Haliclona (Reniera) caduca - CyberTesis UACh - Universidad ...

Universidad Austral de Chile 

Facultad de Ciencias 

Escuela de Biología Marina 

PROFESOR PATROCINANTE: DR. DIRK SCHORIES 

INSTITUTO: CIENCIAS MARINAS Y LIMNOLÓGICA 

FACULTAD: CIENCIAS 

PROFESOR COPATROCINANTE: MCs. ALEJANDRO BRAVO S. 

INSTITUTO: CIENCIAS MARINAS Y LIMNOLÓGICA 

FACULTAD: CIENCIAS 

Taxonomía, riqueza y distribución de esponjas marinas de Caleta Yerbas 

Buenas (Seno de Reloncaví, X Región de Los Lagos, Chile) 

Tesis de Grado presentada como 

parte de los requisitos para optar al 

Título de Biólogo Marino. 

Yoselin Raquel Z. Roa Aravena 

VALDIVIA – CHILE 

2012

1. INDICE 

Págs. 

1. Índice de figuras, gráficos y tablas……………………………………………………....2-7 

2. Resumen………...………………………………………………………………….............8 

3. Abstract…………………………………………………………………………….............9 

4. Introducción…………………………………………………………………………...10-13 

Objetivo General………………………………………………………............................13 

Objetivos Específicos…………………………………………………........................13-14 

5. Material y métodos………………………………………………...………………….14-23 

5.1) Descripción del área de estudio 

5.2) Extracción muestras para taxonomía 

5.3) Geo-referenciamiento 

5.4) Cobertura por medio de Foto-cuadrantes 

5.5) Inclinómetro 

5.6) Cobertura por medio de Videos 

5.7) Identificación por Taxonomía 

2

5.7.1) Preparación de placas de espículas 

5.7.2) Preparación de cortes de esqueleto 

6. Resultados……………………………………………………………………………24-56 

6.1) Inventario de las especies recolectadas e identificación taxonómica. 

6.2) Identificación de especie, no descrita por otros autores. 

6.3) Cobertura y diversidad de esponjas en las tres distintas profundidades. 

6.3.1) Cobertura por Foto-cuadrantes 

6.3.2) Presencia de esponjas en los Videos 

6.4) Inclinación del substrato. 

6.5) Análisis de varianza. 

7. Discusión……………………………………………………………….......................57-65 

8. Conclusiones……………………………………………………...…………………...66-67 

9. Anexos………………………………………………………………….......................68-75 

10. Bibliografía……………………………………………………………........................76-85 

3

INDICE DE FIGURAS Y TABLAS 

Figura 1. Mapa de la zona de estudio. Específicamente Estuario de Reloncaví, 1: Caleta Yerbas 

Buenas………………………………………………………………………...............................................15 

Figura 2: Análisis de los foto-cuadrantes con el programa CPCe 3.6, usando la una matriz de 10x10 

correspondiente a 100 puntos……………………………………………………………………………....18 

Figura 3. Mapa de Caleta Yerbas Buenas. Indicando el recorrido donde se hicieron los transeptos. Rojo 5 

m de profundidad; azul 10 m y verde 20m de profundidad (Mayo 2010)…………………………………19 

Figura 4. Mapa de Caleta Yerbas Buenas. Indicando el recorrido donde se hicieron los transeptos. Rojo 5 

m de profundidad; azul 10 m y verde 20m de profundidad (Septiembre 2010)…………………………...19 

Figura 5: Cuadrante de 26x40cm, 1: Inclinómetro; 2: Brújula. Nótese que el inclinómetro marca un 

ángulo de 100° de inclinación (Circunferencia de inclinómetro 36 

cm)……………………………………………………………………………………………....................20 

Figura 6. Mapa de la zona de estudio, Caleta Yerbas Buenas. Indicando el recorrido donde se hicieron los 

videos. Rojo 5 m de profundidad; azul 10 m de profundidad y verde 20m de 

profundidad………………………………………………………………………………………………...21 

Figura 7: Cliona chilensis; a) Tilostilos.……………….…………………………………........................28 

Figura 8: Axinella crinita; a) Estilos..…………………………………………………………………......29 

Figura 9: Leucosolenia lucasi; a) triactinas, b) Tetractinas………………………….................................30 

Figura 10: Tethya papillosa; a) megásteres oxisferásteres, b) Estilos…………………............................31 

Figura 11: Mycale doellojuradoi; a) Anisoquelas grandes, b) Subtilos.……………………….................32 

4

Figura 12: Tethya melinka; a-b) Oxisferásteres; b) Acantostrongilásteres pequeños.…............................33 

Figura 13: Tedania mucosa; a) Estilos…………………………………………………............................34 

Figura 14: Tedania spinata; a) Estilos o subtilostilos……………………………………………….........35 

Figura 15: Clionaopsis platei; a ) Espirásteres cortos y macizos; b) Oxas lisas…………………….........36 

Figura 16: Myxilla araucana; a) Estilos………………………………………………………..................37 

Figura 17: Haliclona (Reniera) caduca; a, b) Oxas..……….………………………………….................38 

Figura 18: Haliclona (Reniera) porcelana; a) Distribución espículas en el esqueleto………….……….39 

Figura 19: Myxilla (Ectyomyxilla) chilensis; a) Acantoestilos; b) Tornotes; c) Sigma; d) 

Isochela……………………………………………………………………………….................................40 

Figura 20: Halicnemia papillosa; a) Estilos; b) Gedornte tornotes……………………….........................41 

Figura 21: Haliclona (soestella) auletta; a) Tornotes…………………………………….........................42 

Figura 22: Acarnus sp. ; a) Acantoestilos; b) Chela; c) Cladotylotes; d) Toxa acolada……..…………...43 

Figura 23: Sycon sp; a) Triactina…………………………………………………………………..……...44 

Figura 24: Familia Hymedesmiidae; a) Acantostilos……………………………………………....……..45 

Figura 25: Familia Niphatidae; a) Oxa……………………………………………..…………………….46 

Figura 26: Familia Chondrillidae;….………………………………………………………………….....47 

5

Figura 27: Muestra la calidad de la imágenes obtenidas por medio de los videos a las tres distintas 

profundidades…………………………………………………………………............................................53 

Tabla 1: Especies encontradas, indicando la fecha y profundidad a la cual se encontraron……………...26 

Tabla 2: Porcentaje de cobertura media y desviación estándar en cada una de las profundidades 

muestreadas en Caleta Yerbas Buenas, utilizando una matriz de 10x10 puntos. (mayo 2010)....................50 


muestreadas en Caleta Yerbas Buenas, utilizando una matriz de 10x10 puntos. (septiembre 2010). 

…………………………………………………………..………………………………………………….50 


muestreadas en Caleta Yerbas buenas, utilizando una matriz de 10x10 puntos. Nótese que en la tabla se 

encuentran representadas las esponjas con las cuatro especies más abundantes encontradas (mayo y 

septiembre 2010) n=40. ...……………….……………………………………………...............................51 



encuentran representadas las cuatro especies de esponjas más abundantes recolectadas y también en el 

mes de septiembre se registró la presencia de Axinella crinita y no de Clionaopsis platei como en el mes 

de mayo. (mayo y septiembre 2010) n=40………………….………..........................................................52 

Tabla 6: Muestra el porcentaje de cobertura de un total de 200 imágenes obtenidas por medio de los 

videos…………………………………………………………………………………………....................53 

Tabla 7: Especies recolectadas, indicando la inclinación de su substrato a la cual se 

encontraron……………………………………………………………………………...............................55 

6

Tabla 8: Análisis de varianza (ANOVA simple), comparando la cobertura en las tres profundidades 

muestreadas. No existen diferencias significativas entre las profundidades (p-valor > 0,05). 

(mayo)…………………………………………………………………………………………………...…56 

Tabla 9: Análisis de varianza (ANOVA simple), comparando la cobertura en las tres profundidades 

muestreadas. Existen diferencias significativas entre las profundidades (p-valor < 0,05). 

(septiembre)………………………………………………………………………………………............56 

7

2. RESUMEN 

Este trabajo presenta un inventario de 20 especies de esponjas marinas registradas en la zona 

sur de Chile, específicamente Caleta Yerbas buenas (X Región, de Los Lagos), de ellas 18 

pertenecen a la clase Demospongiae, de estas 4 son del orden Hadromerida, 2 del orden 

Halichondria, 7 del orden Poecilosclerida, 4 al orden Haplosclerida y 1 pertenece al orden 

Chondrosida. Las otras 2 especies encontradas pertenecen a la clase Calcarea (Leucosolenia 

lucasi y Sycon sp.), ambas pertenecientes al orden Leucosolenida. Se presentan fotografías de las 

especies recolectadas, como también fotografías de las espículas identificadas para cada especie. 

Dónde se encontró que Cliona chilensis era la esponja más dominante encontrada en las tres 

profundidades estudiadas. 

Se comparó, estos datos con otros trabajos realizados por otros 

autores. Se elaboró 2 métodos para estimar cobertura de esponjas en esta zona; se comparó 

ambos métodos para ver cuál era el más adecuado, el primero utilizando foto-cuadrantes y el 

segundo utilizando videos; al comparar video y fotografía vemos que el video (Sony TVR 900, 

720x576 px) consume menos tiempo en terreno y nos provee de un mejor registro permanente, 

pero la fotografía a su vez es de mejor resolución para la identificación de las especies (camera 

Nikon D70s, 3000x2000px). Basados en estos estudios se consideró que los foto-cuadrantes era 

el mejor método a utilizar en este caso, por ser más preciso y exacto. 

Palabras Clave: Porifera, Demospongiae, Calcarea, espículas. 

8

3. ABSTRACT 

This paper presents an inventory of 20 marine sponge species recorded in the south of Chile, 

specifically in Caleta Yerba Buena (X Region, Los Lagos), 18 of them belong to the 

Demospongiae class, 4 of them from the Hadromerida order, the other 2 from the Halichondria 

order, 7 from the Poecilosclerida order, 4 from the Haplosclerida order and 1 belongs to the 

Chondrosida order. The other 2 species found, belong to the Calcarea class (Leucosolenia lucasi 

and Sycon sp.), both belong to the Leucosolenida order. Photographs of the recollected species 

are presented, as well as photographs of spicules identified with the species. It was found that 

Cliona chilensis was the most dominant sponge in the three depths studied. These data were 

compared with other works done by other authors. Two methods were elaborated to estimate 

sponges coverage in this area; both methods were compared to see which was the most suitable, 

the first method by the use of photo-quadrants and the second one by the use of videos. 

Comparing the video and the photography we observed that the video (Sony TVR 900, 720x576 

px) consumes less time in the field and provides us with a better permanent record, but at the 

same time the picture has a better resolution for the identification of the species (camera Nikon 

D70s, 3000x2000px). Based on these studies it was found that the photo-quadrants were the best 

method to use in this case for being more precisely and accurate. 

Keywords: Porifera, Demospongiae, Calcarea, spicules. 

9

4. INTRODUCCIÓN 

Las esponjas constituyen un grupo de gran éxito evolutivo, que se ha ramificado en varios miles 

de especies, las estimaciones para el número de especies descritas de Porifera en el mundo varían 

de 5500 (Bouchet, 2006) a 5000-10000 (Groombridge & Jenkins, 2002), pero se estima que 

existen al menos 15.000 especies de esponjas a escala mundial, de las cuales sólo 7.000 están 

descritas actualmente en la literatura (Willenz et al 2009). Y unas 150 especies aproximadamente 

serían de agua dulce. Y son en cierta forma un recurso biológico desconocido. Las esponjas son 

animales bentónicos inmóviles que se alimentan por filtración. Generalmente las esponjas son 

marinas, aunque existen algunas especies que viven en aguas dulces, como la única familia citada 

para Chile de Demospongias de agua dulce Spongillidae (Sielfeld, 2002). Siempre viven unidas 

al substrato y no se desplazan. A veces se desarrollan dentro de algunas oquedades en la roca, son 

denominadas entonces esponjas incrustantes. El tamaño de la esponja es muy variable y oscila 

entre 1 cm y varios metros. Hay esponjas que viven aisladas y esponjas coloniales, aunque la 

mayoría son individuos aislados y masivos. 

El Phylum Porifera está subdividido en tres Clases (Hexactinellida, Calcarea y Demospongiae), 

principalmente de acuerdo a la composición y estructura de sus elementos esqueléticos. La Clase 

Hexactinellida posee un esqueleto de espículas silíceas con seis rayos y viven principalmente en 

aguas marinas profundas. La Clase Calcarea poseen un esqueleto formado por espículas de 

carbonato de calcio, casi siempre con 3 rayos. La Clase Demospongiae son las más abundantes, 

representan el 85-90% de la fauna global de esponjas e incluyen las escasas especies de agua 

dulce conocidas (Willenz et al 2009). 

10

Las esponjas están estrechamente ligadas a las condiciones ambientales del lugar donde viven, y 

muchas desaparecen rápidamente por destrucción del hábitat, la pesca excesiva, etc. En general 

se considera a las esponjas buenos indicadores de la actividad hidrodinámica, de la concentración 

de sustancias en suspensión, de la alteración de los hábitat, etc., y su estructura ecológica nos 

puede proveer de una importante información sobre el comportamiento temporal de algunas de 

estas variables ambientales. Además desde hace tiempo se sabe que las esponjas constituyen una 

importante fuente de productos bioactivos, que se interpreta como un sistema de defensa química 

frente a factores externos causantes de estrés como la depredación, el exceso de recubrimiento 

por organismos adherentes (fouling) o la fuente de competencia por el espacio. 

Como una consecuencia probable de sus más de 5000 kilómetros de largo, la costa (que abarca 

41° de latitud) y el hecho que posee el sistema más complejo e inaccesible de islas, fiordos y 

canales, Chile tiene un deficiente inventario taxonómico de la fauna de esponjas (Försterra et al., 

2005; Hajdu et al., 2006; Carvalho et al., 2007). Uno de los primeros inventarios realizados en 

Chile arrojó un catastro de 140 especies registradas en toda esta área (Breitfuss, 1898 y Thiele 

1905). Los trabajos más relevantes en el ámbito nacional son los realizados por Burton (1930, 

1936) y Desqueyroux-Faúndez (1972, 1990). En 1999 Pansini & Sará identificaron 44 especies 

encontradas en el Estrecho de Magallanes las muestras fueron obtenidas en 1991 y 1994, de ellas 

se identificaron 18 familias y 29 géneros, en donde las familias más numerosas fueron Clathriidae 

con 7 especies, Suberitidae con 6, Myxillidae y Haliclonidae con 4. Por otro lado el trabajo 

realizado por Matthew et al., (2008), determino la riqueza de especies de todas las taxas de 

invertebrados bentónicos de Chile, incluyendo por supuesto las esponjas, se encontró 206 

especies distintas a lo largo de la costa chilena, incluyendo las Islas del Pacífico (Isla de Pascua, 

11

Archipiélago Juan Fernández, Isla Sala y Gómez e Islas Desventuradas) las especies encontradas 

corresponden al 3,75% del total mundial (5500 especies aprox.) tomando como referencia el 

trabajo de Brusca & Brusca (2003). 

