ICIDCA. Sobre los Derivados de la Caña de
Azúcar
ISSN: 0138-6204
revista@icidca.edu.cu
Instituto Cubano de Investigaciones de los
Derivados de la Caña de Azúcar
Cuba
Pérez, Heidy; Sánchez, Vicente L.
Propuesta de diseño de monitoreo ambiental microbiológico para diagnóstico de niveles de
contaminación en áreas de procesamiento aséptico
ICIDCA. Sobre los Derivados de la Caña de Azúcar, vol. 44, núm. 3, septiembre-diciembre, 2010, pp.
7-14
Instituto Cubano de Investigaciones de los Derivados de la Caña de Azúcar
Ciudad de La Habana, Cuba
Disponible en: http://www.redalyc.org/articulo.oa?id=223120684002
Cómo citar el artículo
Número completo
Más información del artículo
Página de la revista en redalyc.org
Sistema de Información Científica
Red de Revistas Científicas de América Latina, el Caribe, España y Portugal
Proyecto académico sin fines de lucro, desarrollado bajo la iniciativa de acceso abierto
Heidy Pérez1 y Vicente L. Sánchez2
1. Instituto Cubano de Investigaciones de los Derivados de la Caña de Azúcar
Vía Blanca 804 y Carretera Central, San Miguel del Padrón, La Habana, Cuba
heidy.perez@icidca.edu.cu
2. Centro de Ingeniería Genética y Biotecnología (CIGB)
Ave. 31 entre 158 y 190, Cubanacán, La Habana 10600, Cuba
RESUMEN
El monitoreo ambiental está diseñado para demostrar el control de partículas viables y
no viables en un área crítica, en este caso solo se hace referencia a las viables. Dentro
de estas áreas se incluyen el flujo laminar, los laboratorios y otras áreas limpias. El ensayo de partículas viables se realiza para bacterias, levaduras y hongos. Con el objetivo de
mantener las áreas seguras y en las condiciones requeridas, es preciso chequear el
ambiente de las mismas mediante el monitoreo de las superficies, del aire y del personal. El método empleado para ejecutar el muestreo de superficie es mediante el uso de
placas de contacto tipo Rodac. Para el monitoreo del aire se utiliza el método pasivo o
por sedimentación y en el personal se utiliza el método de placa de contacto. Las directivas internacionales existentes, avaladas por organismos y entidades reguladoras, establecen los niveles de acción microbiológica para cada condición de muestreo las cuales
dependen también del tipo de área aséptica o limpia que se desee monitorear. En este
sentido, se propone un diseño para ejecutar los diferentes tipos de muestreo en el departamento de microbiología, específicamente en las cabinas de flujo laminar, cuarto de
siembra y cámara fría.
Palabras clave: monitoreo ambiental, control microbiológico, calidad ambiental, áreas
asépticas.
ABSTRACT
Environmental monitoring is intended to show the control of viable and non viable particles in critical areas. In this case only viable ones are referred. Among these areas lami-
ICIDCA 44 (3) 2010
7
nar flows, laboratories and other clean areas. The assay for viable particles is carried out
for bacteria, yeast and fungi. Aiming to keep the areas safe and in proper conditions, it is
necessary to verify the whole environment through the monitoring of surfaces, air and
personnel. The applied method to carry out surface sampling is through the use of contact Rodac-type plates. For air monitoring the passive or sedimentation method is used
and for personnel contact plate methods is applied. International standards are supported by regulatory organisms and entities that set up the microbiological action levels for
each sampling purpose (air, surface and personnel), which also depend on the kind of
aseptic or clean area that has to be monitored. In such a sense, a design is proposed for
different sampling types in microbiology department, especially in laminar flow cabinets,
inoculation rooms and cold chamber.
Key words: environmental monitoring, microbiology control, environmental quality,
aseptic areas.
INTRODUCCIÓN
En el mundo actual donde el interés de
los laboratorios de las diferentes áreas de la
microbiología es mantener controladas
todas las variables que intervienen en sus
procesos, tiene particular importancia el
monitoreo
microbiológico
ambiental
(MMA) como una herramienta útil para el
control de los laboratorios y el monitoreo de
las operaciones que se realizan durante un
ensayo. Adicionalmente, por requerimientos de los sistemas de calidad y para lograr
el cumplimiento de los requisitos derivados
de las buenas prácticas de laboratorio; el
monitoreo ambiental microbiológico está
vinculado al aseguramiento de la calidad
mediante el cual se obtienen evidencias
documentadas para demostrar que un proceso conduce a resultados de calidad dentro
de las especificaciones predeterminadas.
