spiculatus pectinatus Dall, 1912 Bostryx spiculatus pumilus Breure, 1978 356 Bostryx stenacme (Pfeiffer, 1857) 357 Bostryx subelatus (Haas, 1948) 358 Bostryx superbus Weyrauch, 1967 359 Bostryx torallyi (d’Orbigny, 1835) 360 Bostryx tschudii (Troschel, 1852 ) 361 Bostryx tubulatus tubulatus (Morelet, 1860) Bostryx tubulatus scalaricostatus (Morelet, 1860) 362 Bostryx tumidulus (Pfeiffer, 1842) [=Bulinus inflatus Broderip, 1836] 363 Bostryx turritus turritus (Broderip, in Broderip & Sowerby, 1832) Bostryx turritus tamboensis Zilch, 1953 364 Bostryx tyleri (Dall, 1912) [=n.n. para Bulimus simplex Hupé, 1857; Bulimulus smeurorum Breure, 1974] 365 Bostryx veruculum (Morelet, 1860) 366 Bostryx viarins (Pilsbry, 1932) 367 Bostryx vilchezi Weyrauch, 1960 368 Bostryx virgula Haas, 1951 369 Bostryx virgultorum (Morelet, 1863) 370 Bostryx vittatus (Broderip, in Broderip & Sowerby, 1832) [=Buliminus styliger Beck, 1837] 371 Bostryx webbi (Haas, 1951) 372 Bostryx weyrauchi Pilsbry, 1944 373 Bostryx williamsi (Pfeiffer, 1858) 374 Bostryx zilchi zilchi Weyrauch, 1958 Bostryx zilchi compactus Weyrauch, 1960 Bostryx zilchi glomeratus Weyrauch, 1960 375 Bulimulus castelnaui (Pfeiffer, 1857) 376 Bulimulus corumbaensis (Pilsbry, 1897) [=Bulimus amaenus Bonnet, 1864] 377 Bulimulus dendritis (Morelet, 1863) 378 Bulimulus diaphanus (Pfeiffer, 1855) 379 Bulimulus effeminatus (Reeve, 1848) 380 Bulimulus inconspicuous Haas, 1949 INTERNATIONAL JOURNAL OF TROPICAL BIOLOGY AND CONSERVATION 381 Bulimulus orbignyi (Pfeiffer, 1846) 382 Bulimulus ucayalensis (Crosse, 1871) 383 Drymaeus (Drymaeus) acobambensis Weyrauch, 1967 384 Drymaeus (Drymaeus) aestivus (Pfeiffer, 1857) 385 Drymaeus (Drymaeus) alsophilus (Philippi, 1867) 386 Drymaeus (Drymaeus) angulobasis Pilsbry, 1944 387 Drymaeus (Drymaeus) arcuatostriatus (Pfeiffer, 1855) 388 Drymaeus (Drymaeus) aurantiostomus Thompson & Deisler, 1982 389 Drymaeus (Drymaeus) aurisratti (Philippi, 1867) 390 Drymaeus (Drymaeus) bartletti (H. Adams, 1867) 391 Drymaeus (Drymaeus) basitorus Haas, 1951 392 Drymaeus (Drymaeus) beyerleanus beyerleanus (Hupé, 1857) Drymaeus (Drymaeus) beyerleanus mitchelli Dall, 1912 393 Drymaeus (Drymaeus) canaliculatus (Pfeiffer, 1845) 394 Drymaeus (Drymaeus) canarius (Pfeiffer, 1867) 395 Drymaeus (Drymaeus) cantatus (Reeve, 1848) 396 Drymaeus (Drymaeus) castanostrigatus Da Costa, 1906 397 Drymaeus (Drymaeus) catenae Haas, 1952 398 Drymaeus (Drymaeus) cecileae (Moricand, 1858) 399 Drymaeus (Drymaeus) celendinensis Weyrauch, 1956 400 Drymaeus (Drymaeus) chanchamayensis (Hidalgo, 1870) 401 Drymaeus (Drymaeus) chenui (Philippi, 1867) 402 Drymaeus (Drymaeus) chrysomelas (Martens, 1867) 403 Drymaeus (Drymaeus) citrinellus (Philippi Pfeiffer, 1853) 404 Drymaeus (Drymaeus) clarus (Pfeiffer, 1857) 405 Drymaeus (Drymaeus) clathratus (Pfeiffer, 1858) 406 Drymaeus (Drymaeus) cuzcoensis (Reeve, 1849) 407 Drymaeus (Drymaeus) cygneus (Philippi, 1867) 408 Drymaeus (Drymaeus) cylindricus Da Costa, 1901 409 Drymaeus (Drymaeus) delphinae (Moricand, 1858) 410 Drymaeus (Drymaeus) dombeyana (‘Férussac’ Pfeiffer, 1842) 411 Drymaeus (Drymaeus) edmuelleri (Albers, 1854) 412 Drymaeus (Drymaeus) elsteri Da Costa, 1901 413 Drymaeus (Drymaeus) eucosmetus Haas, 1955 414 Drymaeus (Drymaeus) eusteirus Pilsbry, 1944 415 Drymaeus (Drymaeus) expansus expansus (Pfeiffer, 1848) [= Bulinus pulchellus