En el ambiente marino la zona con mayor número de especies conocidas, es la del territorio 

antártico chileno con 144 especies, llama la atención el escaso número de especies conocidas para 

la zona norte del país, donde, si bien la diversidad de esponjas es en general baja, también existe 

falta de estudios en la zona (Sielfeld, 2002). Por otro lado, en lo que concierne a la zona sur de 

nuestro país el último trabajo es el Willenz et al (2009) quienes describen un total de 39 especies 

distintas de esponjas en la zona de los fiordos. Aun así son escasos los trabajos que nos entreguen 

datos concretos en relación a la ecología de las esponjas que habitan las costas del sur de Chile, 

en donde datos de abundancia y cobertura son prácticamente desconocidos. 

Esta falta de trabajos y especialistas que se dediquen al estudio de esponjas marinas se debe en 

gran medida a la gran dificultad que existe a la hora de identificar las especies, a veces asociado a 

la falta de caracteres morfológicos estables y a la gran plasticidad morfológica que en conjunto 

presenta el grupo. Su clasificación tradicionalmente ha estado basada en la naturaleza y forma de 

sus elementos esqueléticos y en su disposición dentro del animal y existe tan alta diversidad de 

esos elementos que se ha tenido que crear una nomenclatura especializada. Actualmente, en la 

clasificación de las esponjas se recurre a características más sofisticadas que las puramente 

morfológicas para complementar las observaciones tradicionalmente empleadas. Así, se recurre 

al estudio de aspectos ultra estructurales como la forma y tamaño de las espículas, la forma y 

tamaño de las cámaras coanociticas, de características celulares, (Boury-Esnault et al., 1990), de 

la estructura de la larva y hábitos de la misma (Wapstra & Soest, 1987), entre otros. 

12

Para realizar un monitoreo e identificación de la diversidad marina es necesario conocer la 

diversidad biológica de las esponjas marinas de nuestras costas con carácter prioritario, así como 

su ecología para buscar una forma de conservación y establecer una metodología subacuática 

para estimar la cobertura de esponjas marinas en un área determinada. Muchas de estas especies 

marinas están desapareciendo rápidamente debido a la destrucción del hábitat y la sobrepesca. 

OBJETIVO GENERAL 

Caracterizar (determinar) la riqueza y diversidad de esponjas marinas de Caleta Yerbas Buenas 

(Puerto Montt, X Región de Los Lagos). 

OBJETIVOS ESPECÍFICOS 

1) Identificar e inventariar las especies de esponjas por medio de taxonomía, morfología, fotografías 

y preparaciones de espículas. 

2) Determinar si existe diferencia entre la cobertura y diversidad de esponjas en tres profundidades 

distintas (5,10 y 20 m de profundidad). 

3) Comparación de dos métodos de estimación de cobertura en el área estudiada. 

13

4) Determinar si hay diferencias en la presencia de esponjas dependiendo de la inclinación de su 

substrato. 

5. MATERIALES Y MÉTODOS 

5.1) Caracterización del área 

El lugar de estudio fue el sector de Caleta Yerbas Buenas (41°40'23''S, 72°39'24''W, ubicada a 

aproximadamente 32 km. al sureste de la ciudad de Puerto Montt, X Región, Chile (Fig. 1). Las 

precipitaciones media anual de esa zona es de 2.342 mm, con un máximo en junio (Di Castri & 

Hajek, 1976), debido a las altas precipitaciones en esta zona, la salinidad no presenta mayores 

cambios. La temperatura del aire y el agua son moderadas y similares entre sí. Media de verano 

es de 15,1 ° C y la media en invierno 7,7 º C (Di Castri & Hajek, 1976). La temperatura promedio 

del agua a 20m es de 11°C. La salinidad promedio en esta zona a 20m es de 36,9PSU, a 10m es 

de 36,1PSU y a 5m es 35,9PSU. Para la extracción de las muestras se realizaron buceos en marea 

media. 

14

Figura 1. Mapa de la zona de estudio. A) Chile continental, B) Seno de Reloncaví, C) Área de 

estudio en el Seno de Reloncaví. (Nota: Flecha azul indica específicamente el área de estudio 

Caleta Yerbas Buenas). 

15

5.2) Extracción muestras para taxonomía 

Las muestras para la identificación taxonómica fueron extraídas por medio de buceo autónomo a 

tres profundidades 5, 10 y 20 m en marea media. Esto se hizo en dos épocas distintas del año, el 

primer muestreo correspondió a los días 10 y 11 de mayo y el segundo muestreo se realizó el día 

23 de septiembre del año 2010. Para la extracción se utilizó una espátula o un cuchillo, con los 

que se cortó un trozo considerable de esponja abarcando desde el pinacodermo hasta el 

coanodermo, luego este trozó era depositado en una bolsa Ziploc previamente rotulada. Junto con 

esto se tomó una fotografía 

in situ de la esponja, la cual nos ayudaría después para la 

caracterización en vivo de la especie, donde consideramos color, forma y consistencia. Fuera del 

agua, cada trozo de esponja era traspasado a un frasco rotulado con la fecha, lugar y profundidad 

y luego se fijaba con alcohol al 95% para ser transportadas al laboratorio. Se recolectaron 13 

muestras a 5m, 20 muestras a 10m y 21 muestras a 20m en el mes de mayo; en el mes de 

septiembre se recolectaron 7 muestras a 5m, 9 muestras a 10m y 13 muestras a 20m. La 

recolección de las muestras se hizo con el objetivo de obtener la mayor cantidad de especies 

diferentes, es decir, se recolectaba un trozo de esponja que encontrábamos por el trayecto del 

buceo, sin importar si recolectábamos 1 o 5 muestras de la misma especie. 

16

5.3) Geo- referenciamiento 

Consistió en, que por medio de buceo, geo-referenciar las fotografías tomadas con los fotocuadrantes, 

esto se llevó a cabo de la siguiente manera: Dos buzos, uno llevaba una cámara de 

fotos y el otro llevaba una boya la cual tenía el GPS submarino GARMIN 76 CSx conectado con 

una antena en la superficie (el cable del GPS se mantenía en dirección vertical a la superficie del 

agua). El buzo que llevaba la boya debía tener cuidado en no dar mucha cuerda a la boya, es decir 

en llevar la boya lo mas perpendicular posible a la dirección de buceo. El GPS se prendía antes de 

iniciar el buceo y grababa a intervalos de 5 segundos un punto durante el recorrido del buceo, así 

se formo un registro de los lugares donde tomamos las fotos. Previamente sincronizábamos la 

hora del GPS con la de la cámara fotográfica antes y después del buceo. Posteriormente se 

guardo las posiciones del GPS dentro de la imágenes (formato jpg) usando el programa GeoSetter 

3.6. En el caso de la cámara de video se marco el inicio y el final de la ruta con dos puntos de 

referencia (waypoints) (Schories & Niedzwiedz 2011). 

5.4) Cobertura por medio de Foto-cuadrantes 

Para obtener la cobertura, consistió en fotografiar por medio de foto-cuadrantes, las tres 

profundidades a estudiar 5, 10 y 20 metros. Los foto-cuadrantes tenían un área de 26 x 40 cm. 

Cada foto-cuadrante fue analizado con el programa CPCe 3.6 (Kohler & Gill, 2006), se 

analizaron 40 foto-cuadrantes para cada profundidad, con el fin de estimar la cobertura de las 

especies de esponjas que allí habitan y también la cobertura de otras especies como; 

equinodermos, moluscos, algas, crustáceos, etc. Se utilizó una cuadricula de 10x10 lo que 

corresponde a 100 puntos (Fig. 2), se procedió a identificar el individuo que caía justo bajo cada 

17

punto, para así obtener después los porcentajes de cobertura, esto se hiso con cada fotografía y se 

obtuvieron los porcentajes de cobertura en cada caso. Posteriormente se combinaron los datos de 

cada imagen para producir comparaciones entre las tres profundidades distintas, además de 

comparar dentro de los mismos a través de la generación automática de hojas Excel. Cada imagen 

fue en primera instancia analizada por separado y los datos generados fueron posteriormente 

combinados, con los de otras imágenes en una sola hoja que contenía en general parámetros 

estadísticos descriptivos para cada una de las especies y sustrato. Para la presentación de los 

resultados de cobertura se utilizó la desviación estándar. El recorrido de los transeptos realizados 

se presenta en las Figuras 3 y 4. 

Figura 2: Análisis de los fotocuadrantes con el programa CPCe 3.6, usando la una matriz de 

10x10 correspondiente a 100 puntos. 

18

Figura 3. Mapa de Caleta Yerbas Buenas. Indicando el recorrido donde se hicieron los 

transeptos. Rojo 5 m de profundidad; azul 10 m y verde 20m de profundidad (Mayo 2010). 

Figura 4. Mapa de Caleta Yerbas Buenas. Indicando el recorrido donde se hicieron los 

Fotocuadrantes. Rojo 5 m de profundidad; azul 10 m y verde 20m de profundidad (Septiembre 

2010). 

19

5.5) Inclinómetro 

Se fabricó un inclinómetro (Fig. 5) el cual se colocó en la base del cuadrante de 26x40cm, de esta 

forma logramos conocer el ángulo de la pared en donde se encontraba cada muestra. El 

inclinómetro consiste en un disco el cual contiene dentro un peso fijado en el fondo, en el exterior 

una regla con 36cm, en donde 1cm equivale a 10° de inclinación. 

Figura 5: A: Cuadrante de 26x40cm, 1: Inclinómetro con indicador metálico; 2: Profundímetro. 

Nótese que el inclinómetro marca un ángulo de 100° de inclinación. 3: nivel de agua (al lado 

izquierdo), B: Vista mecánica del inclinómetro; a: círculo rojo indica el peso. 

5.6) Cobertura por medio de videos 

Se realizaron grabaciones por medio de una cámara de video en las tres profundidades a estudiar 

5, 10 y 20 m. Las grabaciones se hicieron los días 10 y 11 de mayo del 2010, la distancia 

recorrida a 5m fue de 202m, a 10m de 180m y a 20m de 142m (Fig. 6). La cámara de video fue 

20

llevada por un buzo poniéndola vertical al fondo y el buceo fue realizado a una velocidad 

homogénea en las tres profundidades. Una vez realizados los videos, se llevaron al programa 

DVDVideosoft 5.2, en donde se extrajeron imágenes con una resolución de 720x576 px cada 2 

segundos. Se escogieron 200 imágenes de cada profundidad para su posterior análisis, el cual 

consistió en observar y clasificar en dos; clasificación A (hay esponja) y clasificación B (No hay 

esponja). Con estos datos, se calculo un porcentaje para cada categoría. 

Figura 6. Mapa de Caleta Yerbas Buenas. Indicando el recorrido donde se hicieron los videos. Rojo 5 

m de profundidad con una distancia recorrida de 202m; azul 10 m de profundidad con una distancia 

recorrida de 180m y verde 20m de profundidad con 142m recorridos. 

21

5.7) Identificación por Taxonomía 

La identificación taxonómica fue realizada junto con el Dr. Eduardo Hajdu en el Laboratorio de 

Porífera de la Universidad Federal de Rio de Janeiro en el mes de noviembre del 2010. Se trabajó 

con las fotografías tomadas in situ, y se hizo un preparado de espículas de cada esponja 

muestreada siguiendo el procedimiento descrito por Hooper (2000). De esta forma se logró 

identificar cada una de las esponjas muestreadas en cada zona. 

7.1) Preparación de placas de espículas 

1) Se debe extraer un pequeño trozo de esponja y después colocarlo en un tubo de ensayo, 

agregar 10ml de Hipoclorito de Sodio (Cloro). 

2) Luego, hay que flamear el tubo en un mechero, moviendo con pinza de madera hasta que 

la materia orgánica se degrade. 

3) Se debe colocar agua destilada al tubo (10ml) y luego llevar a una centrífuga por 4 

minutos a 1000 revoluciones, con una pipeta extraer el sobrenadante, repetir esto 2 veces. 

4) Posteriormente, con una pipeta tenemos que extraer el sobrenadante y agregar alcohol al 

90% (10ml), luego llevar a la centrífuga por 4 minutos a 1000 revoluciones hacer esto 2 

veces. 

5) Después, con una pipeta sacamos el sobrenadante y colocamos nuevamente alcohol pero 

solo 4 ml. 

22

6) Debemos montar las placas sobre una estufa caliente o plancha, resuspendemos las 

espículas con una pipeta y colocamos 3 gotas en un portaobjeto, dejamos secar. 

7) Cuando la placa este seca observamos si hay suficientes espículas, sino colocamos 1 o 2 

gotas más y dejamos secar. 

8) Finalmente cuando este seco agregar 1 o 2 gotas de bálsamo de Canadá para fijar la 

muestra, colocamos el cubreobjetos y dejamos secar. 

5.7.2) Preparación de cortes de esqueleto 

1) Cortamos un trozo de esponja perpendicular a la superficie de la esponja y hacemos un 

corte más profundo del esqueleto interno utilizando un bisturí nuevo y limpio. 

2) Luego colocamos el trozo en un portaobjeto y llevamos a una estufa o plancha, dejamos 

secar. 

3) Finalmente cuando este seco colocamos 1 o 2 gotas de bálsamo de Canadá para fijar la 

muestra y cubrimos con un cubreobjetos, dejamos secar el bálsamo. 

Nota: Una vez secas las preparaciones (esto puede tardar hasta una semana, debido al bálsamo de 

Canadá, el que requiere varios días para estar completamente seco), se llevan directamente a un 

microscopio óptico para su observación y posterior identificación. 