Existe una estrecha relación entre la
calidad y el monitoreo ambiental debido a
que la calidad conlleva al control, a la mejora de los resultados de un ensayo, de un
producto o de un proceso y el monitoreo
ambiental controla el ambiente de las áreas
de trabajo para asegurar la calidad.
En tal sentido, el diseño de un monitoreo ambiental microbiológico se lleva a cabo
principalmente para conocer bajo qué condiciones microbiológicas se realizan determinadas operaciones que necesitan ser controladas, así como obtener información
sobre las condiciones microbiológicas de las
áreas y tomar acciones que permitan mantener dichas áreas bajo un estricto control
8
sobre la calidad ambiental. De esta manera,
facilita realizar actividades de procesamiento aséptico con las máximas garantías de
seguridad.
El monitoreo microbiológico es un procedimiento que nos permite determinar el
contenido microbiano de áreas, superficies,
personal, equipo y otros. Un aspecto a considerar, es que el monitoreo ambiental no
sólo se requiere para la elaboración de productos estériles, sino también para los productos no estériles.
Mantener un control microbiológico
ambiental es indispensable para asegurar la
calidad de los productos elaborados y es un
índice del estado higiénico del ambiente
que rodea a las instalaciones. Se aplica para
locales cerrados y limpios donde el número
y variedad de microorganismos desarrollados deben ser bajos y pocos. Es importante
tener en cuenta, que las estrategias de monitoreo se establezcan de acuerdo al área o
superficie a muestrear.
El cumplimiento de directivas tanto
nacionales como internacionales existentes
se encuentra en manos de un grupo de
organismos y entidades regulatorias tales
como: el Centro Nacional de Seguridad
Biológica (CSB), el Centro para el Control
Estatal de la Calidad de los Medicamentos
(CECMED), la Organización Internacional
de Estandarización (ISO), la Organización
Mundial de la Salud (OMS), la
Administración de Alimentos y Drogas
(FDA),
la
Agencia
Europea
de
Medicamentos (EMEA), entre otras. Estas
directivas establecen los niveles de acción
ICIDCA 44 (3) 2010
microbiológica para cada condición de
muestreo del aire, la superficie y el personal. Esto depende del tipo de área a monitorear sea aséptica o limpia, así como los controles necesarios a realizar bajo condiciones
de estado en reposo o en operación.
Sobre la base de este conocimiento, el trabajo cumple el objetivo de proponer un diseño para realizar el monitoreo ambiental
microbiológico en áreas de procesamiento
aséptico del departamento de microbiología
del Instituto Cubano de Investigaciones de los
Derivados de la Caña de Azúcar (ICIDCA).
Figura 1. Ejemplo de área aséptica.
Definición de tipos de áreas
Es imprescindible conocer las características de cada área donde se realicen trabajos
de monitoreo, control y evaluación de un
ensayo, proceso o producto, así como las
condiciones en las que se requieren manipular los mismos para lograr una adecuada
calidad. Las áreas que se utilizan para estos
fines se relacionan a continuación:
Área limpia: Área que cuenta con un control definido del ambiente respecto a la
contaminación microbiana o por partículas, con instalaciones construidas y utilizadas de tal manera que se reduzca la
introducción, generación y retención de
contaminantes dentro del área (1).
Cuarto limpio: Diseñado, mantenido y controlado para prevenir contaminación
microbiana o por partículas de los productos.
Área aséptica (figura 1): Área limpia, diseñada y construida para minimizar la conICIDCA 44 (3) 2010
taminación por partículas viables y no
viables y mantenerla dentro de límites
preestablecidos (2).
Área crítica: Área limpia donde el producto,
envases primarios y cierres estériles se
exponen a condiciones ambientales
diseñadas para preservar la esterilidad
(2).