Sowerby, 1833] Drymaeus (Drymaeus) expansus altorum (Weyrauch, 1958) Drymaeus (Drymaeus) expansus flavilabrum Weyrauch, 1967 Drymaeus (Drymaeus) expansus perenensis Da Costa, 1901 Drymaeus (Drymaeus) expansus scitus (H. Adams, 1867) Drymaeus (Drymaeus) expansus subprotractus Pilsbry, 1901 416 Drymaeus (Drymaeus) fallax (Pfeiffer, 1853) 417 Drymaeus (Drymaeus) farrisi farrisi (Pfeiffer, 1858) Drymaeus (Drymaeus) farrisi quadritaeniatus Weyrauch, 1956 418 Drymaeus (Drymaeus) gibber Haas, 1949 279 419 Drymaeus (Drymaeus) gueinzii (Pfeiffer, 1857) 420 Drymaeus (Drymaeus) hamadryas (Philippi, 1867) 421 Drymaeus (Drymaeus) henrypilsbryi henrypilsbryi Weyrauch, 1958 [n.n. para Drymaeus pilsbryi Weyrauch, 1956] Drymaeus (Drymaeus) henrypilsbryi densestrigatus (Weyrauch, 1958) Drymaeus (Drymaeus) henrypilsbryi pichitacalugaensis (Weyrauch, 1958) 422 Drymaeus (Drymaeus) hepaticus hepaticus (Albers, 1854) Drymaeus (Drymaeus) hepaticus libertadensis Pilsbry, 1898 [n.n. para Bulimus taeniatus Philippi, 1869] 423 Drymaeus (Drymaeus) icterostomus (Martens, 1901) 424 Drymaeus (Drymaeus) inaequalis (Pfeiffer, 1857) 425 Drymaeus (Drymaeus) inca Smith, 1943 426 Drymaeus (Drymaeus) interpictus interpictus (Martens, 1867) Drymaeus (Drymaeus) interpictus diversipictus Pilsbry, 1944 427 Drymaeus (Drymaeus) iodostomus (Deville & Hupé, 1850) 428 Drymaeus (Drymaeus) jousseaumei Dautzenberg, 1901 429 Drymaeus (Drymaeus) lamas (Higgins, 1868) 430 Drymaeus (Drymaeus) latitesta Haas, 1952 431 Drymaeus (Drymaeus) laxostylus (Rolle, 1905) 432 Drymaeus (Drymaeus) marcapatensis Breure, 1979 433 Drymaeus (Drymaeus) mexicanus mexicanus (Lamarck, 1822) [=Bulimus humboldtii Reeve, 1849] Drymaeus (Drymaeus) mexicanus primularis (Reeve, 1849) 434 Drymaeus (Drymaeus) morbidus (Philippi, 1867) 435 Drymaeus (Drymaeus) multiguttatus Weyrauch, 1964 436 Drymaeus (Drymaeus) murrinus (Reeve, 1848) 437 Drymaeus (Drymaeus) orthostoma (E.A. Smith, 1877) 438 Drymaeus (Drymaeus) palassus Breure & Eskens, 1981 439 Drymaeus (Drymaeus) peelii (Reeve, 1859) 440 Drymaeus (Drymaeus) pergracilis (Rolle, 1905) 441 Drymaeus (Drymaeus) phryne (Pfeiffer, 1863) 442 Drymaeus (Drymaeus) pictus (Bonnet, 1864) 443 Drymaeus (Drymaeus) poecila poecila (d’Orbigny, 1835) Drymaeus (Drymaeus) poecila percandidus Dall, 1912 Drymaeus (Drymaeus) poecila santanensis Dall, 1912 444 Drymaeus (Drymaeus) ponsonbyi Da Costa, 1907 445 Drymaeus (Drymaeus) praetextus (Reeve, 1850) 446 Drymaeus (Drymaeus) protractus (Pfeiffer, 1855) 447 Drymaeus (Drymaeus) pseudelatus Haas, 1951 448 Drymaeus (Drymaeus) pulchellus (Broderip in Broderip & Sowerby, 1832) 449 Drymaeus (Drymaeus) pulcherrimus (H. Adams, 1867) 450 Drymaeus (Drymaeus) punctatus punctatus Da Costa, 1907 Drymaeus (Drymaeus) punctatus albida Da Costa, 1907 Drymaeus (Drymaeus) punctatus ventricosa Da Costa, 1907 451 Drymaeus (Drymaeus) recedens (Pfeiffer, 1864) 280 MALACOLOGÍA LATINOAMERICANA 452 Drymaeus (Drymaeus) regularis Fulton, 1905 453 Drymaeus (Drymaeus) rosenbergi Da Costa, 1906 454 Drymaeus (Drymaeus) rubrovariegatus (Higgins, 1868) 455 Drymaeus (Drymaeus) rugistriatus Haas, 1952 456 Drymaeus (Drymaeus) saccatus (Pfeiffer, 1855) 457 Drymaeus (Drymaeus) sachsei (Albers, 1854) 458 Drymaeus (Drymaeus) schunkei Haas, 1949 459 Drymaeus (Drymaeus) scitulus (Reeve, 1849) 460 Drymaeus (Drymaeus) scoloides Dautzenberg, 1901 461 Drymaeus (Drymaeus) serratus (Pfeiffer, 1855) 462 Drymaeus (Drymaeus) silvanus Zilch, 1953 463 Drymaeus (Drymaeus) similaris (Moricand, 1856) 464 Drymaeus (Drymaeus) sophieae Breure, 1979 [n.n. para Drymaeus (Drymaeus ) pergracilis Haas, 1952] 465 Drymaeus (Drymaeus) strigatus strigatus (Sowerby, 1833) [=Bulimus musivus Pfeiffer, 1855] Drymaeus (Drymaeus) strigatus cecileae (Moricand, 1858) Drymaeus (Drymaeus) strigatus delphinae (Moricand, 1858) Drymaeus (Drymaeus) strigatus marieanus Pilsbry, 1898 [n.n. para Bulimus mariae Moricand, 1858] Drymaeus (Drymaeus) strigatus purus Pilsbry, 1898 466 Drymaeus (Drymaeus) subeffusus (Philippi, 1869) 467 Drymaeus (Drymaeus) subhybridus (Da Costa, 1906) 468 Drymaeus (Drymaeus) subinterruptus (Pfeiffer, 1853) 469 Drymaeus (Drymaeus) subsimilaris Pilsbry, 1898 470 Drymaeus (Drymaeus) succinea Pilsbry, 1901 471 Drymaeus (Drymaeus) translucidus Weyrauch, 1967 472 Drymaeus (Drymaeus) trujillensis (Philippi, 1867) 473 Drymaeus (Drymaeus) vespertinus (Pfeiffer, 1858) 474 Drymaeus (Drymaeus) vexillum vexillum (Wood, 1828) Drymaeus (Drymaeus) vexilllum varians (Broderip in B & S, 1832) Drymaeus (Drymaeus) vexillum rubellus (Broderip, 1832) Drymaeus (Drymaeus) vexillum tigris (Broderip in Broderip & Sowerby, 1832) 475 Drymaeus (Drymaeus) weeksi Pilsbry, 1926 476 Drymaeus (Drymaeus) zilchi Haas, 1955 477 Drymaeus (Drymaeus) zoographica (d’Orbigny, 1835) 478 Drymaeus (Mesembrinus) anceps (Albers, 1854) 479 Drymaeus (Mesembrinus) apicepunctata (Preston, 1914) 480 Drymaeus (Mesembrinus) bequaerti Weyrauch, 1956 481 Drymaeus (Mesembrinus) cactivorus (Broderip, in Broderip & Sowerby, 1832) 482 Drymaeus (Mesembrinus) coelestini Haas, 1952 483 Drymaeus (Mesembrinus) combinai (Weyrauch, 1958) 484 Drymaeus (Mesembrinus) decoloratus (Sowerby, 1833) 485 Drymaeus (Mesembrinus) eurystomus (Philippi, 1867) 486 Drymaeus (Mesembrinus) fuscobasis (Smith, 1877) 487 Drymaeus (Mesembrinus) grenadensis (Pfeiffer, 1848) 488 Drymaeus (Mesembrinus) keppelli (Pfeiffer, 1853) 489 Drymaeus (Mesembrinus) lentiginosus (Philippi, 1869) 490 Drymaeus (Mesembrinus) leucomelas (Albers, 1854) 491 Drymaeus (Mesembrinus) maculatus (Lea, 1838) 492 Drymaeus (Mesembrinus) miliaris (Philippi, 1867) 493 Drymaeus (Mesembrinus) miltochrous (Albers, 1854) 494 Drymaeus (Mesembrinus) monachus (Pfeiffer, 1857) 495 Drymaeus (Mesembrinus) montagnei (d’Orbigny, 1836) 496 Drymaeus (Mesembrinus) nigroapicatus (Pfeiffer, 1857) 497 Drymaeus (Mesembrinus) nitidus (Broderip in Broderip & Sowerby, 1832) 498 Drymaeus (Mesembrinus) paeteli (Albers, 1854) 499 Drymaeus (Mesembrinus) pseudobesus Breure, 1979 [n.n. para Drymaeus (Diaphanomormus) coelestini obesus Weyrauch, 1964] 500 Drymaeus (Mesembrinus) rectilinearis (Pfeiffer, 1855) 501 Drymaeus (Mesembrinus) rosalbus Pilsbry, 1932 502 Drymaeus (Mesembrinus) serenus (Philippi, 1867) 503 Drymaeus (Mesembrinus) stigmaticus (Philippi, 1867) 504 Drymaeus (Mesembrinus) waldoschmitti Parodiz, 1962 505 Drymaeus (Mesembrinus) ziegleri (Pfeiffer, 1847) 506 Dryptus moritzianus (Pfeiffer, 1847) 507 Llaucanianus haasi Weyrauch, 1967 508 Naesiotus andivagus Weyrauch, 1956 509 Naesiotus bambamarcaensis Weyrauch, 1960 510 Naesiotus cerrateae Weyrauch, 1967 511 Naesiotus elegantulus Weyrauch, 1956 512 Naesiotus exornatus Reeve, 1849 513 Naesiotus fernandezae Weyrauch, 1958 514 Naesiotus geophilus Weyrauch, 