23

6. RESULTADOS 

6.1) Inventario de las especies recolectadas e identificación taxonómica. 

Se encontraron 20 especies distintas de esponjas. Estas especies fueron (Tabla 1): 

1. Cliona chilensis (Thiele, 1905) 

2. Axinella crinita (Thiele, 1905) 

3. Leucosolenia lucasi (Dendy, 1891) 

4. Tethya papillosa (Thiele, 1905) 

5. Mycale doellojuradoi (Burton, 1940) 

6. Tethya melinka (Hajdu, Willenz & Lobo-Hajdu) in press. 

7. Tedania mucosa (Thiele, 1905) 

8. Tedania spinata (Ridley, 1881) 

9. Clionaopsis platei (Thiele, 1905) 

10. Myxilla araucana (Hajdu et al, in press) 

11. Haliclona (Reniera) caduca (Desqueyroux- Faúndez, Carvalho & Willenz) in press. 

12. Haliclona (Reniera) porcelana (Desqueyroux- Faùndez, Lôbo- Hajdu & Willenz) in 

press. 

24

13. Myxilla (Ectyomyxilla) chilensis (Thiele, 1905) 

14. Halicnemia papillosa (Thiele, 1905) 

15. Haliclona (Soestella) auletta (Thiele, 1905) 

16. Sycon sp. (Risso, 1826) 

17. Acarnus sp. (Gray, 1867) 

18. Familia Hymedesmiidae (Topsen, 1928) 

19. Familia Niphatidae (Van Soest, 1980) 

20. Familia Chondrillidae (Gray 1872) 

25

Tabla 1: Especies encontradas, indicando la fecha y profundidad a la cual se encontraron. 

Especie 

Autor 

Mayo 

5m 10m 20m 

Septiembre Mayo Septiembre Mayo Septiembre 

1. Cliona chilensis (Thiele, 1905) x x x x x x 

2. Axinella crinita (Thiele, 1905) x x 

3. Leucosolenia lucasi (Dendy, 1891) x 

4. Tethya papillosa (Thiele, 1905) x x x x 

5. Mycale doellojuradoi (Burton, 1940) x 

6. Tethya melinka sp. nov. 

(Hajdu, Willenz 

& Lobo-Hajdu) 

in press. 

x 

7. Tedania mucosa (Thiele, 1905) x x x 

8. Tedania spinata (Ridley, 1881) x 

9. Clionaopsis platei (Thiele, 1905) x 

10. Myxilla araucana 

(Hajdu et al, in 

press) x x 

11.Haliclona (Reniera) caduca 

(Desqueyroux- 

Faúndez, 

Carvalho & 

Willenz sp. 

nov.) in press. 

x 

(Desqueyroux- 

Faùndez, Lôbo- 

Hajdu & 

Willenz sp. 

nov.) in press. 

12. Haliclona (Reniera) 

porcelana 

x 

13. Myxilla (Ectyomyxilla) 

chilensis (Thiele, 1905) x 

14. Halicnemia papillosa (Thiele, 1905) x x X 

15. Haliclona (Soestella) 

auletta (Thiele, 1905) x 

16. Sycon (Risso, 1826 x 

17. Acarnus sp. (Gray, 1867) x 

18. Familia Hymedesmiidae (Topsen, 1928) x 

(Van Soest, 

19. Familia Niphatidae 1980) x 

20. Familia Chondrillidae (Gray, 1872) x 

26

En relación a las fechas de muestreo, se encontró que Cliona chilensis, Axinella crinita, Tethya 

papillosa, Tedania mucosa, Myxilla araucana y Halicnemia papillosa estaban presentes en los 

dos meses distintos de muestreo (mayo y septiembre), en donde Cliona chilensis fue la única que 

se encontró en las tres profundidades muestreadas (5, 10 y 20 m), Axinella crinita se encontró 

solo a 20m, Tethya papillosa fue encontrada a 5 y 10m, Tedania mucosa fue encontrada a 10m en 

el mes de mayo y a 5 y 10m en el mes de septiembre, Myxilla araucana fue encontrada a 5m 

metros en el mes de mayo y a 10m en el mes de septiembre, Halicnemia papillosa fue encontrada 

a 20m en el mes de mayo y a 10 y 20m en el mes de septiembre. Las especies encontradas solo 

en el mes de mayo fueron Leucosolenia lucasi a 5m, Mycalle doellojuradoi a 10m, Tethya 

melinka a 10m, Haliclona (Reniera) caduca a 10m, Haliclona (Reniera) porcelana a 10m, 

Myxilla (Ectyomyxilla) chilensis a 20m, Acarnus sp. a 20m, Sycon a 10m, Hymedesmia sp. a 

20m, Haliclona (Soestella) auletta a 20m, Familia Niphatidae a 5m y la Familia Chondrillidae a 

5m. Las especies encontradas solo en el mes de septiembre fueron Tedania spinata a 10m y 

Clionaopsis platei a 20m de profundidad. A continuación se presentan las especies encontradas 

en una ficha completa, que contiene la taxonomía, sinónimos, nombre común, descripción 

general de la especie obtenida de la literatura, distribución, espículas y observaciones personales 

que corresponden a datos obtenidos en el momento de muestreo. 

27

Cliona chilensis (Thiele, 1905) 

Clase Demospongiae 

Orden Hadromerida (Topsent, 1894) 

Familia Clionaidae (D´Orbingny, 1851) 

Sinónimos: Pseudosuberites pseudo (Dickinson, 1945) 

Nombre común: Esponja zapallo perforadora 

Descripción General: Grande; mayoritariamente globular. También formas finas costras con 

papilas visibles o no, enterrándose en el sustrato, o cubren completamente fragmentos de sustrato 

calcáreo. Ósculos más bien grandes, conspicuos, con una corta membrana en forma de chimenea, o 

no visibles (probablemente contraídos). Superficie con abundantes pailas planas, redondeadas. 

Consistencia firme, ligeramente compresible y elástica. Color en vivo amarillo fuerte, con manchas 

púrpura o marrón debido a algas epibiónticas, que son más frecuentes sobre ejemplares grandes; 

color con etanol beige (Willenz et al 2009). 

Distribución: Chile 23°S- 44°S. Profundidad 10-30m (Willenz et al 2009). 

Espículas: Megascleras: tilostilos (Fig. 7a) longitud 358 µm. Comparamos estos datos con los de 

Willenz et al (2009) (Anexo 1), tilostilos longitud 270-549 μm, grosor 11-16μm. 

Observaciones personales: Color en vivo Amarillo fuerte, al estar fijada en etanol adquiere un 

color café, muy abundante en zona sur de Chile, ejemplares encontrado desde los 5 m hasta los 20 

m, consistencia dura y rígida, con pequeñas prolongaciones regulares planas y redondas. Espículas, 

del tipo megascleras; tilostilos medidos hasta 350 μm. 

Figura 7: Cliona chilensis; a) Tilostilos 

28

Axinella crinita (Thiele, 1905) 


Orden Halichondrida (Gray,1867) 

Familia Axinellidae (Carter, 1875) 

Nombre común: Esponja arbolito 

Descripción General: Erecta, ramificada, frecuentemente más de 15 cm de alto. Ramas finas, 

normalmente menos de 5 mm de grosor. Ósculos poco visibles. Superficie áspera o aterciopelada. 

Coloración en vivo amarillo claro; después de recolección y etanol, beige (Willenz et al 2009). 

Distribución: Chile: 40°S-54°S. Profundidad 10-150m (Willenz et al 2009); especímenes 

encontrados a 20m. 

Espículas: Megascleras: estilos de longitud 550 µm (Fig.8 a). Comparamos estos datos con los de 

Willenz et al (2009) (Anexo 2) estilos longitud 340-1.037μm, ancho 6-26μm (Anexo. 2a); estilos 

más pequeños (Anexo. 2b-c) tiene pequeñas espinas sobre extremo agudo, longitud 145-466μm, 

ancho 6-22μm (Anexo. 2 d-e) 

Observaciones personales: Rígida y ramificada, similar a ramas de los arboles, finas, superficie 

áspera, irregularidades pequeñas; color en vivo blanco; y en etanol beige. 

Figura 8: Axinella crinita; a) Estilos 

29

Leucosolenia lucasi (Dendy, 1891) 

Clase Calcarea 

Orden Leucosolenida (Hartman, 1958) 

Familia Leucosoleniidae (Minchin, 1900) 

Nombre común: Esponja chimenea traslúcida 

Descripción General: Delicada, formada por tubos erectos asconoides (longitud 6-10 mm, diámetro 

2-5 mm) conectados por un estolón. Ósculos sin borde, en parte terminal de los tubos. Superficie 

ligeramente híspida debido a diactinas protuberantes (Willenz et al 2009). 

Distribución: Chile: 42°S-43°S. Profundidad 8-12m (Willenz et al 2009); especímenes encontrados 

a 5m. 

Espículas: Megascleras: triactinas sagital (Fig. 9 a), espículas con tres radios, longitud de un radio 

200μm; tetractina sagital (Fig. 9 b), espículas con cuatro radios, comparar con (Anexo 3) 

Observaciones personales: se encontró en concha de gasterópodo, formada por pequeños tubos 

conectados, color en vivo café claro, superficie suave. 

Figura 9: Leucosolenia lucasi; a) triactinas, b) tetractinas 

30

Tethya papillosa (Thiele, 1905) 



Familia Tethyidae (Gray, 1848) 

Sinónimos: Donatia papillosa (Thiele, 1905) 

Nombre común: Esponja bolita de queso común 

Descripción General: Esférica. Ósculos no visibles. Superficie aterciopelada rugosa. Consistencia 

compresible. Esponja se contrae después de recolección y manipulación. Color en vivo amarillo 

claro; color en etanol más claro (Willenz et al 2009). 

Distribución: Chile: 41°S- 43°S.Profundidad 10-18m (Willenz et al 2009). Especímenes 

encontrados entre los 5-10m. 

Espículas: Megascleras: Estilos (Fig. 10b) longitud 800 µm, microscleras: megásteres oxisferásteres 

(Fig. 10 a). Comparamos estos datos con Willenz et al (2009) (Anexo 4) estilos longitud 400- 

1.500μm, ancho 5-24μm. Microscleras: megásteres y micrásteres. Megásteres son oxisferásteres Ø 

42-50μm (Anexo 4 d). Micrásteres varían de acantostrongilásteres (Anexo 4e) a 

acantosferostrongilásteres (Anexo 4 f) o esferoxiásteres (Anexo 4 h) Ø 8-18μm. 

Observaciones personales: De forma esférica, pequeña, superficie irregular, color en vivo amarillo 

ambar; color en etanol amarillo claro. 

Figura 10: Tethya papillosa; a) megásteres oxisferásteres b) estilos. 

31

Mycale doellojuradoi (Burton, 1940) 


Orden Poecilosclerida (Topsent, 1928) 

Familia Mycalidae (Lundbeck, 1905) 

Nombre común: Esponja de Doello Jurado 

Descripción General: Masiva; cónico-tubular. Ósculo apical, 15 mm de diámetro. Superficie casi 

lisa a marcadamente irregular, con numerosas proyecciones conulosas. Superficie aterciopelada. 

Consistencia blanda, pero no frágil. Color en vivo amarillo claro a blanquecino; color en etanol gris 

(Willenz et al 2009). 

Distribución: Chile: 42°S-48°S. Profundidad 8-93m (Willenz et al 2009). Especímenes encontrados 

a 10m. 

Espículas: Megascleras: substilos (Fig. 11 b) longitud 385 µm. Microscleras anisoquelas grandes 

longitud 51 µm. Comparamos estos datos con los de Willenz et al (2009) (Anexo 5) substilos 

(Anexo 5 a,b,c) longitud 373-433μm, ancho 4-10μm. Microscleras anisoquelas grandes longitud 50- 

58μm (Anexo 5 d); intermedias longitud 30-40μm (Anexo 5 e); pequeñas longitud 17-24μm (Anexo 

5 f). 

Observaciones personales: superficie irregular, con algunas proyecciones, consistencia blanda y 

firme, color en vivo amarillo ámbar, color en etanol café. 

Figura 11: Mycale doellojuradoi; a) Anisoquelas grandes; b) Subtilos. 

32

Tethya melinka (Hajdu, Willenz & Lobo-Hajdu sp. nov.) 



Familia Tethyidae (Gray, 1848) 

Nombre común: Esponja bolita de queso de Melinka 

Descripción General: Esférica a semiesférica. Ósculos no visibles. Superficie ligera a 

marcadamente conulosa, (cónulos a menudo de aspecto globular). Consistencia compresible. 

Esponja se arruga después de recolección y manipulación (Willenz et al 2009). 

Distribución: Chile 44°S. Profundidad 10-16m (Willenz et al 2009). Especímenes encontrados a 

10m. 

Espículas: Microscleras: Oxisferásteres (Fig. 12 a), acantostrongilásteres pequeños (Fig.12 b). 

Comparamos estos datos con los de Willenz et al (2009) (Anexo 6) Megascleras: estilos longitud 

231-1.210μm y ancho 2,5-19μm (Anexo 6 a, b, c). Microscleras: megásteres y 

micrásteres. 

Megásteres son oxisferásteres, lisos, en una categoría de tamaño Ø 15-57μm (Anexo 6 d, e). 

Micrásteres son acantostrongilásteres, en 3 categoías de tamaño: grandes, al interior del coanosoma, 

Ø 29-32μm (Anexo 6 f); medianos, Ø 10-14,5μm (Anexo 6 g); pequeños, Ø 8,5-9μm (Anexo 6 h, i). 

Observaciones personales: Forma esférica, superficie lisa con pequeñas protuberancias, 

consistencia más bien dura, color en vivo amarillo anaranjado con pequeñas tonalidades café. 

Figura 12: Tethya melinka; a-b) Oxisferásteres; b) Acantostrongilásteres pequeños. 

33

Tedania mucosa (Thiele, 1905) 



Familia Tedaniidae (Ridley & Dendy, 1886) 

Sinónimos: Tedania excavata (Thiele, 1905) 

Tedania fuegiensis (Thiele, 1905) 

Tedania pectinicola (Thiele, 1905) 

Nombre común: Esponja de fuego mucoso (esponja viscosa de fuego) 

Descripción General: Masiva; con proyecciones cortas lobuladas (~ 1 cm) o largas digitadas (~ 5 

cm), generalmente con ósculos apicales relativamente grandes. Superficie aterciopelada. 