En dichas áreas de trabajo debe asegurarse que las condiciones ambientales, bajo
las cuales se realizan los ensayos microbiológicos, no invaliden los resultados del
ensayo. Otros elementos importantes, son la
limpieza, desinfección e higiene de las áreas
para eliminar la posibilidad de contaminaciones en todas las etapas del ensayo, proceso o producto.
Es por esto, que uno de los factores a
considerar durante la elaboración de un
producto es la contaminación proveniente
del ambiente donde se está preparando, ya
sea producción en gran escala, como se
hace en los laboratorios e industrias, o en
pequeña escala como ocurre en la oficina de
farmacia. Esta contaminación se debe a las
partículas presentes en el aire, las cuales
pueden provenir del suministro del mismo,
del personal y las desprendidas por los
equipos y demás superficies del área de trabajo.
Un equipamiento imprescindible dentro
de estás áreas lo constituyen las campanas
de flujo laminar, las cuales pueden ser verticales u horizontales y deben ser colocadas
en ambientes controlados sin corrientes de
aire que pueden perturbar el flujo unidireccional. En el ICIDCA, se cuenta con una
campana de flujo laminar vertical cuyo filtro HEPA, está colocado en la parte superior
de la campana y el flujo de aire se desplaza
hacia la parte inferior de la misma donde
hay rejillas que permiten su salida. Dicho
dispositivo tiene el inconveniente de proteger al producto, pero no al personal ni al
medio ambiente.
Monitoreo microbiológico ambiental
El monitoreo ambiental en un laboratorio de microbiología debe evaluar tanto la
calidad microbiológica del aire (3) como la a
de la superficie (4). Es por esta razón, que
los niveles de microorganismos en aire y
superficies se establecen en base al riesgo
9
de contaminación del producto o proceso.
Para esto es necesario determinar límites de
acción, los cuales son definidos como los
niveles que al ser excedidos, indican que el
proceso se ha desviado de sus condiciones
normales de operación. El rebasarlo implica
tomar una acción correctiva, para que el
proceso regrese a sus condiciones normales
de operación.
Existen suficientes indicios de que en
áreas de oficinas, laboratorios, almacenaje y
servicios generales coexisten sustancias
capaces de alterar sus propiedades físicoquímicas y proveer las condiciones necesarias para el desarrollo y crecimiento de
microorganismos que alteran las propiedades biológicas del aire, lo cual puede originar efectos nocivos sobre la salud de las personas y sobre los materiales, dependiendo
de la concentración y permanencia de estas
sustancias en el ambiente (5-8).
La cuantificación del riesgo potencial en
ambientes de trabajo se basa en la determinación de la exposición y su comparación
con los límites establecidos en las normativas vigentes. Para llevar a cabo el monitoreo
ambiental, deben establecerse límites de
alerta y de acción apropiados. Estos límites
deben determinarse teniendo en consideración que el objetivo principal es detectar condiciones que se alejen del comportamiento
habitual del ambiente productivo (9).
Basado en lo anterior, es útil determinar
los valores de alerta y de acción a partir del
comportamiento histórico, tanto para áreas
donde se elaboran productos no estériles,
donde las normas no establecen límites de
referencia, como para aquellas utilizadas en
la elaboración de productos estériles, en las
cuales los límites establecidos pueden
resultar menores a los recomendados por
las disposiciones vigentes, permitiendo un
mayor control microbiológico del ambiente.
Estrategia del monitoreo microbiológico
ambiental
Dentro de los parámetros microbiológicos monitoreados por excelencia se encuentran el aire, las superficies y el personal. En
el caso del aire, se realizan conteos de partículas viables (microbiología) mientras que
para la superficie y el personal se determina
la contaminación microbiana en el equipa10
miento, las superficies de trabajo, paredes y
pisos.
El programa de monitoreo ambiental es
más amplio que el monitoreo microbiológico ambiental, que se trata en este trabajo.
Dicho programa incluye monitoreo de rutina para partículas en el aire tales como viables y no viables. En ambientes industriales
las partículas viables son generalmente las
de más preocupación en el producto estéril,
sin embargo, las partículas no viables también deben supervisarse como un indicador
fiable de los sistemas de control medio
ambientales (10, 11).
Monitoreo del aire
La evaluación de la calidad microbiológica del aire puede realizarse mediante
métodos activos y pasivos.