1967 515 Naesiotus gracillimus Weyrauch, 1956 516 Naesiotus haasi Weyrauch, 1956 517 Naesiotus haematospira (Pilsbry, 1900) 518 Naesiotus pilsbryi Weyrauch, 1956 519 Naesiotus rhabdotus (Haas, 1951) 520 Naesiotus rivasii (d’Orbigny, 1836) 521 Naesiotus silvaevagus Weyrauch, 1960 522 Naesiotus subcostatus subcostatus (Haas, 1948) Naesiotus subcostatus chamayensis Weyrauch, 1967 Naesiotus subcostatus maranonensis Breure, 1978 523 Naesiotus turritus Weyrauch, 1967 524 Naesiotus vestalis (Albers, 1854) 525 Naesiotus zilchi Weyrauch, 1956 526 Neopetraeus altoperuvianus altoperuvianus (Reeve, 1849) Neopetraeus altoperuvianus gracilior (‘Pfeiffer’ Pilsbry, 1898) 527 arboriferus arboriferus (Pilsbry, 1898) Neopetraeus arboriferus latistrigatus Pilsbry, 1898 Neopetraeus arboriferus obesus Weyrauch, 1967 Neopetraeus arboriferus paucistrigatus Weyrauch, 1967 Neopetraeus arboriferus rectistrigatus Pilsbry, 1898 INTERNATIONAL JOURNAL OF TROPICAL BIOLOGY AND CONSERVATION 528 Neopetraeus binneyanus (Pfeiffer, 1857) 529 Neopetraeus camachoi Weyrauch, 1967 530 Neopetraeus catamarcanus catamarcanus (Pfeiffer, 1858) [=Otostomus millegranus Martens, 1885] Neopetraeus catamarcanus orientalis Breure, 1978 531 Neopetraeus cora cora (d’Orbigny, 1835) Neopetraeus cora unicolor (Pfeiffer in Pfeiffer & Clessin, 1881) 532 Neopetraeus decussatus decussatus (Reeve, 1848) [=Bulimus myristicus Reeve, 1849] Neopetraeus decussatus brownii Pilsbry, 1898 533 Neopetraeus excoriatus (Pfeifer, 1855) 534 Neopetraeus filiola (Pilsbry, 1897) 535 Neopetraeus heterogyrus (Philippi, 1869) 536 Neopetraeus lobbii lobbii (Reeve, 1849) Neopetraeus lobbii ptychostylus (Pfeiffer, 1858) 537 Neopetraeus patasensis (Pfeiffer, 1858) 538 Neopetraeus platystomus (Pfeiffer, 1858) 539 Neopetraeus tessellatus (Shutleworth, 1852) [=Bulimulus atahualpa Dohrn, 1863; Neopetraeus cremnobates ‘Pilsbry’ H.B. Baker, 1963; Neopetraeus tessellatus perincrassatus Pilsbry, 1898; Neopetraeus weyrauchi Pilsbry, 1944] 540 Neopetraeus vadum Pilsbry, 1898 541 Newboldius angiportus Weyrauch, 1960 542 Newboldius crichtoni (Broderip, 1836) 543 Newboldius illustris (Rolle, 1905) 544 Newboldius inca Pilsbry, 1932 545 Plekocheilus (Aeropictus) manco Pilsbry, 1930 546 Plekocheilus (Eurytus) bruggeni Breure, 1978 547 Plekocheilus (Eurytus) conspicuus Pilsbry, 1932 548 Plekocheilus (Eurytus) floccosa (Spix, 1827) 549 Plekocheilus (Eurytus) lacrimosus (Heimburg, 1884) 550 Plekocheilus (Eurytus) lynciculus (Deville & Hupé, 1850) 551 Plekocheilus (Eurytus) piperitus (Sowerby, 1833) 552 Plekocheilus (Eurytus) pseudopiperatus (Moricand, 1858) 553 Plekocheilus (Eurytus) superstriatus superstriatus (Sowerby, 1890) Plekocheilus (Eurytus) superstriatus prodeflexa Pilsbry, 1895 554 Plekocheilus (Sparnotion) hauxwelli (Crosse, 1872) 555 Plectostylus granulosus (Potiez & Michaud, 1835) 556 Scutalus (Kuschelenia) alauda (Hupé, 1857) 557 Scutalus (Kuschelenia) culmineus culmineus d’Orbigny, 1835 [=Bulimus jussieui Pfeiffer, 1846] Scutalus (Kuschelenia) culmineus subjussieui Pilsbry, 1897 [n.n para Bulimus jussieui ‘Valenciennses’ Hupé, 1857] Scutalus (Kuschelenia) culmineus zilchi Weyrauch, 1967 558 Scutalus (Kuschelenia) edwardsi (Morelet, 1863) 559 Scutalus (Kuschelenia) gayi (Pfeiffer, 1857) [=Bulimus revinctus Hupé, 1857] 560 Scutalus (Kuschelenia) lithoica (d’Orbigny, 1835) 561 Scutalus (Kuschelenia) nemorensis (Philippi, 1867) 562 Scutalus (Kuschelenia) pluto (Crosse, 1869) 563 Scutalus (Scutalus) baroni (Fulton, 1896) 281 564 Scutalus (Scutalus) broggii (Pilsbry & Olsson, 1949) 565 Scutalus (Scutalus) chiletensis chiletensis Weyrauch, 1967 Scutalus (Scutalus) chiletensis granulatus Weyrauch, 1967 566 Scutalus (Scutalus) coraformis coraformis (Pilsbry, 1897) Scutalus (Scutalus) coraeformis debilisculptus Weyrauch, 1967 567 Scutalus (Scutalus) cretaceus (Pfeiffer, 1855) [=Bulimulus (Drymaeus) baroni Fulton, 1897] 568 Scutalus (Scutalus) grandiventris Weyrauch, 1960 569 Scutalus (Scutalus) latecolumellaris latecolumellaris (Preston, 1909) Scutalus (Scutalus) latecolumellaris endospira (Pilsbry, 1932) 570 Scutalus (Scutalus) mutabilis mutabilis (Broderip in Broderip & Sowerby, 1832) Scutalus (Scutalus) mutabilis albo (Broderip, 1832) 571 Scutalus (Scutalus) ortizpuentei Weyrauch, 1967 572 Scutalus (Scutalus) phaeocheilus (Haas, 1955) 573 Scutalus (Scutalus) proteus proteus (Broderip in B & S, 1832) Scutalus (Scutalus) proteus granulis (Broderip, 1832) Scutalus (Scutalus) proteus nana (Broderip, 1832) 574 Scutalus (Scutalus) sordidus (Deshayes in D. & Milne Edwards, 1838) 575 Scutalus (Scutalus) steerei (Pilsbry, 1900) 576 Scutalus (Scutalus) versicolor versicolor (Broderip in Broderip & Sowerby, 1832) Scutalus (Scutalus) versicolor callaoensis (Pilsbry, 1897) 577 Scutalus (Suniellus) kochi (Pfeiffer, 1846) 578 Scutalus (Suniellus) troscheli (Philippi, 1867) 579 Scutalus (Vermiculatus) altorum (Haas, 1951) [=Bulimulus (Scutalus) revinctus altorum Haas, 1951] 580 Scutalus (Vermiculatus) angrandi angrandi (Morelet, 1860) Scutalus (Vermiculatus) angrandi schmidti (Haas, 1955) [=Thaumastus (Scholvienia) schmidti Haas, 1955] 581 Scutalus (Vermiculatus) aquilus (Reeve, 1848) 582 Scutalus (Vermiculatus) aureus Breure, 1978 583 Scutalus (Vermiculatus) badius (Sowerby, 1835) 584 Scutalus (Vermiculatus) bicolor bicolor (Sowerby, 1835) Scutalus (Vermiculatus) bicolor major (Pfeiffer, 1868) Scutalus (Vermiculatus) bicolor tenuis (Pfeiffer, 1868) 585 Scutalus (Vermiculatus) coagulatus (Reeve, 1849) 586 Scutalus (Vermiculatus) confusus (Reeve, 1848) 587 Scutalus (Vermiculatus) costifer costifer (Pilsbry, 1932) Scutalus (Vermiculatus) costifer naggsi Breure, 1978 588 Scutalus (Vermiculatus) costulatus Weyrauch, 1967 589 Scutalus (Vermiculatus) cuzcoensis cuzcoensis Weyrauch, 1967 Scutalus (Vermiculatus) cuzcoensis marasensis Weyrauch, 1967 590 Scutalus (Vermiculatus) hendeensis (Pilsbry, 1926) 591 Scutalus (Vermiculatus) longitudinalis (Haas, 1955) 592 Scutalus (Vermiculatus) macedoi Weyrauch, 1967 282 MALACOLOGÍA LATINOAMERICANA 593 Scutalus (Vermiculatus) minutus Breure, 1978 594 Scutalus (Vermiculatus) ochraceus (Morelet, 1863) 595 Scutalus (Vermiculatus) omissus Weyrauch, 1967 596 Scutalus (Vermiculatus) peakei Breure, 1978 597 Scutalus (Vermiculatus) petiti (Pfeiffer, 1846) 598 Scutalus (Vermiculatus) pilosus Weyrauch, 1967 599 Scutalus (Vermiculatus) polymorpha (d’Orbigny, 1835) 600 Scutalus (Vermiculatus) promethus (Crosse, 1869) 601 Scutalus (Vermiculatus) purpuratus (Reeve, 1849) 602 Scutalus (Vermiculatus) pyramidalis Breure, 1978 603 Scutalus (Vermiculatus) quechuarum (Crawford, 1939) 604 Scutalus (Vermiculatus) sanborni Haas, 1947 605 Scutalus (Vermiculatus) thamnoica (d’Orbigny, 1835) 606 Scutalus (Vermiculatus) weddellii (Hupé, 1857) 607 Simpulopsis citrinovitrea (Moricand, 1836) [=Pseudoglandina agitata Weyrauch, 1967] 608 Sphaeroconcha araozi Weyrauch, 1956 609 Stenostylus meleagris (Pfeiffer, 1853) 610 Stenostylus tapadoides (Philippi, 1867) 611 Stenostylus zilchi Weyrauch, 1956 612 Thaumastus (Kara) ortizianus (Haas, 1955) 613 Thaumastus (Kara) viriatus (Morelet, 1863) 614 Thaumastus (Kara) yanamensis (Morelet, 1863) 615 Thaumastus (Paeniscutalus) crenellus (Philippi, 1867) [=Megalobulimus (Microborus) incarum Pilsbry, 1944] 616 Thaumastus (Quechua) olmosensis Zilch, 1954 617 Thaumastus (Quechua) salteri salteri (Sowerby, 1890) Thaumastus (Quechua) salteri maximus Weyrauch, 1967 618 Thaumastus (Quechua) taulisensis Zilch, 1953 619 Thaumastus (Quechua) tetricus Haas, 1951 620 Thaumastus (Scholvienia) alutaceus (Reeve, 1850) 621 Thaumastus (Scholvienia) bambamarcaensis Breure, 1978 622 Thaumastus (Scholvienia) bifasciatus bifasciatus Philippi, (1845) Thaumastus (Scholvienia) bifasciatus unicolor (Philippi, 1869) 623 Thaumastus (Scholvienia) bitaeniatus bitaeniatus (Nyst, 1845) [n.n. para Bulimus bivittatus Philippi, 1845] Thaumastus (Scholvienia) bitaeniatus pallida Strebel, 1919 624 Thaumastus (Scholvienia) brephoides (d’Orbigny, 1835) 625 Thaumastus (Scholvienia) claritae (Strebel, 1910) 626 Thaumastus (Scholvienia) gittenbergerorum Breure, 1978 627 Thaumastus (Scholvienia) huancabambensis Strebel, 1910 628 Thaumastus (Scholvienia) iserni (Philippi, 1867) 629 Thaumastus (Scholvienia) jaspideus jaspideus (Morelet, 1863) Thaumastus (Scholvienia) jaspidea minor Strebel, 1910 630 Thaumastus (Scholvienia) jelskii Lubomirski, (1880) 631 Thaumastus (Scholvienia) porphyrius (Pfeiffer, 1847) 632 Thaumastus (Scholvienia) taeniolus (Nyst, 1845) 633 Thaumastus (Scholvienia) tarmensis tarmensis (Philippi, 1867) Thaumastus (Scholvienia) tarmensis weeksi (Pilsbry, 1930) 634 Thaumastus (Scholvienia) weyrauch[i] Pilsbry, 1944 635 Thaumastus (Thaumastiella) glyptocephalus (Pilsbry, 1897) 636 Thaumastus (Thaumastiella) koepckei Zilch, 1953 637 Thaumastus (Thaumastiella) occidentalis occidentalis Weyrauch, 1960 Thaumastus (Thaumastiella) occidentalis debilisculptus Weyrauch, 1960 638 Thaumastus (Thaumastiella) sarcochrous (Pilsbry, 1897) 639 Thaumastus (Thaumastus) achilles (Pfeiffer, 1853) 640 Thaumastus (Thaumastus) cadwaladeri Pilsbry, 1930 641 Thaumastus (Thaumastus) foveolatus (Reeve, 1849) 642 Thaumastus (Thaumastus) granocinctus Pilsbry, 1901 [n.n. para Bulimus filocinctus Rolle, 1901] 643 Thaumastus (Thaumastus) hartwegi (Pfeiffer in Philippi, 1846) 644 Thaumastus (Thaumastus) impressus (Tschudi in Troschel, 1852) 645 Thaumastus (Thaumastus) insolitus (Preston, 1909) 646 Thaumastus (Thaumastus) magnificus (Grateloup, 1839) 647 Thaumastus (Thaumastus) melanocheilus (Nyst, 1845) 648 Thaumastus (Thaumastus) sangoae (Tschudi in Troschel, 1852) 649 Thaumastus (Thaumastus) satipoensis Pilsbry, 1944 Incertae sedis 650 ?Bostryx guttatus (Broderip in Broderip & Sowerby, 1832) 651 ?Bostryx obliquistriatus (Da Costa, 1901) 652 ?Bostryx striatus (King in Sowerby, 1833) 653 ?Scutalus nivalis (d’Orbigny, 1835) 654 Bulimus biformis Pfeiffer, 1854 PERU ¿? 