Consistencia dura y friable. Color en vivo amarillo rojizo o beige; color en etanol tonos beige 


Distribución: Chile: 32°S-55°S. Profundidad 10-31m (Willenz et al 2009). Especímenes 

encontrados a 5 y 10m. 

Espículas: Megascleras: Estilo (Fig. 13a), longitud 280 µm. Comparamos estos datos con los de 

Willenz et al (2009) (Anexo 7) tornotes ectosómicos longitud 169-230μm, ancho 3-8μm (Anexo 7 a, 

b, c); estilos rectos o ligeramente curvado, longitud 220-350μm, ancho 5-19μm (Anexo 7 d, e, f). 

Microscleras: oniquetas, en 2 categorías: grandes, longitud 135-295μm (Anexo 7 g, h, i); pequeñas 

longitud 43-104μm (Anexo 7 j, k, l). 

Observaciones personales: Grande, consistencia dura y resistente, con proyecciones cortas y 

lobuladas, distinguible claramente los ósculos. Color en vivo beige o café claro; color en etanol café 

claro. 

Figura 13: Tedania mucosa; a) Estilos. 

34

Tedania spinata (Ridley, 1881) 



Familia Tedaniidae (Ridley & Dendy, 1886) 

Sinónimos: Oxytedania bifaria (Sará, 1978) 

Tedania corticata (Sará, 1978) 

Tedania laminariae (Sará, 1978) 

Tedania murdochi (Topsent, 1913) 

Nombre común: Esponja de fuego mucoso (esponja viscosa de fuego) 

Descripción General: Masiva; forma un estrato fino sobre ostiones, o presenta proyecciones 

lobuladas (~ 3-4 cm altura), generalmente con ósculos apicales relativamente pequeños. 

Consistencia dura y friable. Superficie aterciopelada. Color en vivo beige o marrón purpúreo oscuro; 

color en etanol diferentes tonos de beige (Willenz et al 2009). 

Distribución: Chile: 39°S-50°S. Profundidad 14-19m (Willenz et al 2009). Especímenes 

encontrados a 10m. 

Espículas: Megascleras: Estilos o subtilostilos longitud 240 µm (Fig. 14 a). Comparamos estos 

datos con los de Willenz et al (2009) (Anexo 8) tornotes ectosómiccos, lisos, longitud 153-244μm, 

ancho 3-5,5μm (Anexo 8 a, b, c); estilos o subtilostilos, rectos o ligeramente curvados, lisos, 

longitud 182-344μm, ancho 3-8,5μm (Anexo 8 d, e, f). Microscleras: oniquetas categorías: grandes, 

longitud 119-239μm (Anexo 8 g, h, i); pequeñas, longitud 42-68μm (Anexo 8 j, k, l). 

Observaciones personales: Grande, consistencia dura y resistente, con proyecciones cortas y 

lobuladas, distinguible claramente los ósculos. Color en vivo morado oscuro; color en etanol 

morado. 

Figura 14: Tedania spinata; a) Estilos o subtilostilos. 

35

Clionaopsis platei (Thiele, 1905) 



Familia Clionidae (D´Orbigny, 1851) 

Sinónimos: Clionopsis platei (Thiele, 1905) 

Nombre común: Esponja de zapallo falso 

Descripción General: Grande; generalmente globular. Ósculos grandes; conspicuos, con corta 

membrana en forma de chimenea, o no visible. Superficie con abundantes papilas planas, 

redondeadas, orificios inhalantes claramente visibles en ejemplares vivos. Consistencia dura, 

ligeramente compresible, elástica. Color en vivo amarillo oscuro, con manchas púrpura o marrón 

debido a la presencia de algas epibiónticas; color en etanol beige (Willenz et al 2009). 

Distribución: Chile: 23°S-44°S. Profundidad 0-32m (Willenz et al 2009). Especímenes encontrados 

a 20m. 

Espículas: Megascleras: oxas lisas, longitud 450µm (Fig. 15 b). Microscleras: espirásteres corto y 

macizo (Fig. 15 a), longitud 25µm. Comparamos estos datos con los de Willenz et al (2009) (Anexo 

9) megascleras: oxas lisas, longitud 340-530μm, ancho 8-32μm (Anexo 9 a, b); tilostilos longitud 

220-350μm, ancho 5-21μm (Anexo 9 c). Microscleras: espirásteres grandes y finos, longitud 40- 

80μm, ancho 8-10μm (Anexo 9 d, e); espirásteres cortos y macizos, longitud 20-30μm, ancho 10- 

20μm (Anexo 9 f, g, h). 

Observaciones personales: Grande, superficie con papilas planas, consistencia dura y ligeramente 

compresible. Color en vivo amarillo con manchas café, color en etanol café claro. Esta especie es 

fácilmente confundible con Clionaa chilensis al verlas a simple vista, es por eso que es muy 

necesario hacer un análisis de las espículas para una mejor identificación. 

Figura 15: Clionaopsis platei; a) Espirásteres cortos y macizos; b) Oxas lisas. 

36

Myxilla araucana (Hajdu et al., in press) 



Suborden Myxillina 

Familia Myxillidae (Dendy, 1922) 

Nombre común: Esponja miga de pan araucana 

Descripción General: Esponja erecta; ligeramente cónica, cónica invertida o fusiforme con 

profundos surcos longitudinales. Ósculos 3-5mm de diámetro; apicales ocasionalmente con pequeña 

membrana perioscular. Superficie lisa, consistencia blanda. Color en vivo amarillo claro 

blanquecino; en etanol beige (Willenz et al 2009). 

Distribución: Chile: 42°S-44°S, hábitat; sustrato rocoso inclinado, profundidad 15-23m (Willenz et 

al 2009) individuos encontrados a 5m. 

Espículas: Megascleras: estilos longitud 418µm (Fig. 16 a). Comparamos estos datos con los de 

Willenz et al (2009) (Anexo 10) Megascleras: estilos rectos o ligeramente curvados, lisos, longitud 

410-425μm, ancho 14-17μm (Anexo 10 a); Subtilotes, ectosómicos, longitud 195-245μm, ancho 9- 

16μm (Anexo 10 b, c, d); acantostilos espinados, finos, longitud 62-165μm, ancho 4-12μm (Anexo 

10 e, f, g). Microscleras: isoquelas ancoradas, longitud 54-65μm (Anexo 10 h, i). 

Observaciones personales: Tamaño grande, superficie lisa, consistencia blanda, color en vivo 

amarillo claro y en etanol beige. 

Figura 16: Myxilla araucana; a) Estilos. 

37

Haliclona (Reniera) caduca (Desqueyroux- Faúndez, Carvalho & 

Willenz sp.nov.) in press 


Orden Haplosclerida (Topsent, 1928) 

Familia Chalinidae (Gray, 1867) 

Nombre común: Esponja de nube beige. 

Descripción General: Lobulada; base masivamente incrustante; 8-10 cm de diámetro; 10-11 

lóbulos; 5-6cm altura. Cada lóbulo porta un ósculo apical coronado por una corta membrana en 

chimenea. Superficie lisa. Consistencia muy blanda, frágil. Color en vivo blanquecino a rosa; en 

etanol beige claro (Willenz et al 2009). 

Distribución: Chile: 42°S-43°S; profundidad 13m (Willenz et al 2009), individuos encontrados a 

5m de profundidad. 

Espículas: Megascleras: oxas (Fig. 17 a), longitud 95µm. Comparamos estos datos con los de 

Willenz et al (2009) (Anexo 11) Megascleras: oxas, fusiformes, ligeramente curvadas, con puntas 

romas, longitud 85-113μm, ancho 5-10μm (Anexo 11 a). 

Observaciones personales: Pequeña, superficie lisa, consistencia blanda, color en vivo rosado y en 

etanol beige. 

Figura 17: Haliclona caduca; a) Oxas. 

38

Haliclona (Reniera) porcelana (Desqueyroux- Faúndez, Lôbo- 

Hajdu & Willenz sp.nov.) in press 




Nombre común: Esponja violeta blanda 

Descripción General: Base finamente incrustante; con lóbulos cortos (5-10mm altura), digitados, 

casi siempre cilíndricos. Lóbulos distribuidos irregularmente, con ósculo apical de igual diámetro 

que el lóbulo. Superficie regular, lisa. Consistencia muy blanda y frágil. Color en vivo violeta a rosa; 

en etanol gris claro (Willenz et al 2009). 

Distribución: Chile: 42°S-43°S, profundidad 5-18 m (Willenz et al 2009), individuos encontrados a 

5 m. 

Espículas: Megascleras: oxas, longitud 145µm. Comparamos estos datos con los de Willenz et al 

(2009) (Anexo 12) Megascleras: oxas, ligeramente curvadas, con puntas agudas, longitud 120- 

173μm, ancho 5-10μm (Fig. 18 a). 

Observaciones personales: Superficie lisa, consistencia blanda, pequeña, color en vivo rosado y en 

etanol gris. 

Figura 18: Haliclona porcelana; a) Distribución espículas en el esqueleto. 

39

Myxilla (Ectyomyxilla) chilensis (Thiele, 1905) 



Suborden Myxillina 

Familia Myxillidae (Dendy, 1922) 

Sinónimos: Ectomyxilla chilensis (Thiele, 1905) 

Ectyomyxilla chilensis (Thiele, 1905) 

Myxilla chilensis (Thiele, 1905) 

Descripción General: Con numerosas verrugas planas en la superficie, a veces en pequeños grupos, 

la mayoría un poco más grande de 1-2mm. Los diámetros de sus ósculos es de un poco más de 1mm 

(Thiele 1905). 

Distribución: Chile, 44°S (Thiele 1905) 

Espículas: Megascleras: Acantostilos longitud 185 µm (Fig.19 a), tornotes longitud 178 µm 

(Fig.19b). Microscleras: Sigmas 45µm de largo (Fig. 19c), isochela 27µm de largo (Fig. 19d). 

Comparamos estos datos con Thiele (1905) Megascleras; Acantoestilos 170-200 μm de longitud y 

10-12μm de ancho. Tornotes ligeramente fusiformes 170-190 μm de largo y 7,6μm de ancho. 

Microscleras; Sigmas 45-47μm de largo y 2,3μm de ancho. Isochela la más pequeña es de 12-15μm 

de largo, la más grande es de aproximadamente 2 veces mayor de 25-35μm de largo. 

Observaciones personales: Tamaño mediano, consistencia blanda y esponjosa, ósculos 

distinguibles, color en vivo blanquecino con manchas amarillas, color en etanol gris. 

Figura 19: Myxilla (Ectyomyxilla) chilensis; a) Acantoestilos; b) Tornotes; c) Sigma; d) Isochela. 

40

Halicnemia papillosa (Thiele, 1905) 


Orden Halichondria 

Familia Heteroxyidae 

Sinónimos: Higginsia papillosa (Thiele, 1905) 

Descripción General: Porosa y áspera, con grandes agujeros de diferentes tamaños, forma ovoide, 

el diámetro de sus ósculos es por lo general inferior a 1mm, color en vivo amarillo claro. (Thiele, 

1905) 

Distribución: Chile 44°S; profundidad 30m (Thiele, 1905) individuos encontrados a 10 y 20m. 

Espículas: Megascleras: Estilos longitud 1,3mm (Fig. 20 a). Microscleras: gedornte tornotes 

longitud 140 µm (Fig. 20 b). Comparamos estos datos con Thiele (1905) Megascleras; Estilos miden 

mas de 1,5mm de largo y Amphioxes que son mucho más delgados que los estilos, solo 5,6μ de 

ancho y su longitud es de 1mm. Microscleras; gedornte tornotes miden entre 100 a 170 μ de 

longitud. 

Observaciones personales: Con grandes poros, en tamaños diversos, consistencia blanda, color en 

vivo blanco invierno, color en etanol gris. 

Figura 20: Halicnemia papillosa; a) Estilos; b) Gedornte tornotes. 

41

Haliclona (soestella) auletta (Thiele, 1905) 




Haliclona (Soestella) auletta (Thiele, 1905) 

Sinónimos: Haliclona auletta (Thiele, 1905) 

Reniera auletta (Thiele, 1905) 

Descripción General: Esponja tubular, ramificada, cada tubo de diferente ancho y largo, 

ligeramente curvas e irregulares. (Thiele, 1905) 

Distribución: Chile 44°S Calbuco. 

Espículas: Megascleras: Tornotes 148 µm de largo (Fig. 21 a). Comparamos estos datos con Thiele 

(1905) Tornotes: 150µ de largo y 11µ de ancho. 

Observaciones personales: Esponja blanda, tubular, de color en vivo blanco y en etanol beige. 

Ósculos muy visibles e identificables. 

Figura 21: Haliclona soestella auletta; a) Tornotes. 

42

Acarnus sp. (Gray, 1867) 



Familia Acarnidae 

Descripción General: Esponja incrustante, tamaño pequeño, superficie lisa, consistencia blanda y 

pegajosa, color en vivo naranjo y en alcohol marrón. 

Distribución: Chile: 44°S, individuos encontrados a 20m 

Espículas: Megascleras: Acantoestilos (Fig. 22 a); Cladotylotes (Fig. 22 c); Toxa acolada (Fig. 22 

d). Microsclera: Chela (Fig. 22 b) 

Observaciones personales: Superficie lisa, consistencia blanda, color en vivo naranjo fuerte y en 

etanol granate. 

Figura 22: Acarnus sp. ; a) Acantoestilos; b) Chela; c) Cladotylotes; d) Toxa acolada. 

43

Sycon sp (Risso, 1826) 

Clase Calcarea 

Subclase Calcaronea 

Orden Leucosoleniida 

Familia Sycettidae 

Sinónimos: 

Dunstervillia (Bowerbank, 1845) 

Homoderma (Lendenfeld, 1885) 

Leuckartea (Haeckel, 1872) 

Scypha (Gray, 1821) 

Streptoconus (Jenkin, 1908) 

Sycarium (Haeckel, 1869) 

Sycocystis (Haeckel, 1870) 

Syconella (Schmidt, 1868) 

Sycortis (Haeckel, 1872) 

Sycum (Agassiz, 1846) 

Tenthrenodes (Jenkin, 1908) 

Descripción General: Esponja cilíndrica, de consistencia delicada, con forma de jarrón, áspera y 

que parece fijada al sustrato por un delgado peciolo. Alcanza hasta 5cm de alto y 7.5mm de 

diámetro. Un único ósculo terminal, rodeado a menudo por una corona de espinas. Esqueleto 

formado por triactinas, tetractinas y oxas. Color cremoso, amarillento, grisáceo y blanquecino. Se 

encuentra sobre rocas, conchas y estipes de macroalgas. Desde el intermareal hasta los 100m de 

profundidad. 