Los métodos activos o volumétricos utilizan dispositivos para tomar un volumen definido de aire y luego determinar las unidades
formadores de colonias (UFC) presentes en
él. Un ejemplo de estos dispositivos es el centrífugo de Reuter, el cual tiene una turbina
que aspira el aire y hace que las partículas
impacten sobre una tira de agar colocada en
la pared interna de la turbina. Es un dispositivo portátil y funciona con baterías (12).
Un sinnúmero de investigaciones se han
desarrollado en el campo del muestreo
microbiológico del aire desde el punto de
vista volumétrico, han permitido llegar a
importantes conclusiones (13) y a continuación se resumen las siguientes:
1. La muestra mínima en superficies es de
100-125 cm2, a causa de la distribución
no homogénea de los microorganismos.
En el aire el número de muestreos debe
ser la raíz cuadrada del volumen de la
sala y el muestreo mínimo y máximo por
placa debe ser 200 L.
2. No existe correlación entre los recuentos
de superficies y los del aire que las rodea
por la aparición de un factor que distorsiona contundentemente los resultados:
la carga microbiana de las personas. Por
ello, deben realizarse muestreos de aire y
también de superficies.
3. A menor caudal de muestreo, menor
velocidad de impacto, menor efecto rebote y mayor recuperación de microorganismos.
Tradicionalmente, los muestreos del
aeroplancton se venían realizando medianICIDCA 44 (3) 2010
te el método llamado de sedimentación
pasiva, el cual es cualitativo, a lo sumo
semicuantitativo y sus resultados se dan en
UFC por placa (14).
El otro método más empleado en el
monitoreo del aire es el pasivo o por sedimentación en placas de Petri. En este método los microorganismos viables presentes
en el aire, son llevados a la superficie del
medio sólido por las corrientes de aire presentes en el área. Es un método fácil de realizar y económico que nos permite obtener
información sobre los microorganismos
capaces de sedimentar en el aire (15).
El aire es monitoreado mediante un
método microbiológico pasivo aplicando la
técnica de placa expuesta donde ocurre la
sedimentación de partículas del aire. Dicha
técnica consiste en exponer al ambiente la
placa de Petri que contiene el medio Agar
Triptona Soya (ATS) en un período de 1 a 4
horas. Pasado este tiempo, se incuba la
placa de 3 a 5 días a las temperaturas entre
30 y 35 ºC, cuyo resultado indica el conteo
de colonias expresado como unidades formadoras de colonias (UFC) por placa por
tiempo de exposición. La figura 2 muestra el
procedimiento para el método de placa
Figura 2. Técnica de placa expuesta empleada
en el monitoreo del aire.
ICIDCA 44 (3) 2010
expuesta para el monitoreo de contaminación aérea.
Las técnicas actuales para el monitoreo
de partículas viables en el aire están limitadas (16) por:
a)- El equipamiento disponible.
b)- El tiempo necesario para demostrar la
presencia de microorganismos en la
muestra del aire tomada.
c)- La incapacidad para re-probar el ambiente de un modo oportuno para la garantía
de los resultados.
d)- Las dificultades en el monitoreo continuo del ambiente debido a las consideraciones tales como secar fuera de los
medios de cultivos.
Monitoreo de superficies
En la evaluación de la calidad microbiológica de las superficies se emplean el método de hisopado y el de placa de contacto
(Rodac) (15).
El método de hisopado utiliza un hisopo
humedecido, el cual se frota en tres direcciones sobre un área predeterminada, luego
se coloca en un diluente para liberar los
microorganismos presentes y de allí se toma
una alícuota y se siembra en un medio sólido. Este método se utiliza para superficies
irregulares o de difícil acceso.
Por otra parte, el método de la placa de
contacto (Rodac) cuenta con placas llena de
un medio nutritivo sólido con una superficie
convexa que se presionan sobre la superficie
plana a evaluar. Es utilizado para superficies
planas. Algunas de las desventajas de este
método es que no se utilizan para superficies
irregulares, si el medio es humedecido
puede ocurrir la concurrencia de microorganismos y el residuo del medio puede ser eliminado del sitio de la muestra (16).
Las superficies son monitoreadas por
métodos microbiológicos a través de la técnica por placa de contacto tipo Rodac. El
desarrollo de esta técnica comienza a partir
de placas Rodac con medio Agar ATS y se
hace contactar la superficie con el agar para
luego incubar en las condiciones indicadas
en la figura 3 y los resultados se expresan
como UFC por placa.