655 Bulimus ulloae Philippi, 1869 656 Helix heloica d’Orbigny, 1835 657 Thaumastus robertsi Pilsbry, 1932 Familia ODONTOSTOMIDAE 658 Cyclodontina angulata (Wagner in Spix, 1827) Familia ORTHALICIDAE 659 Corona regalis regalis (Hupé in Castelnau, 1857) Corona regalis loroisiana (Hupé in Castelnau, 1857) 660 Corona regina (Férussac, 1821) 661 Orthalicus bensoni (Reeve, 1849) 662 Orthalicus macandrewi (Sowerby, 1889) 663 Orthalicus ponderosus (Strebel, 1882) 664 Orthalicus pulchellus (Spix, 1827) [=Zebra pilsbryi Strebel, 1909] 665 Orthalicus zebra Müller, 1774 [=Bulimus undatus Bruguiere, 1789] 666 Porphyrobaphe iostomus Sowerby, 1824 667 Sultana atramentaria (Pfeiffer, 1855) 668 Sultana deburghiae (Reeve, 1859) 669 Sultana jatesi (“Shuttleworth” Hupé in Castelnau, 1857) 670 Sultana labeo (Broderip, 1828) 671 Sultana maranhonensis (Albers, 1854) 672 Sultana meobambensis (Pfeiffer, 1855) [=Orthalicus trullisatus Shuttleworth, 1856] Sultana meobambensis carnea (Strebel, 1909) INTERNATIONAL JOURNAL OF TROPICAL BIOLOGY AND CONSERVATION 673 Sultana shuttleworthi (Albers, 1854) 674 Sultana sultana sultana (Dillwyn, 1817) [=gallinasultana Lamarck, 1822] Sultana sultana angustior (Preston, 1914) 675 Sultana wrzeesniowskii (Lubomirski, 1880) 676 Sultana yatesi yatesi (Pfeiffer, 1855) [=Porphiriobaphe latevittata Shuttleworth, 1856; Porphyrobaphe sublabeo “Dohrn” Ancey, 1890] Sultana yatesi galactostomus (Ancey, 1890) Sultana yatesi vicaria (Fulton, 1896) Infraorden AULACOPODA Superfamilia ARIONACEA Familia CHAROPIDAE 677 Ptychodon amancaezensis (Hidalgo, 1869) 678 Ptychodon florezi Weyrauch & Flores in Florez, 1968 679 Ptychodon haas Weyrauch & Flores in Florez, 1968 680 Ptychodon unilamellatus Weyrauch, 1965 681 Radiodiscus andium Pilsbry, 1944 682 Radiodiscus bequaerti Florez, 1968 683 Radiodiscus florezi Weyrauch, 1965 684 Radiodiscus giganteus Weyrauch, 1958 685 Radiodiscus microhelix Haas, 1951 686 Radiodiscus peruvianus Crawford, 1939 687 Zilchogyra cleliae Weyrauch, 1965 688 Zilchogyra descendens Weyrauch, 1965 689 Zilchogyra peterseni Weyrauch, 1965 [=Radiodiscus millecostatus Pilsbry & Ferriss, sensu Haas 1933] Superfamilia LIMACACEA Familia LIMACIDAE 690 Deroceras laeve laeve (Müller, 1774) Deroceras laeve andecola (d’Orbigny, 1837) 691 Deroceras reticulatum (Müller, 1774) 692 Limax valentianus Férussac, 1821 Familia MILACIDAE 693 Milax gagates (Draparnaud, 1801) Familia HELICARIONIDAE 694 Habroconus cf. cassiquiensis Newcomb 695 Habroconus semenlini (Moricand, 1845) Familia ZONITIDAE 696 Hawaiia minuscula (A. Binney, 1843) 697 Oxychilus cellarius (Müller, 1774) Infraorden HOLOPODA Superfamilia OLEACINACEA Familia SPIRAXIDAE 698 Euglandina altispira Weyrauch, 1960 699 Euglandina carminensis (Morelet, 1852) 700 Euglandina chanchamayoensis (Preston, 1909) 701 Euglandina cylindrus angusta Haas, 1951 702 Euglandina dactylus (Broderip) 703 Euglandina haasi Thompson, 1982 704 Euglandina striata (Müller, 1774) Superfamilia CAMAENIDACEA Familia CAMAENIDAE 705 Isomeria anodonta Pilsbry, 1949 706 Isomeria equestrata (Moricand, 1858) 707 Isomeria meobambensis (Pfeiffer, 1857) [=Isomeria 283 anestia Pilsbry, 1949] 708 Isomeria stoltzmanni (Lubomirski, 1879) 709 Labyrinthus bifurcatus (Deshayes, 1838) 710 Labyrinthus diminutus Gude, 1903 [=Pleurodonte dacostiana Preston, 1907] 711 Labyrinthus ellipsostomus (Pfeiffer, 1854) 712 Labyrinthus furcillatus (Hupé, 1853) 713 Labyrinthus leprieurii (Petit, 1840) 714 Labyrinthus pronus Pilsbry, 1932 715 Labyrinthus raimondii (Philippi, 1867) 