Distribución: Desde las islas británicas al mediterráneo 

Espículas: Megascleras: Triactinas (Fig. 23 a) 

Observaciones personales: Forma tubular, consistencia blanda, tamaño pequeño, color en vivo 

blanco invierno, color en etanol gris. 

Figura 23: Sycon sp; a) Triactina 

44

Familia Hymedesmiidae (Topsen, 1928) 



Familia Hymedesmiidae (Topsent, 1928) 

Descripción General: Especie que forma pequeñas placas incrustantes, con pequeñas 

irregularidades y protuberancias, consistencia blanda, color en vivo naranjo y en alcohol marrón. 

Distribución: Chile: 44°S, individuos encontrados a 20m. 

Espículas: Megascleras: Acantostilos (Fig. 24 a). Microscleras: sigmas e isoquetas 

Observaciones personales: Pequeña, superficie irregular, consistencia blanda, color en vivo 

anaranjado y en etanol granate. 

Figura 24: Familia Hymedesmiidae; a) Acantostilos. 

45

Familia Niphatidae (Van Soest, 1980) 



Suborden Haplosclerina 

Descripción General: Haplosclerida con formas de crecimiento incrustante y masivo, en forma de 

abanico, vaso o ramificada. Esqueleto ectosomal se compone de densas multiespiculas, en tres 

dimensiones, por lo general más compacto que el esqueleto coanosomal. Color en vivo café claro y 

en etanol café oscuro. (Desqueyroux-Faúndez & Valentine, 2002a.) 

Distribución: La mayoría de las especies son tropicales o subtropicales. (Van Soest, 1980), especies 

encontradas a 5 m de profundidad. 

Espículas: Megascleras: oxas (Fig. 25 a) en dos formas strongylote y stylote. 

Observaciones personales: Forma irregular, consistencia blanda, superficie lisa, color en vivo café 

claro y en etanol café oscuro. 

Figura 25: Familia Niphatidae; a) Oxa. 

46

Familia Chondrillidae (Gray, 1872) 


Orden Chondrosida (Boury-Esnault & Lopès, 1985) 

Descripción General: Orden Chondrosida (anteriormente asignada al orden Hadromerida). Masivas 

esponjas incrustantes firmes, suaves, resistentes y flexibles. Superficie lisa y brillante, color en vivo 

beige y en etanol café. 

Distribución: Chile: 44°S, individuos encontrados a 5m. 

Espículas: No se logro la identificación de las espiculas. 

Observaciones personales: Esponja blanda, color en vivo café, ósculos no distinguibles a simple 

vista. Muestra encontrada sobre un mitílido. 

Figura 26: Familia Chondrillidae. 

47

6.2) Identificación de especie, no descrita por otros autores. 

Se encontró una especie, no descrita para esta zona. Su descripción se encuentra solo hasta las 

costas de Perú. Esta especie es Acarnus sp. (Figura 22) la cual es una esponja de tipo incrustante, 

de tamaño pequeño, con una superficie bastante lisa, de un color naranjo intenso. Acarnus sp. 

pertenece a la Familia Acarnidae y una de sus mayores características es que presenta diferentes 

tipos de espículas de variados tamaños y formas, entre los que encontramos megascleras 

(Acantostilos, Cladotylotes, Toxa) y microscleras (Chelas). 

6.3) Cobertura y diversidad de esponjas en las tres distintas profundidades. 

6.3.1) Cobertura por Foto-cuadrantes. 

El análisis de las fotografías permitió estimar la cobertura de las esponjas marinas en las dos 

fechas de muestreo. En el mes de mayo (Tabla 2), la cobertura promedio tuvo su máximo de 1,26 

± 2,54% a los 10m de profundidad, a los 5m de profundidad la cobertura promedio fue de 0,45 

±1,93% y a los 20m la cobertura promedio fue de 0,90 ±2,39% con respecto al mes de septiembre 

los datos obtenidos fueron (Tabla 3), la cobertura promedio tuvo su máximo de 1,67 ± 3,27% a 

los 20m de profundidad, a los 5m la cobertura promedio fue de 0,00±0,00% y a los 10m la 

cobertura promedio fue de 1,08% ±2,95%. 

En relación a las otras especies que habitan en Caleta Yerbas buenas podemos decir que, en el 

mes de mayo (Tabla 4), del Phylum Mollusca la clase más abundante fue Gastropoda 

(Crepipatella sp.), la cual a las tres profundidades obtuvimos una cobertura de alrededor del 

48

44±25%, le siguen del Phylum Equinodermata la clase Echinoidea (Arbacia dufresni, Loxechinus 

albus y Pseudechinus magellanicus) con un 11±9,0% aprox., en las tres profundidades y un tipo 

de alga Rhodophyta con un 2,5±4,0% aprox. en las tres profundidades muestreadas. Esto nos 

indica que en esta zona el Phylum Porifera no es abundante y que las especies dominantes son 

gastropodos (Crepipatella sp), equinoídeos (Loxechinus albus) y asteroidea (Cosmasterias 

lurida). En el mes de septiembre, las especies más abundantes siguen siendo las pertenecientes a 

la Clase Gastropoda que alcanza un 57,7±15,0% a los 5m, 46,4±22,0% a los 10m y a los 20m 

con un 63,3±11,0%, Echinoidea llega a un 12,5±7,0% a los 5m y a un 7,4±8,0% a los 10m, 

disminuyendo bastante a los 20m alcanzando un 1,0±1,0% de cobertura. 

En relación a las especies de esponjas más abundantes, encontramos que en el mes de mayo 

(Tabla 5) Cliona chilensis se encuentra presente en las tres profundidades distintas siendo a 10m 

donde alcanza una mayor cobertura con un 0,4±1,0%, Halicnemia papillosa domina los 5m de 

profundidad con un 0,39±1,9% , Tedania spinata se hace presente con un 0,45±1,4% a los 10m y 

un 0,2±1,0% a los 20m de profundidad, Clionaopsis platei aparece también a 10m con un 

0,24±1,4% de cobertura y a 20m con un 0,24±1,4% de cobertura. En el mes de septiembre no se 

encuentran esponjas a 5m de profundidad, pero Tedania spinata domina los 10m con un 

0,95±2,7%, y a los 20m encontramos Halicnemia papillosa con un 0,73±1,8%, Cliona chilensis 

con 0,3±1,9% y aparece Axinella crinita con un 0,02±0,1% de cobertura. 

49

Tabla 2: Porcentaje de Cobertura media y desviación estándar en cada una de las profundidades 

muestreadas en Caleta Yerbas Buenas, utilizando una matriz de 10x10 puntos. n=40. (Mayo 

2010) 

Mayo 

Profundidad (m) % de Cobertura (Media) Desviación estándar 

Error 

estándar 

5 0,45 1,93 0,37 

10 1,26 2,54 0,40 

20 0,90 2,39 0,38 

Tabla 3: Porcentaje de Cobertura media y desviación estándar en cada una de las profundidades 

muestreadas en Caleta Yerbas Buenas, utilizando una matriz de 10x10 puntos. n=40. (Septiembre 

2010) 

Septiembre 

Profundidad (m) % de Cobertura (Media) Desviación estándar 

Error 

estándar 

5 0,00 0,00 0,00 

10 1,08 2,95 0,47 

20 1,67 3,27 0,52 

50


muestreadas en Caleta Yerbas buenas, utilizando una matriz de 10x10 puntos. Nótese que en la 

tabla se encuentran representadas los cuatro grupos más abundantes encontrados (Mayo y 

Septiembre 2010) n=40. 

Profundidad 

(m) 

% de 

Cobertura 

(Media) 

Desviación 

estándar 

Error 

estándar 

Profundidad 

(m) 

% de 

Cobertura 

(Media) 

Desviación 

estándar 

Error 

estándar 

MAYO 

Porifera 

Porifera 

5 0,45 1,93 0,37 5 0,00 0,00 0,00 

10 1,26 2,54 0,40 10 1,08 2,95 0,47 

20 0,90 2,39 0,38 20 1,67 3,27 0,52 

Echinoidea 

Echinoidea 

5 12,45 13,59 2,62 5 12,52 7,56 1,20 

10 8,25 4,62 0,73 10 7,43 8,17 1,29 

SEPTIEMBRE 

20 11,51 11,44 1,81 20 1,01 1,33 0,21 

Asteroidea 

Asteroidea 

5 2,06 7,89 1,52 5 1,08 4,36 0,69 

10 1,82 5,31 0,84 10 0,98 4,34 0,69 

20 1,44 6,51 1,03 20 0,16 1,00 0,16 

Gastropoda 

Gastropoda 

5 43,73 27,72 5,34 5 57,77 15,58 2,46 

10 43,47 24,54 3,88 10 46,45 22,82 3,61 

20 43,26 25,82 4,08 20 63,31 11,93 1,89 

Rhodophyta 

Rhodophyta 

5 1,93 4,08 0,79 5 1,77 2,90 0,46 

10 3,88 4,45 0,70 10 4,93 4,05 0,64 

20 2,81 4,75 0,75 20 6,11 28,57 4,52 

51



encuentran representadas las cuatro especies de esponjas más abundantes encontradas y también en el 

mes de septiembre se encontró la presencia de Axinella crinita y no de Clionaopsis platei como en el mes 

de mayo. (Mayo y Septiembre 2010) n=40. 

MAYO 

Profundidad 

(m) 

Halicnemia 

papillosa 

% de 

Cobertura 

(Media) 

Desviación 

estándar 

Error 

SEPTIEMBRE 

Profundidad 

(m) 

Halicnemia 

papillosa 

% de 

Cobertura 

(Media) 

Desviación 

estándar 

Error 

5 0,37 1,92 0,37 5 0,00 0,00 0,00 

10 0,00 0,00 0,00 10 0,00 0,00 0,00 

20 0,25 1,58 0,25 20 0,73 1,80 0,28 

Cliona 

chilensis 

Cliona 

chilensis 

5 0,04 0,19 0,04 5 0,00 0,00 0,00 

10 0,35 1,34 0,21 10 0,00 0,00 0,00 

20 0,08 0,35 0,06 20 0,33 1,19 0,19 

Clionaopsis 

platei 

Axinella 

crinita 

5 0,00 0,00 0,00 5 0,00 0,00 0,00 

10 0,24 1,49 0,24 10 0,00 0,00 0,00 

20 0,24 1,49 0,24 20 0,025 0,16 0,03 

Tedania 

spinata 

Tedania 

spinata 

5 0,00 0,00 0,00 5 0,00 0,00 0,00 

10 0,42 1,47 0,23 10 0,95 2,74 0,43 

20 0,16 1,04 0,16 20 0,00 0,00 0,00 

6.3.2) Presencia de esponjas en los videos. 

El análisis de los Videos permitió estimar la presencia de las esponjas marinas en las tres 

profundidades de muestreo. A los 5 m de profundidad (Tabla 6), la presencia de esponjas fue de 

4%, a los 10m de profundidad fue de 24,5% y a los 20m de profundidad la presencia fue de 

48,5%. Estos resultados se obtuvieron de las 200 imágenes escogidas para cada una de las 

52

profundidades estudiadas, se calculó un porcentaje para cada categoría. Se quiso también ocupar 

el programa CPCe 3.6 para el análisis de la cobertura, pero esto no fue posible debido a que la 

calidad de las imágenes obtenidas de los videos no era óptima (Fig. 27). 

Figura 27: Muestra la calidad de la imágenes obtenidas por medio de los videos. a) 5 m de profundidad; 

b) 10m de profundidad y c) 20 m de profundidad. 

Tabla 6: Muestra el porcentaje de presencia y ausencia de un total de 200 imágenes obtenidas por medio 

de los videos 

Profundidad (m) Hay esponja (A) No hay esponja (B) 

Presencia A 

(%) 

Ausencia B 

(%) 

5 8 192 4% 96% 

10 49 151 24,50% 75,50% 

20 97 103 48,50% 51,50% 

53

6.4) Inclinación del substrato. 

En relación a la presencia de esponjas marinas con la inclinación de su substrato, podemos decir 

que Cliona chilensis prefiere los substratos con una inclinación pequeña, todos los individuos 

encontrados estaban en substratos de entre 10º a 30º, Axinela crinita fue encontrada en substratos 

con inclinación de 40º a 45º; Leucosolenia lucasi, Tethya papillosa, Mycale doellojuradoi, 

Clionaopsis platei, Myxilla araucana, Myxilla (ectyomyxilla) chilensis, prefieren substratos con 

una pequeña inclinación todas ellas fueron encontradas en un substrato de 30º, Tedania mucosa y 

Tedania spinata al parecer no son tan selectivas al momento de asentarse porque fueron 

encontradas en substratos de entre 20º a 90º; Haliclona (Reniera) caduca y Haliclona (Reniera) 

porcelana prefieren también substratos con una inclinación entre 10º a 40º; Halicnemomia 

papillosa fue encontrada en substratos de 10º, 20º y 40º; Haliclona (soestella) auletta y la especie 

de la Familia Chondrillidae fueron encontradas en substratos de 10º de inclinación; los 

individuos de la Familia Hymedesmiidae y de la Familia Niphatidae fueron encontradas en 

substratos de 20º de inclinación. 

54

Tabla 7: Especies encontradas, indicando la inclinación de su substrato a la cual se encontraron. 

Especie 

Autor 

Inclinación 

10º 20º 30º 40º 45º 90º 

1. Cliona chilensis (Thiele, 1905) X x x 

2. Axinella crinita (Thiele, 1905) x x 

3. Leucosolenia lucasi (Dendy, 1891) x 

4. Tethya papillosa (Thiele, 1905) x 

5. Mycale doellojuradoi (Burton, 1940) x 

6. Tethia melinka 

(Hajdu, Willenz & Lobo- 

Hajdu sp. nov. 