Supervisión del personal
El personal es el principal componente
en las actividades de un área y la principal
fuente de contaminación. Por lo tanto, el
11
Propuesta de diseño de un monitoreo ambiental microbiológico en
áreas de procesamiento aséptico
del departamento de microbiología
del ICIDCA
Figura 3. Técnica por placa de contacto tipo Rodac
para el monitoreo de superficies.
Figura 4. Técnica por placa de contacto tipo Rodac para
el monitoreo del personal.
monitoreo del personal constituye un buen
indicador de la disciplina tecnológica del
mismo y es recomendable realizarlo al final
de las operaciones críticas y del proceso.
Dicho personal debe estar adecuadamente entrenado, capacitado y documentado acerca de todos los conocimientos necesarios para trabajar en áreas asépticas donde
se aplican técnicas microbiológicas, de buenas prácticas de laboratorio, el uso de los
medios de protección, así como la higiene y
hábitos personales.
El método microbiológico empleado para
el personal es de acuerdo a la técnica de
placa de contacto (Rodac) por impresión de
manos enguantadas. Dicha técnica tiene
como principio los pasos que se muestran en
la figura 4, y consiste en la impresión de los
cinco dedos de cada mano enguantada. Los
resultados se expresan en UFC por guantes.
12
Método pasivo o por sedimentación
Muestreo del aire por la técnica
de placa expuesta.
Toma de muestra: Se exponen placas de Petri (o sea se abren las placas) en el área de trabajo y durante
el proceso de siembra.
Áreas a monitorear o zonas de toma
de la muestra: Cabinas de flujo laminar, cuarto de siembra y cámara fría.
Medio de cultivo: Agar Triptona
Soya (ATS).
Tiempo de exposición: Durante 2
horas.
Tiempo y temperatura de incubación: Luego de la exposición al aire,
las placas se cierran e incuban
durante 5 días a 30 ºC.
Frecuencia de realización de los
controles: Estado de reposo semanal
y en estado de operación, el tiempo
que dure la misma.
Criterio de conformidad: Bajo flujo
laminar se establece que para esta
técnica sea < 3 UFC/placa/4h, según
lo establecido en el anexo 4 de la
regulación No. 16-2000 (2).
Muestreo de superficies
Muestreo de superficies por placa de
contacto tipo Rodac.
Toma de muestra: Destapar las placas y
poner en contacto el agar con el área de
la superficie a muestrear en el estado de
reposo y al finalizar la operación.
Superficies a monitorear: Superficies
interiores de las cabinas de flujo laminar,
piso y paredes del cuarto de siembra y de
la cámara fría.
Medio de cultivo: Agar Triptona Soya.
Tiempo y temperatura de incubación:
Luego del muestreo de las superficies, las
placas se cierran e incuban durante 5
días a 30 ºC.
Frecuencia de realización de los controles: Estado de reposo semanal y en estado de operación, al finalizar la misma.
Criterio de conformidad: Bajo flujo laminar se establece que para esta técnica sea
ICIDCA 44 (3) 2010
< 3 UFC/placa, según lo establecido en el
anexo 4 de la regulación No. 16-2000 (2).
Las superficies del cuarto de siembra y la
cámara fría no son áreas clasificadas.
Muestreo del personal
Muestreo de manos enguantadas por
placa de contacto tipo Rodac.
Toma de muestra: Destapar las placas e
imprimir los cinco dedos de cada mano en
el agar al finalizar la operación.
Parte a monitorear: Los cinco dedos de cada
mano.
Medio de cultivo usado: Agar Triptona
Soya.
Tiempo y temperatura de incubación: Luego
del muestreo de las manos enguantadas,
las placas se cierran e incuban durante 5
días a 30 ºC.
Frecuencia de realización de los controles:
Al finalizar una operación semanalmente.
Criterio de conformidad: Bajo flujo laminar
se establece que para esta técnica sea < 3
UFC/guantes, según lo establecido en el
anexo 4 de la regulación No. 16-2000 (2).