716 Labyrinthus tarapotoensis baeri (Dautzenberg, 1902) Labyrinthus tarapotoensis tarapotoensis (Moricand, 1858) Familia SOLAROPSIDAE 717 Psadara castelnaudii (Hupé & Deville, 1850) 718 Psadara diplogonia (Dohrn, 1882) 719 Psadara incarum (Philippi, 1869) 720 Psadara inornata (Haas, 1951) 721 Psadara monile monile (Broderip, 1832) Psadara monile peruviana (Haas, 1951) 722 Psadara palizae (Weyrauch, 1956) 723 Psadara pizarro Pilsbry, 1944 724 Psadara rosarium (Pfeiffer, 1849) 725 Psadara rugifera (Dohrn, 1882) 726 Psadara selenostoma (Pfeiffer, 1852) 727 Solaropsis undata browni Pilsbry, 1957 728 Solaropsis anguicula (Hupé & Deville, 1853) 729 Solaropsis pellisboae (Hupé, 1853) [=Helix boa Hupé, 1853] Superfamilia HELICACEA Familia HELMINTHOGLYPTIDAE 730 Epiphragmophora (Epiphragmophora) alsophila (Philippi, 1867) 731 Epiphragmophora (Epiphragmophora) angrandi (Morelet, 1863) 732 Epiphragmophora (Epiphragmophora) atahualpa Pilsbry, 1944 733 Epiphragmophora (Epiphragmophora) basiplanata Weyrauch, 1960 734 Epiphragmophora (Epiphragmophora) claromphalos claromphalos (Deville & Hupé, 1850) Epiphragmophora (Epiphragmophora) claromphalos mesomphalos (Morelet, 1960) 735 Epiphragmophora (Epiphragmophora) clausomphalos clausomphalos (Deville & Hupé, 1850) [=Helix tschudiana Philippi, 1867; Helix cuyana Strobel in Pfeiffer, 1867] Epiphragmophora (Epiphragmophora) clausomphalos inferior Pilsbry, 1926 736 Epiphragmophora (Epiphragmophora) connectens Haas, 1959 737 Epiphragmophora (Epiphragmophora) diluta diluta (Pfeiffer, 1842) Epiphragmophora (Epiphragmophora) diluta semiaperta Weyrauch, 1964 [=n.n. pro Epiphragmophora diluta semiclausa Weyrauch, 1960] Epiphragmophora (Epiphragmophora) diluta urubambensis Pilsbry, 1926 284 MALACOLOGÍA LATINOAMERICANA 738 Epiphragmophora (Epiphragmophora) granulosa Weyrauch, 1960 739 Epiphragmophora (Epiphragmophora) gueinzii (Pfeiffer, 1856) 740 Epiphragmophora (Epiphragmophora) haasi Zilch, 1953 741 Epiphragmophora (Epiphragmophora) hemiophalus Haas, 1951 742 Epiphragmophora (Epiphragmophora) higginsi (Miller, 1878) 743 Epiphragmophora (Epiphragmophora) huancabambensis (Pilsbry, 1926) 744 Epiphragmophora (Epiphragmophora) huanucensis (Philippi, 1867) 745 Epiphragmophora (Epiphragmophora) jaspidea (Pfeiffer, 1859) 746 Epiphragmophora (Epiphragmophora) leucobasis Haas, 1951 747 Epiphragmophora (Epiphragmophora) llaguenica Zilch, 1953 748 Epiphragmophora (Epiphragmophora) macasi (Higgins, 1872) 749 Epiphragmophora (Epiphragmophora) mirabilis Weyrauch, 1960 750 Epiphragmophora (Epiphragmophora) olssoni View publication stats Pilsbry, 1926 751 Epiphragmophora (Epiphragmophora) ormeai Weyrauch, 1956 752 Epiphragmophora (Epiphragmophora) orophila Ancey, 1903 753 Epiphragmophora (Epiphragmophora) oroyensis Pilsbry, 1926 754 Epiphragmophora (Epiphragmophora) patasensis (Pfeiffer, 1859) 755 Epiphragmophora (Epiphragmophora) pelliscolubri (Philippi, 1867) 756 Epiphragmophora (Epiphragmophora) webbi Pilsbry, 1932 757 Epiphragmophora (Epiphragmophora) zilchi Weyrauch, 1960 758 Epiphragmophora (Karlschmidtia) cerrateae Weyrauch, 1960 759 Epiphragmophora (Karlschmidtia) lentiformis (Haas, 1955) 760 Epiphragmophora (Pilsbrya) farrisi (Pfeiffer, 1859) 761 Epiphragmophora (Pilsbrya) taulisensis Zilch, 1953 762 Leptarionta woytkowskii Weyrauch, 1960 Familia HELICIDAE 763 Helix aspersa Müller, 1774.