7. Tedania mucosa (Thiele, 1905) x x x 

8. Tedania spinata (Ridley, 1881) x x x 

9. Clionaopsis platei (Thiele, 1905) x 

10. Myxilla araucana (Hajdu et al, in press) x 

11. Haliclona (Reniera) caduca 

12. Haliclona (Reniera) porcelana 

(Desqueyroux- Faúndez, 

Carvalho & Willenz sp. 

nov.) in press. X x x 

(Desqueyroux- Faùndez, 

Lôbo- Hajdu & Willenz 

sp. nov.) in press. x x 

13. Myxilla (ectyomyxilla) chilensis (Thiele, 1905) x 

14. Halicnemia papillosa (Thiele, 1905) x x x 

15. Haliclona (Soestella) auletta (Thiele, 1905) x 

16. Sycon sp. (Risso, 1826 X 

17. Acarnus sp. (Gray, 1867) x x 

18. Familia Hymedesmiidae (Topsen, 1928) x 

19. Familia Niphatidae (Van Soest, 1980) x 

20. Familia Chondrillidae (Gray, 1872) x 

X 

6.5) Análisis de varianza. 

Para probar si existían diferencias significativas entre los porcentajes de cobertura de las tres 

profundidades muestreadas se realizó una prueba ANOVA para ambas fechas de muestreo. Para 

esto se utilizó los datos obtenidos con los foto-cuadrantes. La prueba ANOVA arrojó lo siguiente; 

55

en el mes de mayo (F= 0,95; p-valor= 0,38) como el valor crítico para F se encontró que era de 

3,08 podemos decir para este mes no existen diferencias significativas entre las coberturas de las 

tres profundidades (Tabla 8), para el mes de septiembre (F= 4,46; p-valor= 0,01) en este caso el 

valor F debía no ser mayor a su valor crítico (3,07) demuestra que para este mes existen 

diferencias significativas entre las coberturas de las tres distintas profundidades (Tabla 9). 

Tabla 8: Análisis de varianza (ANOVA simple), comparando la cobertura en las tres 

profundidades muestreadas. No existen diferencias significativas entre las profundidades (p-valor 

> 0,05). (Mayo) 

ANÁLISIS DE VARIANZA 

(Mayo) 

Origen de las variaciones 

Suma de 

cuadrados 

Grados de 

libertad F P-valor Valor crítico para F 

Entre grupos 10,55 2 0,95 0,38 3,08 

Dentro de los grupos 572,00 104 

Total 582,56 106 

Tabla 9: Análisis de varianza (ANOVA simple), comparando la cobertura en las tres 

profundidades muestreadas. Existen diferencias significativas entre las profundidades (p-valor < 

0,05). (Septiembre) 

ANÁLISIS DE VARIANZA 

(Septiembre) 

Origen de las variaciones 

Suma de 

cuadrados 

Grados de 

libertad F p-valor Valor crítico para F 

Entre grupos 57,64 2,00 4,46 0,01 3,07 

Dentro de los grupos 756,14 117,00 

Total 813,78 119,00 

56

7. DISCUSION 

El estudio de fauna de esponjas (Porifera) en esta área, Caleta Yerbas Buenas (X Región, de Los 

Lagos) constituye el primer trabajo realizado que incluye un inventario de las especies 

encontradas, como estas se distribuyen batimétricamente en tres profundidades (5, 10 y 20m), se 

identificó la riqueza de especies para esta zona gracias a los datos de cobertura obtenidos, en el 

camino de la realización de este estudio se logró la identificación de una especie encontrada del 

género Acarnus que no había sido descrita con anterioridad por Van Soest et al., (1991) para esta 

zona, también se observo el cómo puede variar el asentamiento de los diferentes tipos de esponjas 

en relación a la inclinación y al tipo de substrato. 

En relación al rol que cumplen en el ecosistema marino, las esponjas pueden llegar a formar 

agregaciones en las zonas intermareal y submareal, muchas de las especies de invertebrados que 

habitan estos tipos de agregaciones colonizan una variedad de microhábitats que pueden estar 

formados por algas y animales como las esponjas (Frith, 1976). En estos microhábitats los 

invertebrados pueden encontrar alimento y protección (Duffy & Hay 1991). Así, algunos seres 

vivos depositan sus huevos entre las esponjas, pasando también ahí sus estados larvarios y 

juveniles. Entre las especies recolectadas para este estudio, no observamos que existieran en su 

interior estadios larvarios de otros animales, pero eso no significa que no haya habido, sino que 

simplemente no fue observado en el presente estudio. 

Las esponjas pertenecientes al grupo Demospongiae registran un total de 76 especies distribuídas 

en 43 géneros, 28 familias y 11 órdenes, siendo Poecilosclerida el orden más diverso con 32 

especies a lo largo de la costa de Chile. Demospongiae evidencia un pronunciado gradiente 

latitudinal de biodiversidad, con una escasa representatividad taxonómica en latitudes bajas y 

57

gran riqueza en latitudes altas (Lancelloti & Vásquez 2000). El quiebre de distribución, el cual 

también ocurre al nivel de género y familia, está localizado entre las zonas de Concepción y 

Valdivia lo que corresponde al límite de dos unidades faunísticas, esta zona es conocida como la 

Región Templada Transicional la cual incluye el tradicionalmente reconocido, pero 

artificialmente determinado, quiebre zoogeográfico a la altura de los 41º - 42º S. Al sur de los 42º 

S, la presencia de fiordos y el gran aporte de agua dulce de causes continentales y de lluvias 

producen disminuciones importante de la salinidad en las aguas interiores pero que 

progresivamente se restablece a profundidades > 20 m. Este gradiente vertical de salinidad 

también se encuentra en un sentido transversal de este (aguas interiores) a oeste (costa occidental 

expuesta), pocas veces considerado en los análisis biogeográficos (Lancelloti & Vasquez 2000). 

En al caso de la clase Calcarea se han registrado 26 especies endémicas para la costa de Chile 

(Azevedo et al., 2009). En este estudio de las 20 especies descritas encontramos que 7 pertenecen 

al Orden Poecilosclerida, concordando entonces con los autores antes mencionados que este es el 

Orden más diverso a lo largo de la costa de Chile. Se describen también 2 especies de la Clase 

Calcarea ambas pertenecientes al Orden Leucosolenida. 

Identificación de esponjas encontradas 

Se encontraron 20 especies de esponjas, de ellas 18 pertenecen a la Clase Demospongiae, de estas 

4 son del Orden Hadromerida, 2 del Orden Halichondria, 7 del Orden Poecilosclerida, 4 del 

Orden Haplosclerida y 1 pertenece al Orden Chondrosida. Las otras 2 especies encontradas 

pertenecen a la Clase Calcarea (Leucosolenia lucasi y Sycon sp.), ambas pertenecientes al Orden 

58

Leucosolenida. De las especies encontradas, se logró la identificación por medio de taxonomía de 

17 de ellas y las otras 3 solo se logró llegar a la categoría de Familia. La identificación se logró 

por medio de placas de espículas preparadas en laboratorio y de la observación de fotografías. 

Nuestros resultados fueron comparados con los resultados de Willenz et al., (2009), quienes hasta 

el momento tienen el inventario más actual de esponjas marinas para la zona de fiordos del sur de 

Chile. Los resultados arrojaron que 12 de nuestras especies encontradas estaban también en la 

publicación de Willenz et al., (2009), en el caso de las otras 8 especies estas habían sido descritas 

por otros autores Thiele (1905) y Desqueyroux- Faúndez & Valentine (2002a). Alrededor de 140 

especies se han registrado en toda esta zona, en particular Breitfuss (1898), Thiele (1905), 

Desqueyroux (1972, 1976), Desqueyroux-Faúndez & Moyano (1987) y Desqueyroux-Faúndez & 

Van Soest (1996), Desqueyroux- Faúndez & Valentine (2002a). Uno de los géneros identificados 

en este estudio es Acarnus hasta el momento se conocía que la distribución de este género llegaba 

hasta las costas de Perú y no habían registros de este género para las costas de Chile. Este 

hallazgo, es de gran importancia para una futura investigación, en donde, haciendo un trabajo 

más exhaustivo se podría comparar la especie Acarnus peruanus encontrada en Islas Lobos de 

Afuera, norte de Perú (07ºS 80ºW) (Van Soest et al., 1991) con Acarnus sp. identificada en este 

trabajo y saber si es la misma especie o una distinta. 

Los caracteres tradicionalmente usados para la identificación y clasificación de las esponjas son 

forma, color, consistencia corporal, morfología y tamaño de espículas (Rützler, 1978). El cuerpo 

de las esponjas está provisto de espículas calcáreas, silíceas o fibras orgánicas, o ambas que 

sirven de soporte siendo el esqueleto de estas, las espículas pueden ser monoaxónicas, diaxónicas 

y poliaxónicas. Se clasifican también de acuerdo a su tamaño en megascleras y microscleras, 

59

existiendo una gran variedad de formas, grosor y consistencia, son ellas las que permiten lograr la 

identificación taxonómica de las esponjas, una especie puede tener un tipo de espícula, así como 

otra puede llegar a tener más de 5 tipos distintos de espículas entre megascleras y microscleras. 

Al realizar las placas de espículas para la identificación taxonómica, nosotros logramos 

fotografiar las espículas de cada esponja encontrada, en algunos casos se obtuvieron fotografías 

de hasta 4 tipos de espículas diferentes para una misma especie. 

En las últimas décadas se han incorporado caracteres relacionados con la historia de la vida 

(modo reproductivo), composición química (Van Soest et al., 1991) y similitud genética (enzimas 

o ácidos nucleicos) (Solé-Cava & Thorpe, 1994; Rodrigo et al., 1994). Estos caracteres se han 

venido usando en forma variada en los distintos rangos de la clasificación taxonómica e 

independientemente de su variabilidad y distribución a través de los grupos, generando una 

proliferación de nombres, definiciones y clasificaciones que comienzan a resolverse aplicando 

métodos filogenéticos (Van Soest, 1990). En este momento se hace un esfuerzo global para 

generar el Systema Porifera, un catalogo muy detallado de nombres supraespecíficos válidos y 

una propuesta unificadora de clasificación. 

Si a niveles altos la clasificación de las esponjas es muy ambigua, a niveles inferiores (género, 

especie), la taxonomía es también compleja por varias razones. En un área determinada las 

distintas especies en general presentan formas, colores y caracteres esqueléticos definidos y 

relativamente fáciles de discriminar. Con algo de experiencia, se logran distinguir la mayoría de 

las especies en el campo. El principal problema se encuentra en la asignación del nombre 

correcto con base en la literatura existente. Esta literatura y las colecciones de referencia y de 

material tipo están muy dispersas, y los criterios de descripción son muy variados. Además, hasta 

60

el presente hay una gran cantidad de nombres específicos disponibles con numerosos sinónimos, 

y bajo diversas denominaciones genéricas y familiares, lo que hace muy difícil la asignación del 

nombre válido. Igualmente, la ambigüedad en las definiciones supraespecíficas imposibilita la 

creación de claves jerárquicas de identificación. Solo mediante el estudio de colecciones de 

referencia originales, del material tipo y la aplicación de principios estrictos de genética, se han 

comenzado a aclarar la confusión en la identidad de las especies y su clasificación 

supraespecífica. Por otro lado, gracias a la combinación entre descripciones detallados en la vida 

y en el material fijado, y a la utilización de dibujos esquemáticos y fotografías submarinas, la 

identificación comienza a facilitarse y otros investigadores no especialistas están comenzando a 

conocer las especies más comunes. En este trabajo, en las especies que logramos identificar 

teníamos a dos especies muy parecidas en forma y color, este es el caso de Cliona chilensis y 

Clionaopsis platei, son dos esponjas que pertenecen a la Familia Clionidae y al momento de su 

colección no se logró separar las dos especies, esto solo se logró con la preparación de placas de 

espículas, en donde logramos distinguir claramente los Tilostilos de Cliona chilensis y las 

microscleras espirasteres de Clionaopsis platei, lo que fue clave para su identificación 

taxonómica. Los individuos pertenecientes a la familia Clionidae, desde larva, se asientan sobre 

rocas, conchas o corales, retiran el carbonato de calcio del substrato y lo van introduciendo a su 

cuerpo; una vez alcanzada cierta profundidad, pasa a desarrollar una forma masiva cubriendo el 

sustrato por completo. 

61

Cobertura en las tres distintas profundidades comparando dos métodos (Foto-cuadrantes y 

videos). 

Para hacer las estimaciones de la cobertura a partir de fotografías e imágenes se uso el método de 

conteo de puntos (Carleton & Done, 1995). Esta técnica consiste en distribuir un cierto número 

de puntos sobre una imagen fotográfica submarina y entonces identificar visualmente los 

individuos o substratos que yacen debajo de cada punto. Con el tiempo se implemento el uso de 

software que podía reconocer las formas debajo de los puntos (Kohler & Gill, 2006), sin embargo 

este tipo de muestreo no es útil cuando los individuos a muestrear están sobrepuestos o muy cerca 

uno de otros, o en otro caso cuando la fotografía no está bien iluminada ya que el software es 

incapaz de distinguir las formas. Al comparar video y fotografía vemos que el video consume 

menos tiempo en terreno y nos provee de un mejor registro permanente debido a la grabación 

continua, pero la fotografía a su vez es de mejor resolución para la identificación de las especies 

(Tkachenko 2005a). Basados en estos estudios se consideró que los foto-cuadrantes era el mejor 

método a utilizar en este caso, por ser más preciso y exacto. A pesar de esto se realizó el análisis 

de cobertura con las imágenes extraídas de los videos, pero esto fue imposible ya que como se 

dijo anteriormente la resolución y nitidez de las imágenes fueron demasiado borrosas como para 

lograr una identificación a nivel de especies, de las 200 imágenes extraídas de los videos, en el 

80% de estas no fue posible lograr identificar si existía o no una esponja, la imagen no era nítida 

y muchas veces muy borrosa. Por lo tanto solo pudimos quedarnos con el análisis hecho de forma 

más manual en donde dividimos las imágenes obtenidas en los videos en las 2 categorías 

mencionadas en la metodología (A y B). 

62

Para la estimación de la cobertura de las foto-cuadrantes se utilizó el programa Coral Point Count 

with Excel extentions (CPCe 3.6), el cual fue diseñado específicamente p 

ara calcular en forma eficiente y estadísticamente aceptable la cobertura en un área específica 

(Kohler & Gill, 2006). Otros autores han utilizado un sistema de muestreo que consiste en un 

cuadrante subdividido en diez cuadriculas de 1m 2 , que son dispuestas en forma continua sobre 

cada transepto en los cuales se determina el número de especies e individuos, así como la 

proporción (%) cobertura por especie de poríferos (Nuñez et al., 2010). Pero en nuestro caso 

decidimos utilizar el programa CPCe 3.6 debido a que es mucho más eficiente para la estimación 

de la cobertura. 