CONCLUSIONES
La puesta en práctica del monitoreo
microbiológico ambiental es una herramienta que permite caracterizar desde el
punto de vista microbiológico en qué condiciones realizamos las diferentes operaciones bajo flujo laminar. La prescripción tanto
del grado de contaminación del aire como
de la higiene de los equipos y del personal
son necesarias para establecer un control de
inspección higiénico sanitario y llevar a
cabo un programa de limpieza y desinfección. En este sentido, la aplicación del diseño propuesto y sus resultados servirán para
controlar y tomar las acciones preventivas y
correctivas necesarias para mantener la calidad ambiental.
REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS
1. Buenas prácticas de laboratorio para el
control de medicamentos. Regulación
No. 37-2004. Centro para el Control
Estatal de la Calidad de los
Medicamentos (CECMED). Ministerio de
ICIDCA 44 (3) 2010
Salud Pública, República de Cuba, 2004.
2. Buenas Prácticas para la Fabricación de
Productos Farmacéuticos. Anexo No. 4,
Regulación No. 16-2000. Centro para el
Control Estatal de la Calidad de los
Medicamentos (CECMED). Ministerio de
Salud Pública, República de Cuba, 2000.
3. Madigan, M. T.; Martinko, J. M y Parker,
J.
Brock
Biología
de
los
Microorganismos. Prentice Hall Iberia,
España. 8ª ed. p.984, 2001.
4. Cuesta, A. Acreditación de laboratorios
de Microbiología de los Alimentos.
Consultora Internacional de la FAO
[fecha de consulta: enero, 2009]
<http://www.rlc.fao.org/es/nutricion/cod
ex/rla3014/pdf/micro.pps#1>, 2009.
5. Burdon, A.; Kenneth, L. y Williams, R.
Microbiología. Primera Edición, México,
pp. 127-131, 1974.
6. Cordova, Y. Calidad del aire en ambientes interiores: Contaminantes Biológicos.
[Tesis de maestría].Departamento de
Ingeniería Sanitaria y Ambiental.
Facultad de Ingeniería, Universidad
Central de Venezuela, Caracas, pp. 63-70,
Junio, 2000.
7. Henry, G. y Heinke, G. Ingeniería
Ambiental. 2ª Edición. México, pp. 288290, 492-509, 1999.
8. García, N.; Araujo, I.; Fernández, M.;
Salcedo, W.; Cárdenas, C.; Fernández, J.;
et al. Calidad microbiológica y fisicoquímica del aire en tres laboratorios de la
Facultad de Ingeniería de la Universidad
del Zulia. CIEN, 13 (2), Maracaibo, 2005.
9. Díaz, D. A. Límites de alerta y de acción
para el monitoreo microbiológico
ambiental.[fecha de consulta: enero,
2009] <http://www.monografías.com/trabajos46/limites-control-ambiental/limites-control-ambiental.shtml.1997>,
1997.
10.PDA/IES Joint Conference on Cleanroom
and Microenvironments. Environmental
Monitoring of Viables: Surface testing
the program and applications, 1992.
11.PDA Journal of Pharmaceutical Science
and Technology. Fundamentals of an
environmental monitoring program.
2001, 55 (supplement TR13).
12.Donate, A.; Herrero, M. J.; Ibáñez, M. y
Sanchis, J. Muestreo del aire, ¿Con placa
de contacto o con placa petri?. Revista
Técnicas de Laboratorio, (256), 2000.
13
13.Proyecto Microkit 1999 para optimizar la
sensibilidad de los parámetros del muestreo microbiológico del aire. J. Sanchos
Solera. Revista BIO del Colegio Oficial de
Biólogos, 2000.
14.Sanchis, J. Los nueve parámetros más
críticos en el muestreo biológico del aire.
Revista Técnicas de Laboratorio, (278): p.
858-862, 2002.
15.Donate, A.; Herrero, M. J.; Ibáñez, M. y
Sanchis, J. Muestreo del aire, ¿Con placa
14
de contacto o con placa petri?. Áreas para
la elaboración de medicamentos, cosméticos y alimentos. Revista Técnicas de
Laboratorio, (256), 2002.
16.PDA Journal of Pharmaceutical Science
and Technology. Fundamentals of an
environmental monitoring program. Cap.
4.4 Air Monitoring. 55 (5), (supplement
TR13): p. 15-19, 2001.
ICIDCA 44 (3) 2010