Esponjas como fauna acompañante 

Este estudio arrojó que en la localidad de Caleta Yerbas Buenas (X Región, de Los Lagos) las 

esponjas no constituyen un grupo dominante del ambiente, diferente a los que ocurre en la zona 

norte de nuestro país, donde bajo los 16 m de profundidad, son ambientes dominados por 

esponjas y poliquetos tubícolas (Veliz & Vasquez 2000). En nuestra zona estudiada pasarían a 

formar parte de la fauna acompañante de otras especies como son la clase Gastropoda 

(Crepipatella sp.), la cual a las tres profundidades obtuvimos una alta cobertura de 44±25%, le 

siguen el Phylum Echinoidermata (Arbacia dufresni, Loxechinus albus y Pseudechinus 

magellanicus) con 11±9% aprox y un tipo de alga Rhodophyta perteneciente al orden 

Corallinales con 2,5±4% aprox. en las 3 profundidades. Si bien este patrón de cobertura podría 

ser el reflejo de un conocimiento parcial de la taxonomía y de la distribución del grupo la escases 

63

de esponjas sugiere una fauna con distintos orígenes, y atributos opuestos de biodiversidad, con 

un progresivo dominio hacia latitudes altas de especies con mayor afinidad antártica o subantártica 

como ha sido propuesto por Desqueyroux-Faúndez & Van Soest (1996). Estos autores 

señalan que en la zona antártica podemos encontrar una gran riqueza de esponjas marinas siendo 

uno de los grupos que dominan esta zona geográfica. Del mismo modo ocurre en las zonas 

tropicales donde las esponjas son uno de los grupos de animales sésiles más abundantes y 

diversos de los fondos marinos tropicales, siendo un componente importante en los arrecifes 

coralinos, aunque poco estudiado a nivel de especies (Nuñez et al., 2010). Esto nos indica que en 

la zona estudiada el Phylum Porifera no es dominante y que las especies dominantes son 

Moluscos de la Clase Gastropodos (Crepipatella sp), equinoídeos (Arbacia dufresni, Loxechinus 

albus y Pseudechinus magellanicus) y asteroideas (Cosmasterias lurida). 

Inclinación y tipo de substrato 

Es importante conocer la inclinación y tipo de sustrato al cual se puede asentar una esponja. 

Debido a los pocos individuos encontrados en el área no se puede acertar si las especies 

encontradas prefieren asentarse en un tipo de inclinación o sustrato. Solo se mencionamos en 

donde fueron encontrados algunos de los Ordenes encontrados. En el caso del orden 

Halichondria, Poecilosclerida y Haplosclerida los individuos encontrados, estaban desde los 10º a 

los 90º de inclinación del substrato. El Orden Hadromerida se encontró entre 10º a 30º, las 

especies pertenecientes al orden Leucosolenida (Calcareas), estaban a 30º (Leucosolenia lucasi) y 

90º (Sycon sp.), en el caso del Orden Chondrosida esta especie fue encontrada sobre un mitílido 

en un substrato de 10º de inclinación. Por otro lado, puedo decir que la distribución de las 

64

esponjas en el gradiente de profundidad, así como su presencia en un tipo de hábitat varía de una 

especie a otra y según Sara & Vacelet (1973) y Rützler (2004), esta se puede ver afectada por 

diversos factores físicos, entre los cuales la sedimentación y rugosidad del sustrato podrían ser 

determinantes. La complejidad del sustrato es un factor importante en la abundancia de las 

esponjas (Sara & Vacelet 1973), dado que la presencia de relieves o cierta heterogeneidad, parece 

ser favorable para la fijación de las mismas. Factores como la inclinación del substrato, la 

sedimentación, rugosidad, el oleaje y la iluminación podrían ser determinantes, para saber que 

especies van a dominar una zona determinada. A profundidades cercanas a 1m, las esponjas se 

encuentran sometidas a una tensión constante producida por el oleaje y la iluminación, dado que 

a poca profundidad los rayos solares inciden con mayor intensidad. En esta zona suelen subsistir 

especies bien adaptadas, capaces de aprovechar al máximo los recursos disponibles (Díaz et al., 

1985, Alcolado 1999). Esto podría explicar la predominancia de especies con forma de 

crecimiento incrustantes o rastreras, como Cliona chilensis y Tethya papillosa que soportan la 

acción mecánica de la corriente mejor que las formas de crecimiento masivas o tubulares de gran 

tamaño. 

65

8. CONCLUSIONES 

En este estudio de fauna de esponjas (Porifera) en esta área, Caleta Yerbas Buenas (X Región, de 

Los Lagos) constituye el primer trabajo realizado que incluye un inventario de las especies. 

 

Se encontraron 20 especies distintas de esponjas, 18 pertenecen a la Clase Demospongia 

y 2 a la Clase Calcarea. 

Se encontró una especie cuyo género no estaba descrito para esta zona, por otros autores, 

la cual fue Acarnus sp., estudios posteriores pueden ayudar a esclarecer si esta especie 

encontrada es Acarnus peruanus descrita por Van Soest et al., (1991) o una nueva especie 

perteneciente al mismo género. 

En relación a los métodos para estimar cobertura, se demostró que el mejor es por medio 

de foto-cuadrantes, debido que al comparar video y fotografía vemos que el video 

consume menos tiempo en terreno y nos provee de un mejor registro permanente, pero la 

fotografía a su vez es de mejor resolución para la identificación de las especies debido a 

que la calidad de las imágenes es mas óptima que las imágenes obtenidas de los videos. 

 

Los resultados de cobertura, arrojaron que las esponjas alcanzan su mayor porcentaje a 

los 20m de profundidad de 1,67 ± 3,27%, se determinó que la especie Cliona chilensis fue 

la única que se encontró en las 3 profundidades estudiadas. 

Este estudio arrojó que en la localidad de Caleta Yerbas Buenas (X región, de los Lagos) 

las esponjas no constituyen un grupo dominante del ambiente sino que pasarían a formar 

parte de la fauna acompañante de otras especies como Gastropodos (Crepipatella sp.), 

equinoideos (Loxechinus albus) y asteroideas (Cosmasterias lurida). 

66

Se encontró que en el área estudiada existía una gran diversidad de especies, pero una baja 

presencia en términos de cobertura, esto podría deberse a la dominancia del ambiente por 

parte de otras especies como gastropodos, equinoideos y asteroideas. 

Factores como la inclinación del substrato, la sedimentación, rugosidad, el oleaje y la 

iluminación podrían ser determinantes, para saber que especies van a dominar una zona 

determinada. 

67

9. ANEXOS 

Cliona chilensis (Thiele, 1905) 

Anexo 1: Cliona chilensis; a) Tilostilos longitud 270-549 μm, grosor 11-16μm. (Escala 100μm) 


Axinella crinita (Thiele, 1905) 

Anexo 2: Axinella crinita; a) Estilos longitud 340-1.037μm, ancho 6-26μm, b-c) estilos pequeños, d) 

espinas sobre extremo agudo, e) extremo romo longitud d-e) 145-466μm, ancho 6-22μm (escala a-c) 

100μm; d) 2μm; e) 10μm) (Willenz et al 2009). 

68

Leucosolenia lucasi (Dendy, 1891) 

Anexo 3: Leucosolenia lucasi; a) triactinas longitud de uun radio 213 µm, b) diactinas, c)tetractinas 

(escala 100μm) (Willenz et al 2009). 

Tethya papillosa (Thiele, 1905) 

Anexo 4: Tethya papillosa; a, b, c) estilos; d) megásteres oxisferásteres; e, f) micrásteres 

acantostrongilásteres; g) micrásteres acantosferostrongilásteres; h) micrásteres esferoxiásteres. 

(escala: a) 200μm; b-c-e-f-g-h) 5μm; d) 20μm) (Willenz et al 2009). 

69

Mycale doellojuradoi (Burton, 1940) 

Anexo 5: Mycale doellojuradoi; a,b,c) Subtilos; d) Anisoquelas grandes, e)Anisoquelas intermedias; 

f) Anisoquelas pequeñas. (Escala: a) 100μm; b-c-d-f) 10μm) (Willenz et al 2009). 

Tethya melinka (Hajdu, Willenz & Lobo-Hajdu sp. nov.) 

Anexo 6: Tethya melinka; a, b, c) Estilos; d, e) Oxisferásteres; f) Acantostrongilásteres grandes; g) 

Acantostrongilásteres medianos; h, i)Acantostrongilásteres pequeños. (Escala: a) 100μm; b-c) 

50μm; d-e-f-g-h-i) 10μm) (Willenz et al 2009). 

70

Tedania mucosa (Thiele, 1905) 

Anexo 7: Tedania mucosa; a, b, c) Tornotes; d, e, f) Estilos; g, h, i) Oniquetas grandes; j, k, l) 

Oniquetas peuqeñas. (Escala: a-d-g) 50μm; b-c-e-f-j) 10μm; h-i-k-l) 2μm). (Willenz et al 2009). 

Tedania spinata (Ridley, 1881) 

Anexo 8: Tedania spinata; a, b, c) Tornotes; d, e, f) Estilos o subtilostilos; g, h, i) Oniquetas 

grandes; j, k, l) Oniquetas pequeñas. (Escala: a-d) 50μm; b-c-e-f-j) 10μm; g) 20μm; h-i-k-l) 2μm.) 


71

Clionaopsis platei (Thiele, 1905) 

Anexo 9: Clionaopsis platei; a, b) Oxas lisas; c) Tilostilos; d, e) Espirásteres grandes y finos; f, g, h) 

Espirásteres cortos y macizos. (Escala: a-b-c-d-e) 10μm; f-g-h) 5μm) (Willenz et al 2009). 

Myxilla araucana (Hajdu et al., in press) 

Anexo 10: Myxilla araucana; a) Estilos; b, c, d) Subtilotes; e, f, g)Acantostilos; h, i) Isoquelas. 

(Escala: a) 100μm; b) 50μm; c, d) 5μm; e, f) 20μm.) (Willenz et al 2009). 

72

Haliclona (Reniera)caduca (Desqueyroux- Faúndez, Carvalho & 

Willenz sp.nov.) in press 

Anexo 11: Haliclona caduca; a) Oxas. (Escala: 50μm) (Willenz et al 2009). 

Haliclona (Reniera)porcelana 

Hajdu & Willenz sp.nov.) in press 

(Desqueyroux- Faúndez, Lôbo- 

Anexo 12: Haliclona porcelana; a) Oxas. (Escala: 100μm) (Willenz et al 2009). 

73

Anexo 13: Principales tipos de megascleras de Porífera, organizadas según su simetría por número de 

eixos y por número de radios o actinas (Muricy et al. 2007). 

74

Anexo 14: Principales tipos de microscleras de Porifera. A-P, Demospongiae: A, B, oxiesferasteres; C, 

tilasteres; D, sterrasteres; E,esferasteres; F, oxiasteres; G, antasteres; H, espirasteres; I, anfiasteres; J, 

antosigmas; K, sigmaspiras; L, sigmas; M, isoquelas; N, anisoquelas; O, birrotulas; P, toxas. Q-T, 

Hexactinellida: Q, anfidisco; R, hexaster; S, hemioxihexaster; T, hexactina pinular (Muricy et al. 2007). 

75

10. BIBLIOGRAFIA 

Alcolado, P.M. (1999) Comunidades de esponjas de los arrecifes del archipiélago Sabana- 

Camagüey, Cuba. Boletin de Investigaciones Marinas y Costeras. 28: 95-124pp. 

Azevedo F., Hajdu E., Willenz Ph. & Klautau M. (2009) New records of Calcareous sponges 

(Porifera, Calcarea) from the Chilean coast Zootaxa 2072: 1–30pp. 

Bergquist, P. (1978) Sponges. Hutchinson University Lybrary. London 268 pp. 

Bouchet, P. (2006) The magnitude of marine biodiversity. In: Duarte, C. M. (Ed.) (2006). The 

exploration of marine biodiversity: scientific and technological challenges. 31-62pp. 

Boury-Esnault N., De Vos L., Donaly C. & Vacelet J. (1990) Ultrastructure of Choanosome 

and Sponge Classification. New Perspectives in Sponge Biology. Washington, D.C: Smithsonian 

Institution Press. 237-244 pp. 

Bowerbank, J.S. (1845) Description of a new genus of Calcareous Sponge. Annals and 

Magazine of Natural History. 15 (99): 297-300pp. 

Breitfuss, L. (1898) Die Kalkschwämme der Sammlung Plate. (Fauna Chilensis, I). Zoologische 

Jahresbericht. 4: 455–470pp. 

Brusca, R.C. & Brusca, G.J. (2003) Invertebrates. Sinauer Associates, Sunderland, 

Massachusetts, USA. 936 pp. 

Burton, M. (1930) Norwegian Sponges from the Norman Collection. Proceedings of the 

Zoological Society of London. (2): 487-546pp. 

76

Burton, M. (1936) Notes on Sponges from South Africa, with Descriptions of new Species. 

Annals and Magazine of Natural History. (10) 17 (97): 141-147pp. 

Burton, M. (1940) Las Esponjas marinas del Museo Argentino de Ciencias Naturales. (Parte 1). 

Anales del Museo argentino de ciencias naturales ‘Bernardino Rivadavia’. 40 (6): 95-121pp. 

Carleton, J.H. & Done, T. (1995) Quantitative video sampling of coral reef benthos: large-scale 

application. Coral Reefs 14: 35-46pp. 

Carter, H.J. (1875) Notes Introductory to the Study and Classification of the Spongida. Part II. 

Proposed Classification of the Spongida. Annals and Magazine of Natural History (4) 16(92): 

126-145, 177-200pp. 

Carvalho, M., Desqueyroux-Fáundez, R. & Hajdu, E. (2007) Phakellia sur sp. nov. 

(Demospongiae, Halichondrida, Axinellidae) from the lower slope off Cape Horn (South 

America) with a revision of the genus. Marine Biology Research. 3: 109–116pp. 

Costello, M., Bouchet, P., Emblow, C. & Legakis, A. (2006) European marine biodiversity 

inventory and taxonomic resources: state of the art and gaps in knowledge. Marine Ecology 

Progress Series. 316: 257-268pp. 

Díaz, H., Bevillacqua, M. & Bone, D. (1985) Esponjas en mangles del Parque Nacional 

Morrocoy. Editorial Científica Venezolana, Coro, Venezuela. 

Dendy, A. (1891) A monograph of the Victorian sponges, I. The Organisation and classification 

of the Calcarea Homocoela, with Descriptions of the Victorian Species. Transactions of the Royal 

Society of Victoria. 3: 1-81pp. 

77

Dendy, A. (1922) Report on the Sigmatotetraxonida collected by H.M.S.‘Sealark’ in the Indian 

Ocean. In: Reports of the Percy Sladen Trust Expedition to the Indian Ocean in 1905, Volume 7. 

Transactions of the Linnean Society of London (2), 18(1): 1-164pp. 

Desqueyroux-Faúndez, R. (1972) Demospongiae (Porifera) de la costa de Chile. Gayana. 20: 1- 

71pp. 

Desqueyroux-Faúndez, R. (1976) Démosponges signalées pour la région des canaux du Chili = 

Demospongiae recorded from "region de los Canales de chile" Cah. Biol. Mar. 17(1): 93-100pp. 

Desqueyroux-Faúndez, R. & Moyano, H. (1987) Zoogeografía de demospongias chilenas. 

Boletín de la Sociedad de Biología de Concepción 58: 39-66pp. 

Desqueyroux-Faúndez, R. (1990) Sponges (Demospongiae) from Easter Island (Isla de Pascua) 

[South Pacific Ocean]. Revue Suisse de Zoologie. 97(2): 373-410pp. 

Desqueyroux-Faúndez, R. & Van Soest, R.W.M. (1996) A review of Iophonidae, Myxillidae 

and Tedaniidae occurring in the South East Pacific (Porifera: Poecilosclerida). Revue suisse de 

Zoologie 103(1): 3-79pp. 

Desqueyroux-Faúndez, R. & Valentine, C. (2002a) Family Callyspongiidae de Laubenfels, 

1936. In: Hooper, J. N. A. & Van Soest, R. W. M. (ed.) Systema Porifera. A guide to the 

classification of sponges. 835-851 pp. 

Díaz, H., M. Bevillacqua & Bone D. (1985) Esponjas en mangles del Parque Nacional 

Morrocoy. Editorial Científica Venezolana, Coro, Venezuela. 

78

Di Castri, F. & Hajek, E.R. (1976) Bioclimatología de Chile. Editorial Universidad Católica de 

Chile. Santiago, Chile. 163 pp. 

Dickinson, M.G. (1945) Sponges of Golf of California. Allan Hancock Pacific Expeditions. 11: 

1-252pp. 

Duffy, J. & Hay, M.E. (1991) Food and shelter as determinants of food choice by an 

herbivorous amphipod. Ecology 72: 1286-1298pp. 

Försterra, G., Beuck, L., Häussermann, V. & Freiwald, A. (2005) Shallow water 

Desmophylum dianthus (Scleractinia) from Chile: characteristics of the biocenoses, the 

bioeroding community, heterotrophic interactions and (paleo) – bathymetrical implications. In: 

Freiwald, A. & Roberts, J.M. (Eds.) Cold-water Corals and Ecosystems. Springer- Verlag. Berlin, 

Heidelberg. 937–977 pp. 

Frith, D. (1976) Animals associated with sponges at North Hayling Hampshire. Zoological 

Journal of the Linnean Society 58: 353-362pp. 

Gray, J.E. (1867) Notes on the Arrangement of Sponges, with the Descriptions of some New 

Genera. Proceedings of the Zoological Society of London. (2): 492-558pp. 

Gray, J.E. (1872) Notes on the Classification of the Sponges. Annals and Magazine of Natural 

History (4) 9(54): 442-461pp. 

Groombridg, E.B. & Jenkins, M.D. (2002) World atlas of Biodiversity: Earth’s living resources 

in the 21st Century. University of California Press, Berkeley, California. 

79

Haeckel, E. (1870) Prodromus eines Systems der Kalkschwämme. Jenaische Zeitschrift für 

Medicin und Naturwissenschaft. 5: 236-254pp. 

Haeckel, E. (1872) Die Kalkschwämme. Eine Monographie in zwei Bänden Text und einem 

Atlas mit 60 Tafeln Abbildungen. (G. Reimer: Berlin): (1: 1-484) 2: 1-418 (3: pls 1-60). 

Hajdu, E., Desqueyroux-Faúndez, R. & Willenz, Ph. (2006) Clathria (Cornulotrocha) 

rosetafiordica sp. nov. from a South-east Pacific fjord (Chilean Patagonia) Microcionidae: 

Poecilosclerida: Demospongiae: Porifera. Journal of the Marine Biological Association of the 

United Kingdom. 86: 957–961pp. 

Hartman, W.D. (1958) Natural History of the Marine Sponges of Southern New England. 

Bulletin of the Peabody Museum of Natural History. 12: 1-155pp. 

Hickman, C., Roberts, L.S. & Larson, A. (2006) Principios Integrales de Zoología. 13a ed., 

McGraw-Hill Interamericana. España. 1-867pp. 

Hooper, J. (2000) ‘Sponguide’. Guide to sponge collection and identification. Queensland 

Museum, Australia. 1-129 pp. 

Jenkin, C.F. (1908) Porifera. III. Calcarea. National Antarctic Expedition, 1901-1904 Natural 

History 4, Zoology: 1-49pp. 

Kohler, K.E. & Gill, S.M. (2006) Coral Point Count with Excel extensions (CPCe): A Visual 

Basic program for the determination of coral and substrate coverage using random point count 

methodology. Computers and Geosciences. 32(9): 1259-1269pp. 

80

Lancellotti, D. & Vasquez, J.A. (2000) Zoogeografía de macroinvertebrados bentónicos de la 

costa de Chile: contribución para la conservación marina. Revista Chilena de Historia Natural 73: 

99-129pp. 

Lendenfeld, R.V. (1885) A Monograph of the Australian Sponges (Continued). Part III. 

Preliminary description and classification of the Australian Calcispongiae. Proceedings of the 

Linnean Society of New South Wales. 9: 1083-1150, 59-67pp. 

Lundbeck, W. (1905) Porifera. (Part II.) Desmacidonidae (pars.). In: The Danish Ingolf- 

Expedition. 6(2): 1-219 pp. 

Matthew, R. L., Castilla, J. C., Fernandez, M., Clarke, M., González, C., Hermosilla, C., 

Prado, L., Rozbaczylo, N. & Valdovinos, C. (2008) Free-living benthic marine invertebrates in 

Chile. Revista. Chilena de historia. natural, vol.81 (1) 51-67pp. 

Minchin, E.A. (1900) Chapter III. Sponges. In: Lankester, E.R.(Ed.), A Treatise on Zoology. 

Part II. The Porifera and Coelenterata. 2 (Adam & Charles Black: London). 1-178 pp. 

Muricy, G., Hajdu E., Oliveira, M.V., Heim, A.S., Costa, R.N., Lopes, D.A., Melão, M., 

Rodriguez, P.R.D., Silvano, R., Monteiro, L. & Santos, C.P. (2007) Filo Porifera. In: Atlas de 

Invertebrados Marinhos da região Central da Zona Econômica Exclusiva brasileira. Parte 1(H.P. 

Lavrado & M.S. Viana). Série Livros 25. Museu Nacional. Rio de janeiro, p.25-57 

Nuñez, M., Rodriguez, J. & Cristina, M. (2010) Distribución de esponjas (Porifera) a lo largo 

de un gradiente de profundidad en un arrecife coralino, Parque Nacional San Esteban, Carabobo, 

Venezuela. Revista de biología tropical, vol.58, suppl.3, 175-187pp. 

81

Orbingny, D. (1851) (Porifera, Hadromerida): proposed emendment of spelling to Clionaidae to 

remove homonymy with Clionidae Rafinesque, 1815 (Mollusca, Pteropoda). Bulletin of 

Zoological Nomenclature. 63: 51-53pp. 

Pansini, M. & Sará, M. (1999) Taxonomical and biogeographical notes on the sponges of the 

Straits of Magellan. Scientia Marina 63: 203-208pp. 

Ridley, S.O. (1881) XI. Spongida. Horny and Siliceous Sponges of Magellan Straits, S.W. Chili, 

and Atlantic off S.W. Brazil. In: Gunther, A. (Ed.), Account of the Zoological Collections made 

during the Survey of H.M.S. ‘Alert’ in the Straits of Magellan and on the Coast of Patagonia. 

107-137, 140-141pp. 

Ridley, S.O. & Dendy, A. (1886) Preliminary Report on the Monaxonida collected by H.M.S. 

‘Challenger’. Annals and Magazine of Natural History. (5) 18: 325-351, 470-493pp. 

Risso, A. (1826) Histoire naturelle des principales productions de l'Europe méridionale et 

particulièrement de celles des environs de Nice et des Alpes Maritimes. Tome quatrième. – pl. 

(1-12). Paris. (Levrault). 1-439 pp. 

Rodrigo, A.G., Bergquist, P.R., Bergquist, P.L. & Reevs, R.A. (1994) Are sponges animals? 

An investigation into the varagies of phylogenetic inference. 47-54pp. In: Soest RWM van, 

ThMG van Kempen & JC Braekman (eds). Sponges in time and space. Ed. AA Balkema, 

Rotterdam. 

82

Rützler, K. (1978) Sponges in coral reefs In D. Stoddard & R. Johannes (eds.). Coral Reefs: 

Research Methods. Monographs on Oceanographic Methodology 5, 299-313pp UNESCO, Paris, 

Francia. 

Rützler, K. (2004) Sponges on coral reefs: A community shaped by competitive cooperation. 

Bolletin dei Musei e degli Istituti Bioligici dell'Universita di Genova 68: 85-148pp. 

Sara, M. & Vacelet, M. (1973) Ecologie des Demosponges, 462-576pp. In : Grassé (ed.), Traite 

de Zoologie. Anatomie, Systematique, Biologie. Masson & Cie., Paris, Francia. 

Sara, M. (1978) Demospongie di acque superficiali della Terra del Fuoco (Spedizioni AMF 

Mares-GRSTS e SAI). Bolletin dei Musei e degli Istituti Bioligici dell'Universita di Genova. 46: 

7-117pp. 

Schories, D. & Niedzwiedz G. (2011) Precision, accuracy and application of diver towed 

underwater GPS receivers. Environmental Monitoring and Assessment. Mai 2011, ISSN 1573- 

2959pp. 

Schmidt, O. (1868) Die Spongien der Küste von Algier. Mit Nachträgen zu den Spongien des 

Adriatischen Meeres (Drittes Supplement). (Wilhelm Engelmann: Leipzig), pls. I-V, 1-44 pp. 

Sielfeld, W. (2002) Guias de Identificación y Biodiversidad Fauna Chilena. Apuntes de 

Zoología. Universidad Arturo Prat, Iquique, Chile. 1-11pp. 

Solé-Cava, A. & Thorpe, J.P. (1994) Evolutionary genetics of marine sponges. 55-63pp In: 

Soest RWM van, ThMG van Kempen y JC Braekman (eds). Sponges y time and space. Ed. AA 

Balkema, Rotterdam. 

83

Thiele, J. (1905) Die Kiesel und Hornschwämme der Sammlung Plate. Zoologische Jahrbücher, 

Supplementun. 6, 407–496pp. 

Tkachenko, K.S. (2005a) An evaluation of the analysis system of video transects used to sample 

subtidal epibiota. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology 318: 1-9pp. 

Tkachenko, K.S. (2005b) Application of video- and photomethods in hydrobiological research. 

Russian Journal of Marine Biology 31 (2): 128-133pp. 

Topsent, E. (1894) Application de la taxonomie actuelle à une collection de spongiaires du Banc 

de Campêche et de la Guadeloupe décrite précédemment. Mémoires de la Société Zoologique de 

France. 7: 27-36pp. 

Topsent, E. (1913) Spongiaires provenant des campagnes scientifiques de la ‘Princesse Alice’ 

dans les Mers du Nord (1898-1899 - 1906-1907). Résultats des campagnes scientifiques 

accomplies par le Prince Albert I.Monaco 45: 1-67pp, pls I-V. 

Topsent, E. (1928) Spongiaires de l’Atlantique et de la Méditerranée provenant des croisières du 

Prince Albert ler de Monaco. Résultats des campagnes scientifiques accomplies par le Prince 

Albert I. Monaco 74:1-376pp, pls I-XI. 

Van Soest, R.W.M. (1980) Marine sponges from Curaçao and other Caribbean localities. Part II. 

Haplosclerida. In: Hummelinck, P.W. & Van der Steen, L.J. (Eds), Uitgaven van de 

Natuurwetenschappelijke Studiekring voor Suriname en de Nederlandse Antillen. No. 104. 

Studies on the Fauna of Curaçao and other Caribbean Islands. 62 (191): 1–173pp. 

84

Van Soest, R.W.M. (1990) Monanchora stocki n. sp. (Porifera, Poecilosclerida) from the Mid- 

Atlantic Islands Bijdr. Dierkd. 60(3-4): 249-255pp. 

Van Soest, R.W.M., Hooper, J.N.A. & Hiemstra, F. (1991) Taxonomy, phylogeny and 

biogeography of the marine sponge genus Acarnus (Porifera: Poecilosclerida). Beaufortia 42(3): 

49-88pp. 

Veliz, D. & Vásquez, J. (2000) La Familia Trochidae (Mollusca: Gastropoda) en el norte de 

Chile: consideraciones ecológicas y taxonómicas. Revista. Chilena de historia natural, vol.73, 

n.4, 757-76pp 

Wapstra, M. & Van Soest, R.W.M. (1987) Sexual reproducción, larval morphology and 

behaviour in demosponges from the southwest of the Netherlands. In: Taxonomy of Porifera. 

(Eds. Vacelet, J. & Boury-Esnault, N). Springer, Berlin, Heidelberg, New York. 281-307 pp. 

Willenz, P., Avezedo, F., Carvlaho, M. de S., Desqueyroux-Faundez, R., Hajdu, E., 

Klautau, M. & Lobo-Hajdu, G. (2009) Porifera - Sponges. In: Marine Benthic Fauna of 

Chilean Patagonia, edited by V. Häussermann and G. Försterra, Nature in Focus, Chile, 94- 

170pp. 

85

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